Özet

Infezione da Salmonella cronica Fibrosi intestinale indotta

Published: September 22, 2019
doi:

Özet

Questo protocollo descrive un modello murino di fibrosi intestinale guidata da Salmonella che assomiglia ai segni chiave della malattia patologica della malattia di Crohn, tra cui l’infiammazione transmurale e la fibrosi. Questo metodo può essere utilizzato per valutare i fattori ospiti che alterano gli esiti fibrotici utilizzando topi mutanti mantenuti su un background genetico C57Bl/6.

Abstract

La fibrosi tissutale caratterizzata dall’accumulo patologico di matrice extracellulare come il collagene è il risultato di un’infiammazione persistente e di una riparazione slogata. Nella malattia infiammatoria intestinale (IBD), la fibrosi porta a formazioni di stenosi ricorrenti per le quali non esiste una terapia efficace diversa dalla resezione chirurgica. A causa della sua esordio tardivo, i processi che guidano la fibrosi sono meno studiati e in gran parte sconosciuti. Pertanto, le complicazioni fibrotiche rappresentano una sfida importante nell’IBD. In questo protocollo, viene descritto un robusto modello in vivo di fibrosi intestinale in cui la streptonomina pre-trattamento dei topi C57Bl/6, seguiti da gavage orale con Salmonella Typhimurium, mutante di grado fibrosi del cecum. Metodologie per la preparazione di S. Typhimurium – AroA per l’inoculazione, quantificando i carichi patogeni nel cecum e nella milza e valutando la deposizione di collagene nei tessuti intestinali sono spiegati. Questo modello di malattia sperimentale è utile per esaminare i fattori ospiti che migliorano o esacerbano la fibrosi intestinale simile a un CD.

Introduction

La colite ulcerosa (UC) e la malattia di Crohn (CD) sono le due principali forme di IBD e sono caratterizzate da disturbi infiammatori cronici e recidivi del tratto gastrointestinale 1,2. Questi disturbi hanno un impatto importante sulla qualità della vita dei pazienti. I sintomi di IBD includono dolore addominale, diarrea, nausea, perdita di peso, febbre, e affaticamento3. Studi recenti hanno identificato fattori genetici e ambientali che contribuiscono alla patogenesi della malattia; si ritiene che tali fattori di rischio contribuiscano all’interruzione della barriera epiteliale con conseguente traslocazione o sovracampionamento degli antigeni luminali4. Di conseguenza, Questo avvia una risposta infiammatoria aberranti alla flora commensale mediata dalle cellule immunitarie intestinali4. Caratteristiche di complicanze Associate iBD possono estendersi a siti al di là del tratto GI che interessano vari organi tra cui articolazioni, pelle, e fegato1,2. I segni distintivi di UC includono un’infiammazione grave e diffusa tipicamente localizzata nel colon1. La patologia della malattia colpisce la mucosa e la submucosa dell’intestino con conseguente ulcerazioni mucosali superficiali1. Al contrario, CD può colpire qualsiasi parte del tratto GI, anche se la prova della malattia si trova comunemente nel colon e disl ileum2. Inoltre, l’infiammazione in CD è transmurale, che colpisce tutti gli strati della parete intestinale2.

Diversi geni di suscettibilità agli IBD che sono stati identificati indicherebbero che la disregolazione della barriera epiteliale o dell’immunità sono fattori critici per la progressione della malattia5. Si è scoperto che le mutazioni nel dominio di oligomerizzazione dei nucleotidi 2 (NOD2) espresse dai monociti siano associate ad una maggiore suscettibilità al CD; questo evidenzia un legame tra il rilevamento immunitario innato alterato di componenti batterici e la malattia6. Studi più recenti sull’associazione a livello di genoma (GWAS) hanno rivelato ulteriori percorsi potenzialmente coinvolti nella patogenesi dell’IBD, comprese le variazioni genetiche in: STAT1, NKX2-3, IL2RA, il23R dependent pathways collegato all’immunità adattiva, MUC1, MUC19e PTGER4 nella manutenzione della barriera intestinale e all’autofagia mediata ATG16L7,8,9. Mentre questi studi di genetica basata sulla popolazione hanno migliorato la nostra comprensione dell’IBD, gli alleli di suscettibilità da soli sono probabilmente insufficienti nell’inentrare e sostenere la malattia cronica3. Altri fattori non genetici, tra cui alterazioni nella composizione del microbioma intestinale e una riduzione della diversità, sono stati associati all’infiammazione intestinale. Tuttavia, non è chiaro se la disbiosi intestinale precede o è la conseguenza di risposte immunitarie disregolate3. Anche se l’eziologia dell’IBD rimane poco chiara, la nostra comprensione della patogenesi della malattia è stata migliorata da modelli di topo sperimentali di infiammazione intestinale10,11. Questi modelli singolarmente non rappresentano pienamente la complessità della malattia umana, ma sono preziosi per chiarire i percorsi patofisiologici che potrebbero essere rilevanti per l’IBD e per la convalida di strategie terapeutiche provvisorie10, 11. Tali modelli murini in genere si basano sull’avvio di infiammazione da induzione chimica o infezione, trasferimento di cellule immunitarie, o manipolazione genetica. Inoltre, queste strategie spesso comportano perturbazioni nell’integrità epiteliale o modulazione dell’immunità innata o adattativa.

