Assays for the Specific Growth Rate and Cell-binding Ability of Rotavirus

Syun-suke Kadoya; Daisuke Sano

doi:10.3791/58821

JoVE Journal > Immunology and Infection

Please note that all translations are automatically generated. Click here for the English version.

İmmünoloji ve Enfeksiyon

Saggi per il tasso di crescita specifico e la capacità di cella-associazione di Rotavirus

Published: January 28, 2019

doi:

10.3791/58821

Syun-suke Kadoya¹, Daisuke Sano^1,2

¹Department of Civil and Environmental Engineering,Tohoku University, ²Department of Frontier Science for Advanced Environment, Graduate School of Environmental Studies,Tohoku University

Özet

Qui presentiamo due protocolli, uno per misurare il tasso di crescita specifico e l’altro per la capacità di cella-associazione di rotavirus utilizzando il saggio della placca e RT-qPCR. Questi protocolli sono disponibili per la conferma le differenze nei fenotipi tra ceppi di rotavirus.

Abstract

Rotavirus è il fattore eziologico principale per diarrea infantile. È un virus a RNA double-stranded (ds) e forma una popolazione geneticamente eterogenea, nota come quasispecie, a causa del loro alto tasso di mutazione. Qui, descriviamo come misurare il tasso di crescita specifico e la capacità delle cellule-associazione di rotavirus come suoi fenotipi. Rotavirus è trattata con tripsina a riconoscere il recettore cellulare e quindi inoculati in colture cellulari MA104. Il supernatante, tra cui progenie virale, è raccolti in modo intermittente. Il saggio della placca viene utilizzato per confermare il titolo del virus (unità formanti placca: pfu) di ciascun supernatante raccolti. Il tasso di crescita specifico è stimato inserendo dati di tempo-corso di pfu/mL per il modello di Gompertz modificato. Nell’analisi della cella-associazione, MA104 cellule in una piastra a 24 pozzetti sono infettate da rotavirus e incubate per 90 min a 4 ° C per adsorbimento di rotavirus ai recettori delle cellule. Bassa temperatura trattiene rotavirus dall’invasione della cellula ospite. Dopo il lavaggio per rimuovere i virions non associati, RNA è Estratto da virioni associate ai recettori delle cellule seguiti dalla sintesi del cDNA e PCR quantitativa di d’inversione-trascrizione (RT-qPCR). Questi protocolli possono essere applicati per indagare le differenze fenotipiche tra ceppi virali.

Introduction

Virus del RNA forma una popolazione geneticamente eterogenea, nota come quasispecie¹, a causa del loro tasso di mutazione,² che è superiore a quello degli organismi basati sul DNA. Struttura della popolazione in quasispecie è influenzata da fattori genetici della popolazione, tra cui la deriva genetica, mutazione e selezione pressione. Ceppi all’interno di una singola stirpe genetico possono mostrare differenti fenotipi a causa della diversità genetica. Ad esempio, Devid et al ha mostrato che la sensibilità di cloro libero era differente fra ceppi murini norovirus che ha avuto origine da un ceppo di placca-purificato S7-PP3³.

Rotavirus (rotavirus di genere nella famiglia reoviridae) sono virus non capsulati ds RNA formando delle quasispecie². Oltre ai fattori genetici di popolazione sopra descritti, riassortimento genoma colpisce la diversità genetica del rotavirus perché questo virus ha 11 genoma segmentato⁴. I rotavirus causano diarrea principalmente fra gli infanti, e morti infantili nel 2013 sono stati stimati circa 250.000⁵. Due vaccini sono in uso in diversi paesi e sono stati efficaci nel ridurre l’onere dell’infezione di rotavirus, ma alcuni ricercatori stanno ora discutendo la presenza del vaccino-fuga mutanti⁶^,⁷^,⁸^, ⁹. la caratterizzazione di questi mutanti è importante capire i meccanismi del vaccino-fuga.

