Özet

Visualizzazione del solco superiore oculare durante l'embriogenesi Danio rerio

Published: March 27, 2019
doi:

Özet

Qui, presentiamo una serie standardizzata dei protocolli per osservare il solco superiore oculare, una struttura recentemente identificato, evolutivamente conservata nell’occhio dei vertebrati. Utilizzando larve di zebrafish, dimostriamo le tecniche necessarie per identificare i fattori che contribuiscono alla formazione e alla chiusura del solco superiore oculare.

Abstract

Coloboma oculare congenita è una malattia genetica che si osserva tipicamente come una fenditura nella funzione inferiore dell’occhio derivanti dalla chiusura della fenditura coroidico incompleta. Recentemente, l’identificazione degli individui con il coloboma in funzione superiore dell’iride, retina e lente ha portato alla scoperta di una nuova struttura, indicato come la fenditura superiore o superiore del solco oculare (SOS), che è transitoriamente presente sulla dorsale aspetto della Coppa ottica durante lo sviluppo dell’occhio dei vertebrati. Anche se questa struttura è conservata in topi, pulcino, pesce e newt, nostra attuale comprensione di SOS è limitato. Per chiarire i fattori che contribuiscono alla sua formazione e chiusura, è indispensabile essere in grado di osservare e identificare le anomalie, quali ritardo nella chiusura di SOS. Qui, abbiamo deciso di creare una serie standardizzata dei protocolli che può essere utilizzato per visualizzare in modo efficiente il SOS combinando tecniche di microscopia ampiamente disponibili con comuni tecniche di biologia molecolare come macchiatura immunofluorescente e mRNA sovraespressione. Mentre questo set di protocolli si concentra sulla capacità di osservare ritardo chiusura SOS, è adattabile alle esigenze dello sperimentatore e possono essere facilmente modificato. Nel complesso, ci auguriamo di creare un metodo accessibile attraverso il quale la nostra comprensione di SOS può essere avanzato per espandere le conoscenze attuali di sviluppo dell’occhio dei vertebrati.

Introduction

La formazione dell’occhio dei vertebrati è un processo altamente conservato in cui vie di segnalazione intercellulare attentamente orchestrate stabilire i tipi di tessuto e specifica identità regionale1. Perturbazioni alla morfogenesi occhio presto causare difetti profondi all’architettura dell’occhio e sono frequentemente accecante2. Una tale malattia deriva dall’impossibilità di chiudere la fessura oculare coroidico nella parte ventrale della Coppa ottica3. Questo disturbo, noto come coloboma oculare, è stimato in 1 su 4-5000 nati vivi e causa 3-11% di cecità pediatrica, che si manifesta comunemente come una buco della serratura-come la struttura che sporge inferiorly dalla pupilla al centro dell’occhio4, 5,6. La funzione della fenditura coroidico è di fornire un punto di ingresso per primi sistema vascolare in crescita nella tazza ottica, dopo di che i lati della fenditura fonderanno per racchiudere le navi7.

Mentre coloboma oculare è stata conosciuta fin dai tempi antichi, recentemente abbiamo identificato un sottogruppo romanzo di coloboma pazienti con perdita di tessuto che interessano la funzione superior/dorsale dell’occhio. Lavoro recente nel nostro laboratorio ha portato alla scoperta di una struttura oculare nell’occhio dorsale di zebrafish, che noi definiamo il solco superiore oculare (SOS) o fenditura superiore8. È importante notare che la struttura ha le caratteristiche di un solco e di una fessura. Simile a un solco, è uno strato di tessuto continuo che si estende dal nasale alla retina temporale. Inoltre, la chiusura della struttura non è mediata da una fusione tra i due opposti della membrana dello scantinato, e sembra che richiedono un processo morfogenetico da cui la struttura è popolata dalle cellule. Tuttavia, simile a una fenditura, forma una struttura che separa il lato nasale e temporale dell’occhio dorsale con la membrana dello scantinato. Per coerenza, si farà riferimento ad esso come SOS in questo testo.

Il SOS è evolutivamente conservato in vertebrati, essendo visibile durante la morfogenesi di occhio di pesce, pulcino, newt e mouse8. In contrasto con la fenditura coroidico, che è presente da 20-60 ore post-fertilizzazione (hpf) in zebrafish, il SOS è altamente temporaneo, essendo facilmente visibile da 20-23 hpf e assente da 26 hpf8. Recenti ricerche nel nostro laboratorio ha trovato che, simile alla fenditura coroidico, il SOS svolge un ruolo nell’orientamento vascolare durante occhio morfogenesi8. Anche se i fattori che controllano la formazione e la chiusura di SOS ancora completamente non sono capiti, i nostri dati ha fatto evidenziare ruoli per dorso-ventrale occhio patterning geni8.