I sierovari enterici di Salmonella sono patogeni intestinali che possono infettare gli esseri umani e i topi. Dopo l’ingestione, la Salmonella può colonizzare l’intestino per invasione diretta di epitelia, cellule M o antigene che presenta le cellule12. Topi infettati per via orale con S. Typhimurium si traduce nella colonizzazione principalmente di siti sistemici come la milza e i linfonodi mesenterici con relativamente bassa abbondanza nel tratto GI12. Tuttavia, il pretrattamento dei topi con streptomicina migliora l’efficienza della colonizzazione della Salmonella dell’intestino diminuendo gli effetti protettivi ospiti del microbiota normale13. Le caratteristiche patologiche di questo modello includono l’interruzione o l’ulcera della barriera epiteliale, il reclutamento di granulociti e l’edema grave13. In alternativa, l’infezione con il vaccino di grado S. Typhimurium – Un mutante porta alla colonizzazione cronica del cecum e del colon che persiste fino al giorno 40 dopo l’infezione14. La S. Il ceppo Typhimurium -AroA ha un difetto nella biosintesi degli amminoacidi aromatici; questo rende il ceppo mutante avirulent e può essere utilizzato come un vaccino altamente efficace15. L’infezione orale nei topi porta a una risposta infiammatoria associata a Th1 e Th17, a un ampio rimodellamento dei tessuti e alla deposizione di collagene. Patologia dei tessuti è associata a livelli elevati di fattore pro-fibrotico come TGF-z1, CTGF, e IGF14. Le cicatrici fibrotiche transmurali riportate in questo modello ricordano le formazioni di stenosi spesso osservate nell’IBD. L’induzione della fibrosi da parte della Salmonella richiede virulenza codificata dalle isole di patogenicità della Salmonella (SPI)-1 e 2 12. È importante sottolineare che questa S. Il modello di infezione da Tymphimurium – AroA è un sistema utile per lo studio delle risposte fibrotiche nei topi mutanti mantenuti su uno sfondo C57/Bl6. Il ceppo C57/Bl6 è estremamente sensibile a S. Infezione da Typhiumurim SL1344 a causa di una mutazione di perdita di funzione nel gene che codifica la proteina macrofacio associata alla resistenza naturale (NRAMP)-116,17. Abbiamo scoperto che le cellule linfoidi innate dipendenti da IL-17A e ROR sono importanti contributori alla patogenesi in questo modello18.

Una complicazione importante del CD è la deposizione sregolata ed eccessiva della matrice extracellulare (ECM) compreso il collagene2,19. Anche se il tratto GI ha una capacità relativamente elevata di rigenerazione, cicatrici fibrotiche possono sorgere a causa di risposte di guarigione del ferita irrisolte che sono associate con infiammazione cronica e grave20,21. Nel CD, questo si traduce in effetti deleteri sull’architettura dei tessuti che portano a compromissione significativa dell’organo21,22. La natura transmurale dell’infiammazione osservata nel CD precede infine l’ispessimento della parete intestinale associato alla stenosi sintomatica o alla formazione di stenosi21. Circa un terzo dei pazienti cd necessitano di resezione intestinale per questa complicazione22. Non esistono terapie anti-fibrotiche efficaci nell’IBD, dato che l’uso di immunosoppressori come l’azathioprine o l’anti-TNF non ha alcun impatto o ha ridotto solo modestamente il requisito di interventi chirurgici19,23 . Mentre la fibrosi è pensata come la conseguenza dell’infiammazione cronica, le cellule di origine mesenchica come fibroblasti e periciti sono considerate le fonti cellulari primarie di ECM nelle cicatrici fibrotiche21,24. Cronico S. L’infezione da Typhimurium – AroA è un robusto modello murino di fibrosi intestinale che può offrire informazioni sulla patogenesi delle caratteristiche CD-like.