Qui, presentiamo protocolli per due saggi per valutare il tasso di crescita specifico e la capacità delle cellule-associazione di rotavirus al fine di comprendere le differenze fenotipiche tra ceppi/mutanti. La curva di crescita di rotavirus è stata presentata nei precedenti rapporti¹⁰, ma i parametri di crescita come il tasso di crescita specifico non sono di solito misurati. Un’analisi di cella-obbligatoria condotta precedentemente coinvolge la macchiatura immunofluorescente tecnica¹¹. Indichiamo qui metodi più facili di utilizzando il saggio della placca e la RT-qPCR, che ci permettono di discutere quantitativamente la differenza nei fenotipi virale. Questi metodi sono appropriati per la caratterizzazione dei fenotipi di rotavirus e infine possono contribuire alla costruzione di nuovi vaccini efficaci per genotipi multipli.

Protocol

1. preparazione media Per rendere un terreno di coltura cellulare (contenenti siero medio), è necessario aggiungere 4,7 g di polvere MEM di Eagle a 500 mL di acqua distillata. Sterilizzare in autoclave a 120 ° C per 20 min e lasciare che le medie raffreddare a temperatura ambiente. Aggiungere siero bovino fetale (concentrazione finale: 10%), L-Glutammina (2 mM), penicillina streptomicina (1%) e bicarbonato di sodio (1,125 g/L). Conservare a 4 ° C per 1 mese. Preparare il medium privo di siero per la propagazione di virus, come descritto nel passaggio 1.1, ma senza il siero bovino fetale. Conservare a 4 ° C per 1 mese. Per il dosaggio di placca, sterilizzare in autoclave 100 mL di medium di MEM di Eagle (non contenente rosso fenolo). Lasciate che il mezzo raffreddare alla temperatura ambiente e quindi aggiungere 2% FBS, 2% penicillina streptomicina, 4 mM L-Glutammina e 2,25 g/L di NaHCO3. Conservare a 4 ° C. Per il dosaggio di placca, sterilizzare 100 mL di gel di agarosio al 2,5% in autoclave. Preparare il gel lo stesso giorno che il saggio della placca è condotto. Conservare il gel a 47 ° C in un bagno d’acqua. 2. coltura cellulare Rimuovere un stoccaggio PROVETTE CRIOGENIA contenente linee cellulari MA104 dal contenitore di azoto liquido. Posizionare lo stoccaggio PROVETTE CRIOGENIA in un bagno di acqua a 37 ° C per scongelare le cellule. Aggiungere 1 mL di sospensione cellulare per 20 mL di terreno contenenti siero in una boccetta di T75. Incubare la beuta in un incubatore a 37 ° C e 5% CO2 per 2 o 3 giorni.Nota: La concentrazione finale delle cellule in sospensione è circa 106 cellule/mL. Una volta che il monostrato cellulare raggiunge 80% confluency, eliminare il surnatante e lavare le cellule due volte con 5 mL di 1 x PBS di Dulbecco (tamponato fosfato salino). Aggiungere 4 mL di tripsina-EDTA 0,05% al pallone e incubare a 37 ° C per 5 min staccare le cellule dal pallone. Trasferire la sospensione cellulare in una provetta da 15 mL e centrifugare a 190 x g per 5 min. Eliminare il supernatante e risospendere le cellule pellettate (106 cellule) in 1 mL di siero contenente medio preparato in 1.1. Diluire le cellule sedimento alle 100 volte con il mezzo. Aggiungere 3 mL di sospensione cellulare diluito in ciascun pozzetto di 6 pozzetti (per il dosaggio di placca) o piastre da 24 pozzetti (per il dosaggio di cella-associazione), rispettivamente. Incubare le piastre in un incubatore a 37 ° C e 5% CO2 sotto il vapore saturo per 2 o 3 giorni.Nota: Una boccetta di T75 è adatta raccogliere i campioni di corso di tempo perché il volume del campione del surnatante (1 mL) può essere ignorato rispetto al volume totale di surnatante (30 mL). Nel frattempo, il titolo infettivo del virus in ogni supernatante viene misurato dall’analisi della placca, che è solitamente condotto utilizzando una piastra a 6 pozzetti. Una piastra a 24 pozzetti è utilizzata per il dosaggio di cella-associazione. 