Zebrafish è un organismo modello eccellente per studiare il SOS. Come sistema modello, fornisce una serie di vantaggi a studiare lo sviluppo dell’occhio: si tratta di un modello di vertebrati; ogni generazione esibisce alta fecondità (~ 200 embrioni); il suo genoma è stato completamente sequenziato, che facilita la manipolazione genetica; e circa il 70% dei geni umani hanno almeno un ortologo di zebrafish, rendendolo un ideale modello basato su genetica di malattia umana9,10. La cosa più importante, lo sviluppo avviene esternamente alla madre, e le sue larve sono trasparenti, che consente la visualizzazione dell’occhio in via di sviluppo con relativa facilità11.

In questa serie di protocolli, descriviamo le tecniche attraverso le quali il SOS possono essere visualizzati nelle larve di zebrafish. La varietà di tecniche di visualizzazione utilizzati in questo report vi permetterà chiara osservazione di SOS durante lo sviluppo normale dell’occhio, così come la capacità di rilevare difetti di chiusura SOS. I nostri protocolli di esempio saranno caratterizzato da indagini di Gdf6, un BMP localizzate alla dorsale occhio e noto regolatore di chiusura SOS. Ulteriormente, queste tecniche possono essere combinate con manipolazioni sperimentali per identificare fattori genetici o agenti farmacologici che influenzano la chiusura e la corretta formazione di SOS. Inoltre, abbiamo incluso un protocollo attraverso il quale è possibile, l’imaging fluorescente di tutte le membrane cellulari permettendo lo sperimentatore ad osservare i cambiamenti morfologici per le celle circostanti il SOS. Il nostro obiettivo è quello di stabilire un insieme di protocolli standardizzati che può essere utilizzato in tutta la comunità scientifica per offrire nuove prospettive in questo romanzo struttura dell’occhio in via di sviluppo.

Protocol

Tutti i metodi descritti qui sono stati approvati dall’Università di Alberta Animal Care e Comitato di uso. 1. protocollo 1: Visualizzazione di SOS utilizzando stereomicroscopia e imaging (DIC) contrasto differenziale di interferenza Raccolta degli embrioni In un serbatoio di acqua declorurata, preparare croci di zebrafish gdf6a+ /- nella sera, abbinando un zebrafish maschio con una femmina zebrafish. Assicurarsi di separare il maschio dalla femmina con …

Representative Results

Zebrafish SOS appare alle 20 hpf nella retina dorsale presuntiva8. Da 23 hpf SOS transizioni dalla sua architettura stretta iniziale a una vasta rientranza e da 26 hpf non è più visibile8. Pertanto, per esaminare il SOS durante lo sviluppo dell’occhio di zebrafish normale, gli embrioni devono essere osservati fra hpf 20-23. Durante questo periodo, il SOS è osservabile attraverso il microscopio per dissezione e tramite immagini DIC come un…

Discussion

Qui, presentiamo una serie standardizzata dei protocolli per osservare il SOS nell’embrione di zebrafish sviluppo. Per determinare fenotipi di ritardo di chiusura, i nostri protocolli sono concentrati sulla capacità di distinguere la separazione dei due lobi discreti del lato dorsale-nasale e dorsale-temporale dell’occhio, simile a tecniche utilizzate per visualizzare ritardo chiusura coroidico fenditura fenotipi nell’occhio ventrale.

Queste tecniche di visualizzazione possono essere utilizza…

Açıklamalar

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Questo lavoro è stato supportato da istituti canadesi di ricerca di salute (CIHR), scienze naturali e ingegneria ricerca Consiglio (NSERC), Alberta Innova Technology Futures e donne e salute Research Institute (WCHRI bambini).

Materials

1-phenyl 2-thiourea Sigma Aldrich P7629-10G
100 mm Petri dish Fisher Scientific FB0875713
35 mm Petri dish Corning CLS430588
Agarose BioShop Canada Inc. AGA001.1
Bovine serum albumin Sigma Aldrich A7906-100G
DIC/Fluorescence microscope Zeiss AxioImager Z1
Dissection microscope Olympus SZX12
Dissection microscope camera Qimaging MicroPublisher 5.0 RTV
Dow Corning High-vacuum grease Fisher Scientific 14-635-5D
Ethyl 3-aminobenzoate methanesulfonate salt (Tricaine) Sigma Aldrich A5040-25G
Goat anti-rabbit Alexa Fluor 488 Abcam ab150077
Goat serum Sigma Aldrich G9023
Image capture software Zeiss ZEN
Incubator VWR Model 1545
Microscope Cover Glass (22 mm x 22 mm) Fisher Scientific 12-542B
Microscope slide Fisher Scientific 12-544-2
Minutien pin Fine Science Tools 26002-10
mMessage mMachine Sp6 Transcription Kit Invitrogen AM1340
NotI New England Biolabs R0189S
Paraformaldehyde (PFA) Sigma Aldrich P6148-500G
Phenol:Chloroform:Isoamyl Alcohol pH 6.7 +/- 0.2 Fisher Scientific BP1752-100
Proteinase K Sigma Aldrich P4850
Rabbit anti-laminin antibody Millipore Sigma L9393
TURBO Dnase (2 U/µL) Invitrogen AM2238
Ultrapure low-melting point agarose Invitrogen 16520-100
UltraPure Sodium Dodecyl Sulfate (SDS) Invitrogen 15525017

