Здесь мы описываем протокол для живой клеточной визуализации цитоскелета корковых микротрубочек на съемках апического меристема и отслеживаем его реакцию на изменения в физических силах.
Понимание регуляции роста и морфогенеза на уровне клеток и тканей находится на переднем крае биологических исследований на протяжении многих десятилетий. Достижения в области молекулярных и визуальных технологий позволили нам получить представление о том, как биохимические сигналы влияют на морфогенетические события. Тем не менее, становится все более очевидным, что помимо биохимических сигналов, механические сигналы также влияют на некоторые аспекты роста клеток и тканей. Arabidopsis стрелять апический меристем (SAM) является куполообразной структуры, ответственной за генерацию всех надземных органов. Организация цитоскелета корковых микротрубочек, который опосредует апопластическое осаждение целлюлозы в клетках растений, пространственно отличается. Визуализация и количественная оценка моделей корковых микротрубочек необходимы для понимания биофизической природы клеток в SAM, так как целлюлоза является самым жестким компонентом стенки клеток растения. Стереотипная форма организации корковых микротрубочек также является следствием тканевых физических сил, существующих на SAM. Возмущение этих физических сил и последующий мониторинг организации корковых микротрубочек позволяет идентифицировать кандидатские белки, участвующие в посредничестве механо-восприятия и трансдукции. Здесь мы описываем протокол, который помогает исследовать такие процессы.
Растительные клетки окружены внеклеточной матрицей полисахаридов и гликопротеинов, которая механически напоминает волокно усиленного композитного материала, способного динамически изменять своимеханические свойства 1. Рост растительных клеток обусловлен поглощением воды в клетку, что приводит к сопутствующего наращиванию напряженных сил на клеточной стенке. В ответ на такие силы, изменения в физическом состоянии клеточной стенки позволяет расширение клеток. Клетки с первичными стенками способны претерпевать быстрый рост по сравнению со вторичной клеточной стеной, содержащей клетки, главным образом из-за различий в химическом составе полисахаридов внутри. Первичные клетки стенки состоят из целлюлозы, гемичеллозы и пектина в дополнение к гликопротеинам, и отсутствие лигнина, компонент, который присутствует во вторичной клеточнойстенке 2. Целлюлоза, глюкозный полимер, связанный β-1,4 связей, является основным компонентом клеточных стенок. Он организован в фибрилляльные структуры, которые способны выдерживать высокие напряженные силы, опытные во время роста клеток3. Помимо выдержив напряженные силы, механическое усиление по преференциальному направлению приводит к тургорному расширению вдоль оси перпендикулярно чистой ориентации микрофилибры целлюлозы. На организацию целлюлозных микрофиллятов влияет кортикальный цитоскелет микротрубочек, так как они направляют направленное движение целлюлозно-синтезующих комплексов, расположенных на плазменноймембране 4. Таким образом, мониторинг организации корковых микротрубочек с использованием микротрубочек, связанных с белком или тубулином, слитым с флуоресцентной молекулой, служит прокси для наблюдения за чрезмерной структурой целлюлозы в клетках растений.
Узор коркового микротрубокона цитоскелет находится под контролем клеток и ткани морфологии производных механических сил. Кортикальная организация микротрубочек не имеет какой-либо преференциальной организации с течением времени в клетках, расположенных на вершине SAM, в то время как клетки на периферии и граница между SAM и возникающим органом имеют стабильный, высокоорганизованный надклеточный массив корковых микротрубочек5. Было разработано несколько подходов к физическому возмущению механического состояния клеток. Изменения осмотического статуса, а также лечение фармакологическими и энзиматических соединений, которые влияют на жесткость клеточной стенки может привести к последующим изменениям в напряженных сил, с которымисталкиваются клетки 6,7. Использование приспособлений, которые позволяют постепенное увеличение сжатых сил, с которыми сталкиваются ткани является еще одной альтернативой8. Было также показано, что применение центробежных сил влияет на механические силы без физического контакта с клетками9. Тем не менее, наиболее широко используемые средства изменения направленных сил в группе клеток воспользоваться тем, что все эпидермальные клетки находятся под напряжением и физической абляции клеток позволит устранить тургорное давление локально, а также нарушение клетки к клетке адгезии, тем самым изменяя напряженные силы, с которыми сталкиваются соседние клетки. Это выполняется либо путем ориентации мощных импульсных ультрафиолетовых лазеров или с помощью тонкой иглы.
Здесь мы подробно о процессе визуализации и оценки поведения корковых микротрубочек для механического возмущения на SAM.
Оценка событий механической трансдукции сигнала имеет решающее значение для выявления молекулярных регуляторов, участвующих в механо-восприятии и трансдукционных путях. В описанном здесь протоколе содержится количественное представление о таких событиях с помощью кортикальной мик…
The authors have nothing to disclose.
Ни один.
FibrilTool | Boudaoud, A. et al., Nat Protoc. 2014 | ||
FIJI | Schindelin, J. et al., Nat Methods. 2012 | ||
glycine | Merck | 1.04201.1000 | |
Leica SP8 confocal microscope | Leica | DM6000 CS | |
MAP4-GFP | Marc, J. et al., Plant Cell 1998 | ||
micropore tape | Leukopor | 02482-00 | |
MorphographX | Strauss, S. et al., Methods Mol Biol. 2019 | ||
myo-inositol | Sigma | I5125 | |
N6-benzyladenine | Sigma | B3408 | |
nicotinic acid | Sigma | N4126 | |
plastic hinged box | Electron microscopy sciences | 64312 | |
PPM (Plant Preservative Mixture) | Plant Cell Technology | PPM | |
Propidium iodide | Sigma | P4864 | |
pyridoxine hydrochloride | Sigma | P9755 | |
SURFCUT | Erguvan, O. et al., BMC Biol. 2019 | ||
thiamine hydrochloride | Sigma | T4625 |