3. tasso di crescita specifiche del Rotavirus Nota: Rotavirus rhesus (RRV, genotipo: G3P[3]) è utilizzata in questo protocollo perché RRV possono formare placche con cellule MA104 rapidamente e facilmente. Posto una provetta contenente 1 mL di sospensione di virus (107 pfu/mL) in un medium senza siero conservato a-80 ° C in bagnomaria a 37 ° C per lo scongelamento. Aggiungere 1 µ g / µ l tripsina da pancreas suino a 1 mL della sospensione di virus (concentrazione finale di tripsina è 4 µ g/mL) e poi vortice. Incubare la sospensione di virus a 37 ° C e 5% CO2 sotto il vapore saturo per 30 min.Nota: Tripsina dalle altre fonti può essere utilizzata, ma l’effetto sull’infettività rotavirus deve essere testato in anticipo. Diluire la sospensione di virus attivato con un medium senza siero per regolare la molteplicità di infezione (MOI) a 0,1 pfu/cella. Aggiungere 1 mL di sospensione di virus diluito a linee cellulari MA104 (80% confluenti) in un matraccio da T75 3 giorni dopo la cella placcatura (2.1), incubare a 37 ° C per 1 h e agitare delicatamente il matraccio ogni 15 min. Quindi, aggiungere 30 mL di un mezzo privo di siero contenente 0.13 µ g/mL di tripsina da un pancreas suino al pallone. Incubare la beuta a 37 ° C e 5% CO2 sotto il vapore saturo. Raccogliere 1 mL del surnatante in un matraccio a 0, 6, 12, 18, 24 e 36 (e/o 48) h post-infettiva (hpi) e sostituire il surnatante nelle provette da 1,5 mL utilizzando una pipetta. Condurre il congelamento (-80 ° C) e si fondono in un bagno di acqua a 37 ° C ciclo tre volte. Poi Centrifugare le provette a 12.600 x g per 10 min a 4 ° C. Raccogliere il surnatante. Filtrare il surnatante con un filtro da 0,2 µm distillata per rimuovere la frazione di cella. Conservare il surnatante-80 ° C in frigorifero fino a quando l’applicazione per l’analisi della placca per la misurazione il titolo del virus. Disporre le provette contenenti il surnatante raccolto (passo 3.5) in un bagno di acqua a 37 ° C. Aggiungere 4 tripsina µ g/mL a un 1 mL del campione diluito 10 volte e incubare a 37 ° C per 30 min. Durante l’incubazione di 30 min a 3.8, per iniziare l’analisi della placca per la misurazione il titolo del virus ottenuto da campioni di tempo corso (passo 3.5), lavare le cellule MA104 due volte in una piastra a 6 pozzetti con 2 mL di PBS 1x 1 dopo aver tolto il mezzo contenente siero. In serie di diluire i campioni incubati con un medium senza siero e inoculare 1 mL del campione diluito in ciascun pozzetto. Incubare la piastra per 90 min a 37 ° C e 5% CO2 sotto il vapore saturo e scuotere delicatamente la piastra ogni 15 min. Dopo l’incubazione, rimuovere l’inoculo dal piatto 6 pozzetti. Aggiungere 4 tripsina µ g/mL per il mezzo preparato al (punto 1.3). Delicatamente ma immediatamente aggiungere 3 mL di terreno miscelato con gel di agarosio (il rapporto è 1:1) in ciascun pozzetto. Tenere la piastra a temperatura ambiente per più di 10 min (fino a quando il gel dell’agarosi diventa solido) e incubare per 2 giorni a 37 ° C e 5% CO2 sotto il vapore saturo.Nota: Versare il medio miscelato con agar dal bordo del pozzo. Aggiungere 1 mL della soluzione rosso neutro 0.015% diluita con 1x PBS in ciascun pozzetto e incubare a 37 ° C e 5% CO2 sotto il vapore saturo. Rimuovere il colorante dopo 3 h e incubare per 1 giorno a 37 ° C e 5% CO2 sotto il vapore saturo. Il giorno successivo, contare il numero delle placche in ciascun pozzetto e calcolare la pfu/mL. Controllare attentamente la confluenza di cella prima del dosaggio di placca per assicurare i numeri di targa. 