Referanslar

  1. Chow, R. L., Lang, R. A. Early eye development in vertebrates. Annual Review of Cell and Developmental Biology. 17, (2001).
  2. Slavotinek, A. M. Eye development genes and known syndromes. Molecular Genetics and Metabolism. 104 (448-456), (2011).
  3. Gregory-Evans, C. Y., Williams, M. J., Halford, S., Gregory-Evans, K. Ocular coloboma: a reassessment in the age of molecular neuroscience. Journal of Medical Genetics. 41 (12), (2004).
  4. Onwochei, B. C., Simon, J. W., Bateman, J. B., Couture, K. C., Mir, E. Ocular colobomata. Survey of Ophthalmolgy. 45, 175-194 (2000).
  5. Williamson, K. A., FitzPatrick, D. R. The genetic architecture of microphthalmia, anophthalmia and coloboma. European Journal of Medical Genetics. 57, 369-380 (2014).
  6. Chang, L., Blain, D., Bertuzzi, S., Brooks, B. P. Uveal coloboma: clinical and basic science update. Current Opinion in Ophthalmology. 17, 447-470 (2006).
  7. Kaufman, R., et al. Development and origins of Zebrafish ocular vasculature. BMC Developmental Biology. 15 (18), (2015).
  8. Hocking, J. C., et al. Morphogenetic defects underlie Superior Coloboma, a newly identified closure disorder of the dorsal eye. PLOS Genetics. 14 (3), (2018).
  9. Lawson, N. D., Wolfe, S. A. Forward and reverse genetic approaches for the analysis of vertebrate development in the zebrafish. Developmental Cell. 21 (1), (2011).
  10. Howe, K., et al. The zebrafish reference genome sequence and its relationship to the human genome. Nature. 496 (7446), (2013).
  11. Bilotta, J., Saszik, S. The zebrafish as a model visual system. International Journal of Developmental Neuroscience. 19, 621-629 (2001).
  12. Westerfield, M. . The Zebrafish Book; A guide for the laboratory use of zebrafish (Danio rerio). , (2007).
  13. Kimmel, C. B., Ballard, W. W., Kimmel, S. R., Ullmann, B., Schilling, T. F. Stages of embryonic development of the zebrafish. Developmental Dynamics. 203, 253-310 (1995).
  14. Distel, M., Köster, R. W. In vivo time-lapse imaging of zebrafish embryonic development. Cold Spring Harbor Protocols. , (2007).
  15. Thisse, C., Thisse, B. High-resolution in situ hybridization to whole-mount zebrafish embryos. Nature Protocols. 3, 59-69 (2008).
  16. Kwan, K. M., Otsuna, H., Kidokoro, H., Carney, K. R., Saijoh, Y., Chien, C. A complex choreography of cell movements shapes the vertebrate eye. Development. 139, 359-372 (2012).
  17. Kimmel, C. B., Ballard, W. W., Kimmel, S. R., Ullman, B., Schilling, T. F. Stages of Embryonic Development of the Zebrafish. Developmental Dynamics. 203, 253-310 (1995).
  18. Gfrerer, L., Dougherty, M., Liao, E. C. Visualization of Craniofacial Development in the sox10: kaede Transgenic Zebrafish Line Using Time-lapse Confocal Microscopy. J. Vis. Exp. (79), e50525 (2013).
  19. Percival, S. M., Parant, J. M. Observing Mitotic Division and Dynamics in a Live Zebrafish Embryo. J. Vis. Exp. (113), e54218 (2016).

Play Video

Bu Makaleden Alıntı Yapın
Yoon, K. H., Widen, S. A., Wilson, M. M., Hocking, J. C., Waskiewicz, A. J. Visualization of the Superior Ocular Sulcus during Danio rerio Embryogenesis. J. Vis. Exp. (145), e59259, doi:10.3791/59259 (2019).

View Video