Immunofluorescence à double marquage à l’aide d’anticorps de la même espèce pour étudier les interactions hôte-pathogène
Özet
Ici, le protocole décrit comment effectuer une immunofluorescence à double marquage en utilisant des anticorps primaires élevés chez la même espèce pour étudier les interactions hôte-pathogène. En outre, il peut inclure le troisième anticorps d’un hôte différent dans ce protocole. Cette approche peut être faite dans n’importe quel type de cellule et d’agents pathogènes.
Abstract
De nos jours, il est possible de trouver un large éventail d’outils moléculaires disponibles pour étudier les interactions parasite-cellule hôte. Cependant, certaines limites existent pour obtenir des anticorps monoclonaux ou polyclonaux commerciaux qui reconnaissent des structures cellulaires et des protéines spécifiques chez les parasites. En outre, il existe peu d’anticorps commerciaux disponibles pour marquer les trypanosomatidés. Habituellement, les anticorps polyclonaux contre les parasites sont préparés en interne et pourraient être plus difficiles à utiliser en combinaison avec d’autres anticorps produits chez la même espèce. Ici, le protocole montre comment utiliser des anticorps polyclonaux et monoclonaux élevés chez la même espèce pour effectuer une immunofluorescence à double marquage afin d’étudier les interactions entre les cellules hôtes et les agents pathogènes. Pour obtenir l’immunofluorescence à double marquage, il est crucial d’incuber d’abord l’anticorps polyclonal de la souris, puis de suivre l’incubation avec l’anticorps IgG secondaire de la souris conjugué à n’importe quel fluorochrome. Après cela, une étape de blocage supplémentaire est nécessaire pour empêcher toute trace de l’anticorps primaire d’être reconnue par l’anticorps secondaire suivant. Ensuite, un anticorps monoclonal de souris et son anticorps secondaire spécifique de sous-classe IgG conjugué à un fluorochrome différent sont ajoutés à l’échantillon aux moments appropriés. De plus, il est possible d’effectuer une immunofluorescence à triple marquage à l’aide d’un troisième anticorps élevé chez une espèce différente. En outre, des structures telles que les noyaux et l’actine peuvent être colorées ultérieurement avec leurs composés ou étiquettes spécifiques. Ainsi, ces approches présentées ici peuvent être ajustées pour toute cellule dont les sources d’anticorps primaires sont limitées.
Introduction
Étudier l’interaction de l’agent pathogène avec la cellule hôte au niveau cellulaire fournit des informations essentielles sur les causes sous-jacentes de la maladie, car différents groupes, tels que les virus, les bactéries et les protozoaires, peuvent infecter la plupart des types de cellules hôtes1,2,3,4. Il peut également aider à développer et à identifier des cibles thérapeutiques potentielles qui peuvent ralentir ou inhiber la croissance de l’agent pathogène. Dans des conditions de vie, les anticorps produits sont responsables de la reconnaissance des auto-composants, des antigènes des virus, des composants ou produits bactériens, des champignons, des parasites et autres5.
À cette fin, les anticorps sont des outils largement utilisés, principalement pour comprendre l’emplacement et la fonction des structures cellulaires et des protéines. Plusieurs études utilisant le marquage d’anticorps multiples démontrent que des étapes de blocage supplémentaires contribuent à la spécificité de l’immunolocalisation. En outre, la plupart des protocoles décrits utilisent des anticorps monoclonaux commerciaux spécifiques, y compris des anticorps de la même espèce hôte6,7,8,9,10,11,12,13,14.