4. cell-associazione Assay Nota: Questo protocollo è basato su relazione13 di Gilling. Aggiungere 1 µ g / µ l tripsina da un pancreas suino a 1 mL della sospensione di virus (concentrazione finale di tripsina è 4 µ g/mL) e poi vortice (nello stesso modo come in 2.1). Diluire la sospensione di virus con un medium senza siero per regolare il MOI di 1 pfu/cella. Quindi, lavare le cellule MA104 due volte su piastra a 24 pozzetti con 1 ml di soluzione fisiologica tamponata (TBS; 2,53 g/L Tris base, 6,54 g/L NaCl, KCl, 0,3 g/L 0,046 g/l, Na2HPO4 raggiungere 1 L con acqua distillata). Inoculare 100 µ l di sospensione di virus diluito in ciascun pozzetto di una piastra a 24 pozzetti con cellule e incubare a 4 ° C per 90 min, con agitazione delicata ogni 15 min. Rimuovere l’inoculo di virus e lavare le cellule due volte con 1 mL di TBS. Per estrarre la doppia elica (ds) RNA il rotavirus, aggiungere 140 µ l di PBS: 1x e 560 µ l di tampone di estrazione RNA (Vedi Tabella materiali) in ciascun pozzetto. Mescolare adeguatamente con una pipetta (circa 10 volte o fino a quando la foschia o contaminante di cellule nel buffer non è visibile). Dopo aver recuperato il doppio incagliato RNA (dsRNA) secondo il protocollo del produttore, posizionare le provette da 1,5 mL contenente l’Estratto di dsRNA su un blocco di calore a 95 ° C per 5 min denaturare il dsRNA, quindi immediatamente mettere i tubi sul ghiaccio e incubare per più di 2 min. Sintetizzare il cDNA utilizzando una trascrizione inversa kit (Vedi Tabella materiali). Aggiungere 4 µ l di soluzione di RNA virale denaturato in una provetta PCR contenente 16 µ l di miscela (tabella 1) e mescolare accuratamente con una pipetta per non generare bolle. Rotazione verso il basso i tubi. Eseguire la trascrizione d’inversione con un termociclatore a condizione riportato nella tabella 2. Se il cDNA non viene utilizzato immediatamente, conservare la provetta PCR contenente il cDNA a-20 ° C fino a 1 anno. Utilizzare il primer per PCR quantitativa (Forward; 5′-ACCATCTACACATGACCCTC-3′, Reverse; 5′-GGTCACATAACGCCCC-3′)14 e una sonda inserendo un quencher (qPCR sonde; 5′- / FAM/ATGAGCACA/quencher/ATAGTTAAAAGCTAACACTGTCAA/TAMRA-3′), destinazione il 963 – regione di 1049 del NSP3 segmento di genoma di rotavirus (ST3 ceppo, GenBank: X81436).Nota: Quencher viene inserita la sonda progettata da Zeng et al.14 Diluire il plasmide standard in serie (101 106 copie/ml) con PCR grado acqua alla miscela qPCR (tabella 3) e rendere il mix master (20 µ l/campione) per qPCR seguendo la tabella 4. Aggiungere 20 µ l di master mix nel pozzetto di una piastra PCR a 96 pozzetti e poi mescolare 5 µ l di campioni di cDNA o 5 µ l di standard plasmide pipettando 10 volte. Avviare la reazione del sistema qPCR secondo le condizioni indicate nella tabella 4. Per calcolare il genoma di rotavirus associato alla superficie delle cellule MA104, regressione lineare tra i valori Ct e il numero di genoma noto di un plasmide standard di condotta e stimare numero di genoma del campione. Quindi calcolare il rapporto di associazione numeri virione alle cellule (Gt) a quelli di inoculo iniziale (G0).