Protocol

Tutti i protocolli sugli animali sono stati approvati dal Comitato per la cura degli animali dell’Università della Columbia Britannica. 1. Preparazione delle colture Salmonella Typhimurium – AroA per il gavage orale dei topi Da uno stock di glicerolo congelato di S. Typhimurium – AroA, preparare una piastra di striatura utilizzando agar LB contenente 100 streptomicina streptomicina con un anello sterile di inoculazione. Incubare per tutta la notte a 37 gradi centig…

Representative Results

Trattamento con Streptomicina seguito da infezione orale con S. Il cplotto – AroA porta a una robusta infiammazione intestinale e fibrosi soprattutto nel cecum (Figura 1). I relativi oneri patogeni di 108-10 9 CFU per 1 g di cecum e 104 CFU per 1 g di milza possono essere recuperati da animali infetti ( Figura2). La valutazione della fibrosi nelle sezioni del ceca rosso picrosiro indicano la fibrosi di picco 21 giorni do…

Discussion

La nostra comprensione della patogenesi dell’IBD è stata notevolmente migliorata da modelli murini di infiammazione intestinale. Anche se tali singoli modelli non ricapitolano tutte le caratteristiche della malattia umana complessa e multifattoriale, sono stati utili per identificare le caratteristiche chiave della progressione della malattia. Le stenosi fibrotiche associate all’IBD rimangono un’importante necessità clinica non soddisfatta, in quanto gli attuali trattamenti sono inefficaci nell’inversione dello svilupp…

Açıklamalar

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Ringraziamo Ingrid Barta per i servizi di istologia.

Materials

2 ml round bottom safe lock tubes Eppendorf 22363344
Stainless steel beads Qiagen 69989
PBS Gibco 10010031
Large-Orifice Pipet Tips Fisher 2707134
2 mL megablock plates Sarstedt 82.1972.002
Gavage needles FST 18061-22
Streptomycin sulfate Sigma S9137
Mixer mill Retsch MM

