Özet

Live Cell Imaging микротрубочек цитоскелет и микромеханические манипуляции Arabidopsis стрелять Apical Meristem

Published: May 23, 2020
doi:

Özet

Здесь мы описываем протокол для живой клеточной визуализации цитоскелета корковых микротрубочек на съемках апического меристема и отслеживаем его реакцию на изменения в физических силах.

Abstract

Понимание регуляции роста и морфогенеза на уровне клеток и тканей находится на переднем крае биологических исследований на протяжении многих десятилетий. Достижения в области молекулярных и визуальных технологий позволили нам получить представление о том, как биохимические сигналы влияют на морфогенетические события. Тем не менее, становится все более очевидным, что помимо биохимических сигналов, механические сигналы также влияют на некоторые аспекты роста клеток и тканей. Arabidopsis стрелять апический меристем (SAM) является куполообразной структуры, ответственной за генерацию всех надземных органов. Организация цитоскелета корковых микротрубочек, который опосредует апопластическое осаждение целлюлозы в клетках растений, пространственно отличается. Визуализация и количественная оценка моделей корковых микротрубочек необходимы для понимания биофизической природы клеток в SAM, так как целлюлоза является самым жестким компонентом стенки клеток растения. Стереотипная форма организации корковых микротрубочек также является следствием тканевых физических сил, существующих на SAM. Возмущение этих физических сил и последующий мониторинг организации корковых микротрубочек позволяет идентифицировать кандидатские белки, участвующие в посредничестве механо-восприятия и трансдукции. Здесь мы описываем протокол, который помогает исследовать такие процессы.

Introduction

Растительные клетки окружены внеклеточной матрицей полисахаридов и гликопротеинов, которая механически напоминает волокно усиленного композитного материала, способного динамически изменять своимеханические свойства 1. Рост растительных клеток обусловлен поглощением воды в клетку, что приводит к сопутствующего наращиванию напряженных сил на клеточной стенке. В ответ на такие силы, изменения в физическом состоянии клеточной стенки позволяет расширение клеток. Клетки с первичными стенками способны претерпевать быстрый рост по сравнению со вторичной клеточной стеной, содержащей клетки, главным образом из-за различий в химическом составе полисахаридов внутри. Первичные клетки стенки состоят из целлюлозы, гемичеллозы и пектина в дополнение к гликопротеинам, и отсутствие лигнина, компонент, который присутствует во вторичной клеточнойстенке 2. Целлюлоза, глюкозный полимер, связанный β-1,4 связей, является основным компонентом клеточных стенок. Он организован в фибрилляльные структуры, которые способны выдерживать высокие напряженные силы, опытные во время роста клеток3. Помимо выдержив напряженные силы, механическое усиление по преференциальному направлению приводит к тургорному расширению вдоль оси перпендикулярно чистой ориентации микрофилибры целлюлозы. На организацию целлюлозных микрофиллятов влияет кортикальный цитоскелет микротрубочек, так как они направляют направленное движение целлюлозно-синтезующих комплексов, расположенных на плазменноймембране 4. Таким образом, мониторинг организации корковых микротрубочек с использованием микротрубочек, связанных с белком или тубулином, слитым с флуоресцентной молекулой, служит прокси для наблюдения за чрезмерной структурой целлюлозы в клетках растений.

Узор коркового микротрубокона цитоскелет находится под контролем клеток и ткани морфологии производных механических сил. Кортикальная организация микротрубочек не имеет какой-либо преференциальной организации с течением времени в клетках, расположенных на вершине SAM, в то время как клетки на периферии и граница между SAM и возникающим органом имеют стабильный, высокоорганизованный надклеточный массив корковых микротрубочек5. Было разработано несколько подходов к физическому возмущению механического состояния клеток. Изменения осмотического статуса, а также лечение фармакологическими и энзиматических соединений, которые влияют на жесткость клеточной стенки может привести к последующим изменениям в напряженных сил, с которымисталкиваются клетки 6,7. Использование приспособлений, которые позволяют постепенное увеличение сжатых сил, с которыми сталкиваются ткани является еще одной альтернативой8. Было также показано, что применение центробежных сил влияет на механические силы без физического контакта с клетками9. Тем не менее, наиболее широко используемые средства изменения направленных сил в группе клеток воспользоваться тем, что все эпидермальные клетки находятся под напряжением и физической абляции клеток позволит устранить тургорное давление локально, а также нарушение клетки к клетке адгезии, тем самым изменяя напряженные силы, с которыми сталкиваются соседние клетки. Это выполняется либо путем ориентации мощных импульсных ультрафиолетовых лазеров или с помощью тонкой иглы.

Здесь мы подробно о процессе визуализации и оценки поведения корковых микротрубочек для механического возмущения на SAM.

Protocol

1. Рост растений Сеять семена арабидопсиса, выражают микротрубочки связывания домена сливается с зеленым флуоресцентным белком (MBD-GFP)10 на почве и держать в длинный день (16 ч день / 8 ч ночью), 20 градусов по Цельсию / 6 градусов по Цельсию условия в течение 1 недели для п…

Representative Results

На рисунке 1 показаны типичные проекционные изображения, полученные из линий MBD-GFP с ячейками в центре купола, содержащими дезорганизованные корковые микротрубочные микробубулы, и клетки на периферии, имеющие окружное распределение(рисунок…

Discussion

Оценка событий механической трансдукции сигнала имеет решающее значение для выявления молекулярных регуляторов, участвующих в механо-восприятии и трансдукционных путях. В описанном здесь протоколе содержится количественное представление о таких событиях с помощью кортикальной мик…

Açıklamalar

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Ни один.