Habituellement, l’immunofluorescence à double marquage utilise deux anticorps élevés chez des espèces différentes pour colorer les structures cellulaires d’intérêt ou les agents pathogènes et les cellules hôtes pour voir l’interaction entre eux. Cependant, cela peut être un problème lorsqu’aucun anticorps commercial monoclonal ou polyclonal spécifique à certains agents pathogènes n’est disponible pour effectuer le double marquage. En outre, il existe des kits de conjugaison d’anticorps disponibles dans le commerce, et il est possible de conjuguer les anticorps primaires directement au fluorophore par une réaction d’ester de succinimidyle15. Le problème est que ces kits sont souvent coûteux, et il est nécessaire d’avoir suffisamment d’anticorps pour les étiqueter. Sachant cela, nous avons développé avec succès une méthode de double immunofluorescence utilisant deux anticorps différents élevés dans la même espèce pour étudier la localisation des protéines dans Trypanosoma brucei16. Cependant, pour les parasites intracellulaires, y compris Trypanosoma cruzi, cette approche n’a pas été démontrée. Ici, nous montrons comment effectuer une immunofluorescence à double marquage pour étudier les parasites intracellulaires de T. cruzi et la cellule hôte en utilisant des anticorps primaires élevés chez la même espèce sans réactions croisées. Outre cette méthode, un triple marquage par immunofluorescence a été établi avec l’ajout du troisième anticorps d’une espèce différente. Ces approches aident lorsque la source d’anticorps est limitée et peuvent être utilisées dans n’importe quel type de cellule.
Protocol
Representative Results
Discussion
Ici, nous présentons un protocole pour effectuer un double immunomarquage dans les cellules infectées par Trypanosoma cruzi en utilisant deux anticorps différents de la même espèce hôte. Pour étudier, avec plus de détails, les implications de l’infection, les structures de la cellule hôte telles que le noyau ou les organites cytosoliques peuvent être étiquetées à l’aide de ce protocole. En outre, il peut être utilisé dans la méthode d’étiquetage immunogold à section mince post-intégratio…
Açıklamalar
The authors have nothing to disclose.
Acknowledgements
Ce travail a été soutenu par la Fundação de Amparo à Pesquisa do Estado de São Paulo (FAPESP 2010/19547-1; 2018/03677-5) à MMAB, par fundação de Apoio ao Ensino, Pesquisa e Assistência – FAEPA à MMAB et par Coordenação de Aperfeiçoamento de Pessoal de Nível Superior- Brasil (CAPES) – code financier 001. CG-C a reçu une bourse de maîtrise et de doctorat de CAPES et LAMT-S a reçu une bourse de doctorat du CNPq. Nous remercions Elizabete R. Milani pour l’assistance en microscopie confocale et le Dr Dario Zamboni pour la fourniture de cellules LLC-MK2 (Ribeirao Preto Medical School, USP).
Materials
| Alexa Fluor 488 – IgG2b antibody | Life technologies, USA | A21141 | Goat anti-mouse |
| AffiniPure Rabbit anti-mouse IgG (H+L) | Jackson Immunoresearch, USA | 315-005-003 | Anti-mouse antibody |
| Alexa Fluor 488 – IgG F (ab')2 (H+L) antibody | Life technologies, USA | A11017 | Goat anti mouse |
| Alexa Fluor 594 IgG1 antibody | Life technologies, USA | A21125 | Goat anti-mouse |
| Alexa Fluor 647 – IgG F (ab')2 (H+L) antibody | Life technologies, USA | A21237 | Goat anti-mouse |
| Anti-hnRNPA1 antibody IgG2b | Sigma-Aldrich, USA | R4528 | Mouse antibody |
| anti-TcFAZ (T. cruzi FAZ protein) antibody | Our lab | In-house | Mouse antibody |
| Bovine Serum Albumin (BSA) | Sigma-Aldrich, USA | A2153-10G | Albumin protein |
| Detergent Igepal CA-630 | Sigma-Aldrich, USA | I3021 | Nonionic Detergent |
| Fetal Bovine Serum (FBS) | Gibco, Thermo fisher scientific, USA | 12657-029 | Serum |
| Penicillin Streptomycin | Gibco, Thermo fisher scientific, USA | 15140-122 | Antibiotic |
| Phalloidin Alexa Fluor 594 | Life technologies, USA | A12381 | Actin marker |
| ProLong Gold antifade with DAPI | Life technologies, USA | P36935 | Mounting media reagent |
| RPMI 1640 1X with L-glutamine | Corning, USA | 10-040-CV | Cell culture media |
| Trypsin-EDTA solution | Sigma-Aldrich, USA | T4049-100ML | Bioreagent |
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