Referanslar

  1. Danese, S., Fiocchi, C. Ulcerative colitis. New England Journal of Medicine. 365 (18), 1713-1725 (2011).
  2. Baumgart, D. C., Sandborn, W. J. Crohn’s disease. The Lancet. 380 (9853), 1590-1605 (2012).
  3. Knights, D., Lassen, K. G., Xavier, R. J. Advances in inflammatory bowel disease pathogenesis: linking host genetics and the microbiome. Gut. 62 (10), 1505-1510 (2013).
  4. Xavier, R. J., Podolsky, D. K. Unravelling the pathogenesis of inflammatory bowel disease. Nature. 448 (7152), 427-434 (2007).
  5. Cho, J. H. The genetics and immunopathogenesis of inflammatory bowel disease. Nature Reviews Immunology. 8 (6), 458-466 (2008).
  6. Ogura, Y., et al. A frameshift mutation in NOD2 associated with susceptibility to Crohn’s disease. Nature. 411 (6837), 603-606 (2001).
  7. Jostins, L., et al. Host-microbe interactions have shaped the genetic architecture of inflammatory bowel disease. Nature. 491 (7422), 119-124 (2012).
  8. Rivas, M. A., et al. Deep resequencing of GWAS loci identifies independent rare variants associated with inflammatory bowel disease. Nature Genetics. 43 (11), 1066-1073 (2011).
  9. Rioux, J. D., et al. Genome-wide association study identifies new susceptibility loci for Crohn disease and implicates autophagy in disease pathogenesis. Nature Genetics. 39 (5), 596-604 (2007).
  10. Uhlig, H. H., Powrie, F. Mouse models of intestinal inflammation as tools to understand the pathogenesis of inflammatory bowel disease. European Journal of Immunology. 39 (8), 2021-2026 (2009).
  11. Nell, S., Suerbaum, S., Josenhans, C. The impact of the microbiota on the pathogenesis of IBD: lessons from mouse infection models. Nature Reviews Microbiology. 8 (8), 564-577 (2010).
  12. Grassl, G. A., Finlay, B. B. Pathogenesis of enteric Salmonella infections. Current Opinion in Gastroenterology. 24 (1), 22-26 (2008).
  13. Barthel, M., et al. Pretreatment of mice with streptomycin provides a Salmonella enterica serovar Typhimurium colitis model that allows analysis of both pathogen and host. Infection and Immunity. 71 (5), 2839-2858 (2003).
  14. Grassl, G. A., Valdez, Y., Bergstrom, K., Vallance, B. A., Finlay, B. B. Chronic Enteric Salmonella Infection in Mice Leads to Severe and Persistent Intestinal Fibrosis. Gastroenterology. 134 (3), 768-780 (2008).
  15. Hoiseth, S. K., Stocker, B. A. Aromatic-dependent Salmonella typhimurium are non-virulent and effective as live vaccines. Nature. 291 (5812), 238-239 (1981).
  16. Valdez, Y., Ferreira, R. B., Finlay, B. B. Molecular mechanisms of Salmonella virulence and host resistance. Current Topics in Microbiology and Immunology. 337, 93-127 (2009).
  17. Valdez, Y., et al. Nramp1 drives an accelerated inflammatory response during Salmonella-induced colitis in mice. Cellular Microbiology. 11 (2), 351-362 (2009).
  18. Lo, B. C., et al. The orphan nuclear receptor RORalpha and group 3 innate lymphoid cells drive fibrosis in a mouse model of Crohn’s disease. Science Immunology. 1 (3), eaaf8864 (2016).
  19. Burke, J. P., et al. Fibrogenesis in Crohn’s disease. American Journal of Gastroenterology. 102 (2), 439-448 (2007).
  20. Hogan, B. L., et al. Repair and regeneration of the respiratory system: complexity, plasticity, and mechanisms of lung stem cell function. Cell Stem Cell. 15 (2), 123-138 (2014).
  21. Fiocchi, C., Lund, P. K. Themes in fibrosis and gastrointestinal inflammation. American Journal of Physiology-Gastrointestinal and Liver Physiology. 300 (5), G677-G683 (2011).
  22. Rieder, F., Fiocchi, C. Intestinal fibrosis in IBD—a dynamic, multifactorial process. Nature Reviews Gastroenterology & Hepatology. 6 (4), 228-235 (2009).
  23. Bouguen, G., Peyrin-Biroulet, L. Surgery for adult Crohn’s disease: what is the actual risk?. Gut. 60 (9), 1178-1181 (2011).
  24. Wynn, T. A. Cellular and molecular mechanisms of fibrosis. The Journal of Pathology. 214 (2), 199-210 (2008).
  25. Junqueira, L. C., Bignolas, G., Brentani, R. R. Picrosirius staining plus polarization microscopy, a specific method for collagen detection in tissue sections. Histochem J. 11 (4), 447-455 (1979).
  26. Lo, B. C., et al. IL-22 Preserves Gut Epithelial Integrity and Promotes Disease Remission during Chronic Salmonella Infection. Journal of Immunology. 202 (3), 956-965 (2019).
  27. Fichtner-Feigl, S., et al. Induction of IL-13 triggers TGF-beta1-dependent tissue fibrosis in chronic 2,4,6-trinitrobenzene sulfonic acid colitis. Journal of Immunology. 178 (9), 5859-5870 (2007).
  28. Fichtner-Feigl, S., et al. IL-13 signaling via IL-13R alpha2 induces major downstream fibrogenic factors mediating fibrosis in chronic TNBS colitis. Gastroenterology. 135 (6), e2001-e2007 (2013).
  29. Johnson, L. A., et al. Intestinal fibrosis is reduced by early elimination of inflammation in a mouse model of IBD: impact of a "Top-Down" approach to intestinal fibrosis in mice. Inflammatory Bowel Diseases. 18 (3), 460-471 (2012).
  30. Darfeuille-Michaud, A., et al. High prevalence of adherent-invasive Escherichia coli associated with ileal mucosa in Crohn’s disease. Gastroenterology. 127 (2), 412-421 (2004).
  31. Small, C. L., Reid-Yu, S. A., McPhee, J. B., Coombes, B. K. Persistent infection with Crohn’s disease-associated adherent-invasive Escherichia coli leads to chronic inflammation and intestinal fibrosis. Nature Communications. 4, 1957 (2013).
  32. Imai, J., et al. Flagellin-mediated activation of IL-33-ST2 signaling by a pathobiont promotes intestinal fibrosis. Mucosal Immunology. , (2019).

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Lo, B. C., Shin, S. B., Messing, M., McNagny, K. M. Chronic Salmonella Infection Induced Intestinal Fibrosis. J. Vis. Exp. (151), e60068, doi:10.3791/60068 (2019).

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