Materials

FibrilTool Boudaoud, A. et al., Nat Protoc. 2014
FIJI Schindelin, J. et al., Nat Methods. 2012
glycine Merck 1.04201.1000
Leica SP8 confocal microscope Leica DM6000 CS
MAP4-GFP Marc, J. et al., Plant Cell 1998
micropore tape Leukopor 02482-00
MorphographX Strauss, S. et al., Methods Mol Biol. 2019
myo-inositol Sigma I5125
N6-benzyladenine Sigma B3408
nicotinic acid Sigma N4126
plastic hinged box Electron microscopy sciences 64312
PPM (Plant Preservative Mixture) Plant Cell Technology PPM
Propidium iodide Sigma P4864
pyridoxine hydrochloride Sigma P9755
SURFCUT Erguvan, O. et al., BMC Biol. 2019
thiamine hydrochloride Sigma T4625

Referanslar

  1. Cosgrove, D. J. Re-constructing our models of cellulose and primary cell wall assembly. Current Opinion in Plant Biology. 22, 122-131 (2014).
  2. McFarlane, H. E., Doring, A., Persson, S. The cell biology of cellulose synthesis. Annual Reviews in Plant Biology. 65, 69-94 (2014).
  3. Burgert, I. Exploring the micromechanical design of plant cell walls. American Journal of Botany. 93 (10), 1391-1401 (2006).
  4. Paredez, A. R., Somerville, C. R., Ehrhardt, D. W. Visualization of cellulose synthase demonstrates functional association with microtubules. Science. 312 (5779), 1491-1495 (2006).
  5. Barbier de Reuille, P., et al. MorphoGraphX: A platform for quantifying morphogenesis in 4D. Elife. 4, 05864 (2015).
  6. Kierzkowski, D., et al. Elastic domains regulate growth and organogenesis in the plant shoot apical meristem. Science. 335 (6072), 1096-1099 (2012).
  7. Heisler, M. G., et al. Alignment between PIN1 polarity and microtubule orientation in the shoot apical meristem reveals a tight coupling between morphogenesis and auxin transport. PLoS Biology. 8 (10), e1000516 (2010).
  8. Louveaux, M., Rochette, S., Beauzamy, L., Boudaoud, A., Hamant, O. The impact of mechanical compression on cortical microtubules in Arabidopsis: a quantitative pipeline. Plant Journal. 88 (2), 328-342 (2016).
  9. Nakayama, N., et al. Mechanical regulation of auxin-mediated growth. Current Biology. 22 (16), 1468-1476 (2012).
  10. Marc, J., et al. A GFP-MAP4 reporter gene for visualizing cortical microtubule rearrangements in living epidermal cells. Plant Cell. 10 (11), 1927-1940 (1998).
  11. Strauss, S., Sapala, A., Kierzkowski, D., Smith, R. S. Quantifying Plant Growth and Cell Proliferation with MorphoGraphX. Methods in Molecular Biology. 1992, 269-290 (2019).
  12. Schindelin, J., et al. Fiji: an open-source platform for biological-image analysis. Nature Methods. 9 (7), 676-682 (2012).
  13. Erguvan, O., Louveaux, M., Hamant, O., Verger, S. ImageJ SurfCut: a user-friendly pipeline for high-throughput extraction of cell contours from 3D image stacks. BMC Biology. 17 (1), 38 (2019).
  14. Boudaoud, A., et al. FibrilTool, an ImageJ plug-in to quantify fibrillar structures in raw microscopy images. Nature Protocols. 9 (2), 457-463 (2014).
  15. Sampathkumar, A., et al. Primary wall cellulose synthase regulates shoot apical meristem mechanics and growth. Development. 146 (10), (2019).
  16. Hervieux, N., et al. A Mechanical Feedback Restricts Sepal Growth and Shape in Arabidopsis. Current Biology. 6 (8), P1019-P1028 (2016).
  17. Sampathkumar, A., et al. Subcellular and supracellular mechanical stress prescribes cytoskeleton behavior in Arabidopsis cotyledon pavement cells. Elife. 3, e01967 (2014).
  18. Sampathkumar, A., et al. Primary wall cellulose synthase regulates shoot apical meristem mechanics and growth. Development. 146 (10), dev179036 (2019).
  19. Uyttewaal, M., et al. Mechanical stress acts via katanin to amplify differences in growth rate between adjacent cells in Arabidopsis. Cell. 149 (2), 439-451 (2012).
  20. Hamant, O., et al. Developmental patterning by mechanical signals in Arabidopsis. Science. 322 (5908), 1650-1655 (2008).

Play Video

Bu Makaleden Alıntı Yapın
Wang, Y., Sampathkumar, A. Live Cell Imaging of Microtubule Cytoskeleton and Micromechanical Manipulation of the Arabidopsis Shoot Apical Meristem. J. Vis. Exp. (159), e60936, doi:10.3791/60936 (2020).

View Video