Representative Results

Una panoramica dei due protocolli per il tasso di crescita specifico e il dosaggio di cella-associazione della placca-purificato ceppi RRV è mostrata in Figura 1A e 2A, rispettivamente. Nel test per il tasso di crescita specifico, il titolo del virus finale raggiunge più di 107 pfu/mL durante la propagazione su pallone T75. Se la concentrazione massima è inferiore a 107 pfu/mL, la cella MA104 non può diventare confluente o RRV non è stato attivato anche da tripsina. Alcuni modelli di crescita sono disponibili per stimare il tasso di crescita specifico utilizzando i dati di unità infettive. In questo protocollo, il modificato Gompertz modello12 è impiegato come un esempio; dove N0 (104 pfu/mL in questo studio) e Nt (104 -108 pfu/mL) sono il titolo infettive del virus (pfu/mL) a 0 e t (esempio: 0, 6, 12, 18, 24, 36) hpi, rispettivamente, A è il valore asintotico [log (N∞/N0 )] (esempio: 3-4), µ è il tasso di crescita specifico [1/h], e è la costante di Napier e λ è il periodo di ritardo [h]. Parametri del modello sono ottenuti tramite la funzione solver del software di analisi, che minimizza la somma dei quadrati della differenza tra i valori osservati e modellati. Nell’esempio in Figura 1B, il tasso di crescita specifico (µ) è stimato a 0.197 [1/h] e il periodo di ritardo (λ) è 6,61 [h] applicando il metodo di minimi quadrato per un modello di Gompertz modificato e il titolo del relativo virus presso la fase stazionaria al titolo iniziale ( scala logaritmica) (A) è 3.15 [log (N∞/n0)]. Abbiamo testato 6 cloni di rotavirus in totale, e i valori stimati del tasso di crescita specifico ha variato da 0,19 a 0,27 [1/h]. Questi stimati valori sono affidabili perché il coefficiente di valori di determinazione nel raccordo modello è più di 0.98. Virioni RRV associazione a superfici delle cellule erano circa 103 copie/mL (associazione efficienza era di circa 1%) quando si utilizza una piastra a 24 pozzetti per l’analisi delle cellule-obbligatoria (Figura 2B). Il test è condotto solitamente tre volte per ogni campione, e se una grande varianza del numero di copia è osservata in un campione, potrebbero verificarsi alcuni problemi quali l’attivazione sovra-lavaggio e insufficiente di RRV di tripsina. Il valore Ct di qPCR superiore a circa 36.0 non è preferibile ed è considerato per essere inferiore a un limite di rilevazione nella nostra condizione di qPCR. Volume / 1 reazione 5 x PrimeScript Buffer Μ l 4.0 PrimeScript RT enzima mescolare I 1,0 Μ l Oligo dT Primer 1,0 Μ l 6 mers casuale Μ l 4.0 Acqua distillata deionizzata 6,0 Μ l campione di ssRNA Μ l 4.0 Totale 20,0 Μ l Tabella 1: Master mix di composizione per la sintesi del cDNA del genoma di rotavirus. Temperatura [° C] Tempo 37 15 min 42 15 min 85 5 s 4 ∞ Tabella 2: Condizione di reazione per la sintesi del cDNA del genoma di rotavirus. Reazione di volume/1 Premiscela Taq 12,5 Μ l Forward primer (10 µM) 0,5 Μ l Reverse primer (10 µM) 0,5 Μ l Sonda (10 µM) 0,5 Μ l Tintura di riferimento II 0,5 Μ l Acqua distillata deionizzata 5,5 Μ l campione di cDNA 5,0 Μ l Totale 25 Μ l Tabella 3: Master mix composizione per PCR quantitativa del rotavirus un genoma. Temperatura [° C] Tempo 95 5 min 94 20 s ciclo di 45 60 1 min 72 5 min Tabella 4: Condizioni di reazione per PCR quantitativa del rotavirus un genoma. Figura 1: Panoramica schematica della stima di crescita di rotavirus e la curva di crescita di rotavirus. (A) l’unità infettiva del rotavirus è misurata con il saggio della placca. (B) la curva (linea blu) è stata approssimata dal modello di Gompertz modificato sulla base dei dati osservati nel nostro laboratorio (cerchio bianco). Il tasso di crescita specifico [µ]; 0.197 [h-1], periodo di ritardo (λ); 6,61 [h], il titolo del relativo virus presso la fase stazionaria al titolo iniziale (scala logaritmica) (A); 3.15 [log (N∞/n0)]. Clicca qui per visualizzare una versione più grande di questa figura. Figura 2: schema generale e risultato rappresentativo del dosaggio cellula-associazione di cinque ceppi RRV purificato dalle placche nel nostro laboratorio. (A) A piastra di coltura delle cellule inoculato con rotavirus viene incubato a 4 ° C per inibire l’invasione di virus nelle cellule. Dopo l’incubazione e la rimozione di particelle virali non associate alle cellule, quantificare il numero di genomi provenienti da particelle virali associate alla superficie delle cellule con RT-qPCR. (B) il risultato del cellula-binding assay è stato visualizzato come efficienza (%), che era il rapporto di particelle virali associati a quelli presenti nell’inoculo di associazione. Bar grassetto: mediano, fine delle caselle: deviazione quartile, fine linea: massimo e minimo. Clicca qui per visualizzare una versione più grande di questa figura.

Discussion

Il nostro protocollo per misurare il tasso di crescita specifico è più facile di quelli precedenti e può essere adattato per altri virus a meno che il loro sistema di coltura cellulare non è ancora stata stabilita. In questo studio, abbiamo usato RRV (G3P[3]) perché questo ceppo può formare placche più facile che i rotavirus umani quando si utilizzano linee cellulari MA104. Alcuni ceppi di rotavirus umano non possono formare delle placche in questa linea cellulare. Pertanto, anziché il saggio della placca, la messa a fuoco che formano unità (FFU) dosaggio¹⁵ o mediana coltura tissutale dose infettiva (TCID50) test può essere applicato per molti ceppi di rotavirus¹⁶. Il protocollo presentato per determinare il tasso di crescita specifico può essere utilizzato per altri tipi di virus, ma non è adatto per i virus per i quali non è stabilito nessun sistema di coltura cellulare stabilito. Prima di iniziare l’esperimento per il tasso di crescita specifico, è meglio sapere in anticipo quando il titolo infettive del virus inizia ad aumentare e raggiunge la fase stazionaria in un test preliminare. Se troppi placche sono presenti, il saggio della placca dovrebbe essere condotto nuovamente dopo la modifica il tasso di diluizione dei campioni di virus. post-L’infezione ore (hpi) per raccogliere campioni sono importanti anche perché la pendenza della fase di crescita esponenziale può essere sottovalutata se il punto di tempo proprio per raggiungere la fase stazionaria è perso. Nell’approssimazione del modello modificato di Gompertz, un coefficiente di determinazione dovrebbe sempre essere calcolato e controllato. Se l’idoneità per il modello modificato di Gompertz è bassa, altri modelli di crescita come il modello logistico modificato¹² possono essere preferibile.

Nella gestione delle cellule, quando si rimuove l’inoculo medio o virus, il PBS per lavaggio o dell’agarosi gel per saggio della placca deve essere prontamente aggiunto a ciascuno bene di una piastra di coltura delle cellule per impedire le cellule dalla secchezza. Allo stesso tempo, si deve versare delicatamente PBS o agarosio alle cellule di non staccare dai pozzi. Questo passaggio è il più importante in entrambe le analisi (passo 3.9 e 3.11). Se il saggio di placca ha troppi campioni, si consiglia di suddividere il gel di agarosio (100 mL ogni massima è consigliata) in diverse bottiglie medie e mantenere le bottiglie caldo fino appena prima dell’uso dal agarosio gel è solidificato all’interno di circa 10 min a camera temperatura. Poiché la tripsina è vulnerabile a alte temperature¹⁷, una soluzione di tripsina dovrebbe aggiungersi un medium ed agarosio per il saggio della placca dopo aver fatto raffreddare adeguatamente.

Nell’analisi della cella-associazione, l’incubazione per l’associazione del virus alle cellule deve essere fatto a 4 ° C per impedire l’invasione delle cellule. Secondo metodo¹³, di Gilling le cellule sono inclini a essiccazione a basse temperature, quindi agitazione delicata è necessaria ogni 15 minuti durante l’incubazione. Il kit di estrazione di RNA utilizzato qui può essere sostituito per altri kit. La pendenza della curva standard in RT-qPCR dovrebbe essere circa 3.3, e il coefficiente di determinazione dovrebbe essere più di 0.98. Rispetto al microscopio di fluorescenza per visualizzare la localizzazione del virus nelle cellule, il dosaggio è più rapida e più facile da usare perché l’associazione di sostanze fluorescenti ai virus non è necessario.

Recentemente, enteroid intestinale umano (HIE), esibendo una simile composizione cellulare e funzione come epitelio gastrointestinale umano, è diventato disponibile per rotavirus propagazione¹⁸. L’uso di HIE può permetterci di valutare il tasso di crescita specifico e la capacità di cella-associazione di non-coltivabili ceppi di rotavirus. Inoltre, entrambi gli esperimenti descritti qui possono essere applicati alla valutazione degli effetti della droga su entrambi fenotipi¹⁹. I protocolli qui presentati rendono possibile quantitativamente discutere i cambiamenti nei valori di parametro di fenotipo di ceppi di rotavirus in varie condizioni.

Açıklamalar

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Questo lavoro è stato supportato dal progetto “The Sanitation valore catena: progettazione di servizi igienico-sanitari sistemi come Eco-comunità valore sistema”, ResearchInstitute per l’umanità e la natura (RIHN, progetto No.14200107).

Materials

7500 Real Time PCR System	Applied Biosystems		qPCR
Agar-EPI	Nakalai Tesque, Inc	01101-34	Plaque assay
Disodium Hydrogenphosphate	Wako Pure Chemical Corporation	194-02875	Cell binding assay
Eagle's MEM "Nissui"	Nissui Pharmaceutical Co., Ltd	_05900	Cell culture
Eagle's MEM "Nissui"	Nissui Pharmaceutical Co., Ltd	_05901	Plaque assay
EasYFlask 75 cm2	Thermo Scientific	156499	Cell culture
Fetal bovine Serim, qualified, USDA-approved regions	Gibco	10437028	Cell culture and Plaque assay
Forward / Reverse primers	Eurofins Genomics		qPCR
L-Glutamine, 200 mM Solution	Gibco	2530081	Cell culture and Plaque assay
Neutral Red	Wako Pure Chemical Corporation	140-00932	Plaque assay
PBS (-) "Nissui"	Nissui Pharmaceutical Co., Ltd	_05913	Cell culture and Plaque assay
Penicillin-Streptomycin, Liguid	Gibco	15140122	Cell culture and Plaque assay
Potassium Chloride	Wako Pure Chemical Corporation	163-03545	Cell binding assay
Premix ExTaq (Perfect Real Time)	TAKARA Bio Inc.	RR039A	qPCR
PrimeScriptTN RT reagent Kit (Perfect Real Time)	TAKARA Bio Inc.	RR037A	cDNA synthesis
PrimeTime qPCR Probes	Medical and Biological Laboratories Co., Ltd.		qPCR
QIAamp Viral RNA Mini Kit	QIAGEN	52904	RNA extraction
Sodium Bicarbonate	Wako Pure Chemical Corporation	199-05985	Cell culture and Plaque assay
Sodium Chloride	Wako Pure Chemical Corporation	198-01675	Cell binding assay
Tissue culture plates 24-well plate	TPP	92024	Cell binding assay
Tissue culture plates 6-well plate	TPP	92006	Plaque assay
Trizma base	SIGMA-ALDRICH	T1503	Cell binding assay
Trypsin from porcine pancrease	SIGMA-ALDRICH	T0303-1G	Activate for rotavirus
Trypsin-EDTA (0.05 %), phenol red	Gibco	25300054	Cell culture
Vertical 96-Well Thermal Cycler	Applied Biosystems		cDNA synthesis

Referanslar

Domingo, E. Rna Virus Mutations. Annual review of microbiology. 51, 151-178 (1997).
Gouvea, V., Brantly, M. Is rotavirus a population of reassortants?. Trends in Microbiology. 3, 159-162 (1995).
Rachmadi, A. T., Kitajima, M., et al. Free-chlorine disinfection as a selection pressure on norovirus. Applied and Environmental Microbiology. 84, (2018).
Ghosh, S., Kobayashi, N. Whole-genomic analysis of rotavirus strains: current status and future prospects. Future Microbiology. 6, 1049-1065 (2011).
Tate, J. E., Burton, A. H., Boschi-Pinto, C., Steele, A. D., Duque, J., Parashar, U. D. 2008 estimate of worldwide rotavirus-associated mortality in children younger than 5 years before the introduction of universal rotavirus vaccination programmes: A systematic review and meta-analysis. The Lancet Infectious Diseases. 12, 136-141 (2008).
Franco, M. A., Angel, J., Greenberg, H. B. Immunity and correlates of protection for rotavirus vaccines. Vaccine. 24, 2718-2731 (2006).
Santos, N., Hoshino, Y. Global distribution of rotavirus serotypes/ genotypes and its implication for the development and implementation of an effective rotavirus vaccine. Reviews in Medical Virology. 15, 29-56 (2005).
Matthijnssens, J., Heylen, E., Zeller, M., Rahman, M., Lemey, P., Van Ranst, M. Phylodynamic analyses of rotavirus genotypes G9 and G12 underscore their potential for swift global spread. Molecular Biology and Evolution. 27, 2431-2436 (2010).
Mukhopadhya, I., Murdoch, H., et al. Changing molecular epidemiology of rotavirus infection after introduction of monovalent rotavirus vaccination in Scotland. Vaccine. 35, 156-163 (2017).
Londrigan, S. L., Hewish, M. J., Thomson, M. J., Sanders, G. M., Mustafa, H., Coulson, B. S. Growth of rotaviruses in continuous human and monkey cell lines that vary in their expression of integrins. Journal of General Virology. 81, 2203-2213 (2000).
Hewish, M. J., Takada, Y., Coulson, B. S. Integrins a2b1 and a4b1 can mediate SA11 rotavirus attachment and entry into cells. Journal of Virology. 74, 228-236 (2000).
Zwietering, M. H., Jongenburger, I., Rombouts, F. M., van’t Riet, K. Modeling of the bacterial growth curve. Applied and Environmental Microbiology. 56, 1875-1881 (1990).
Gilling, D. H., Kitajima, M., Torrey, J. R., Bright, K. R. Mechanisms of antiviral action of plant antimicrobials against murine norovirus. Applied and Environmental Microbiology. 80, 4898-4910 (2014).
Zeng, S. Q., Halkosalo, A., Salminen, M., Szakal, E. D., Puustinen, L., Vesikari, T. One-step quantitative RT-PCR for the detection of rotavirus in acute gastroenteritis. Journal of Virological Methods. 153, 238-240 (2008).
Rolsma, M. D., Gelberg, H. B., Kuhlenschmidt, M. S. Assay for evaluation of rotavirus-cell interactions: identification of an enterocyte ganglioside fraction that mediates group A porcine rotavirus recognition. Journal of Virology. 68, 258-268 (1994).
Brüssow, H., Hilpert, H., Walther, I., Sidoti, J., Mietens, C., Bachmann, P. Bovine milk immunoglobulins for passive immunity to infantile rotavirus gastroenteritis. Journal of Clinical Microbiology. 25, 982-986 (1987).
Outzen, H., Berglund, G. I., Smalås, A. O., Willassen, N. P. Temperature and pH sensitivity of trypsins from Atlantic salmon (Salmo salar) in comparison with bovine and porcine trypsin. Comparative Biochemistry and Physiology – B Biochemistry and Molecular Biology. 115B, 33-45 (1996).
Saxena, K., Blutt, S. E., et al. Human Intestinal Enteroids: a New Model To Study Human Rotavirus Infection, Host Restriction, and Pathophysiology. Journal of Virology. 90, 43-56 (2016).
Yin, Y., Bijvelds, M., et al. Modeling rotavirus infection and antiviral therapy using primary intestinal organoids. Antiviral Research. 123, 120-131 (2015).

Etiketler

Rotavirus Plaque Assay Cell-binding Assay MA104 Cell Line Cell Culture Virus Titer Disinfectant-resistant Strains Phenotypic Change Virus Propagation Virus Activation Multiplicity Of Infection (MOI)

Play Video

PDF

DOI

DOWNLOAD MATERIALS LIST

Bu Makaleden Alıntı Yapın

Kadoya, S., Sano, D. Assays for the Specific Growth Rate and Cell-binding Ability of Rotavirus. J. Vis. Exp. (143), e58821, doi:10.3791/58821 (2019).