Qui, presentiamo un protocollo per caratterizzare le particelle nucleosoma a livello di singola molecola tramite microscopia a forza atomica statico e time-lapse (AFM) tecniche di imaging. Il metodo di funzionalizzazione superficiale descritto consente per la cattura della struttura e dinamica dei nucleosomi in alta risoluzione nanometrica.
Cromatina, che è una lunga catena di subunità nucleosoma, è un sistema dinamico che permette tali processi critici come replicazione del DNA e la trascrizione di prendere posto nelle cellule eucariotiche. La dinamica dei nucleosomi fornisce l’accesso al DNA di replicazione e trascrizione macchinari e criticamente contribuisce ai meccanismi molecolari sottostanti le funzioni della cromatina. Studi di singola molecola come microscopia a forza atomica (AFM) imaging hanno contribuito notevolmente alla nostra comprensione corrente del ruolo del nucleosoma struttura e dinamica. L’attuale protocollo viene descritta la procedura di attivazione di tecniche di imaging ad alta risoluzione AFM studiare le proprietà strutturali e dinamiche di nucleosomi. Il protocollo è illustrato dai dati AFM ottenuti per i nucleosomes centromero in cui istone H3 è sostituito con proteina di sua controparte centromero (CENP-A). Il protocollo inizia con l’Assemblea del mono-nucleosomi utilizzando un metodo di diluizione di continuo. La preparazione del substrato mica funzionalizzato con amminopropil silatrane (APS-mica) che viene utilizzato per l’imaging del nucleosoma è critica per la visualizzazione di AFM dei nucleosomi descritto e viene fornita la procedura per preparare il substrato. Nucleosomi depositati sulla superficie della APS-mica sono prima Imaging utilizzando statico AFM, che cattura un’istantanea della popolazione nucleosoma. Dall’analisi di queste immagini, parametri quali la dimensione del DNA avvolto intorno i nucleosomes possono essere misurate e questo processo è anche dettagliato. Il time-lapse AFM procedura nel liquido di imaging è descritto per l’alta velocità AFM time-lapse che può catturare diversi frame delle dinamiche nucleosoma al secondo. Infine, l’analisi delle dinamiche del nucleosoma consentendo la caratterizzazione quantitativa dei processi dinamici è descritta e illustrata.
Nelle cellule eucariotiche, il DNA è altamente condensata e organizzato in cromosomi. 1 il primo livello di organizzazione del DNA all’interno di un cromosoma è l’Assemblea di nucleosomi in cui 147 bp di DNA è strettamente avvolto intorno ad un nucleo istonico istone. 2 , 3 particelle nucleosome montare su una lunga molecola di DNA che formano una matrice di cromatina che viene organizzata fino a formare un’unità estremamente compatta del cromosoma. 4 il disassemblaggio della cromatina fornisce l’accesso per liberare il DNA richiesto dalla critici processi cellulari quali la replica di genoma e trascrizione genica, suggerendo che quella della cromatina è un sistema altamente dinamico. 5 , 6 , 7 comprendere le proprietà dinamiche del DNA a vari livelli di cromatina è criticamente importante per il delucidamento processi genetici a livello molecolare, dove gli errori possono portare alla morte delle cellule o lo sviluppo di malattie come il cancro. 8 una proprietà della cromatina di grande importanza è la dinamica dei nucleosomi. 9 , 10 , 11 , 12 l’alta stabilità di queste particelle ha permesso per la caratterizzazione strutturale mediante tecniche cristallografiche. 2 quali mancanza di questi studi sono unwrapping dal nucleo dell’istone; i dettagli dinamici di nucleosomi come il meccanismo del DNA il percorso dinamico di cui è necessario per i processi di trascrizione e replicazione. 7 , 9 , 13 , 14 , 15 , 16 inoltre, speciali proteine chiamate fattori di rimodellamento sono stati indicati per facilitare lo smontaggio di particelle nucleosomal17; Tuttavia, la dinamica intrinseca dei nucleosomi è il fattore critico in questo processo che contribuisce al processo intero smontaggio. 14 , 16 , 18 , 19
Tecniche di singola molecola come singola molecola fluorescenza19,20,21, intrappolamento ottico (pinzette)13,18,22,23 e AFM 10 , 14 , 15 , 16 , 24 , 25 , 26 sono stati strumentale nella comprensione delle dinamiche di nucleosomi. Tra questi metodi, AFM beneficia di diverse caratteristiche uniche e interessanti. AFM permette di visualizzare e caratterizzare singoli nucleosomi, nonché il più lungo di matrici27. Dalle immagini AFM, caratteristiche importanti della struttura del nucleosoma ad esempio la lunghezza del DNA avvolto intorno al nucleo dell’istone possono essere misurati 10,14,26,28; un parametro fondamentale per la caratterizzazione della dinamica unwrapping nucleosoma. Passato AFM studi hanno rivelato nucleosomi per essere sistemi altamente dinamici e che il DNA può spontaneamente unwrap dal nucleo dell’istone14. L’unwrapping spontanea del DNA da nucleosomi direttamente è stato visualizzato da AFM di funzionamento in modalità Time-lapse quando l’imaging avviene in soluzioni acquose 14,26,29.
L’avvento della strumentazione ad alta velocità Time-lapse AFM (HS-AFM) ha permesso di visualizzare il processo unwrapping nucleosoma al millisecondo scala tempo 14,15,24. Recenti studi di30 16,HS-AFM di nucleosomi specifico centromero ha rivelato parecchie caratteristiche romanzo dei nucleosomes rispetto al tipo canonico. Nucleosomi centromero si costituiscono di un centromero, una piccola parte del cromosoma criticamente importante per cromosoma segregazione31. A differenza dei nucleosomi canonici nella cromatina di massa, il nucleo dell’istone di nucleosomi centromero contiene istone CENP-A invece di istone H332,33. A seguito di questa sostituzione dell’istone, avvolgimento del DNA in nucleosomi centromero è ~ 120 bp invece la 147 ~ bp per canoniche nucleosomi; una differenza che può portare a diverse morfologie del centromero e canonici nucleosomi matrici34, suggerendo che cromatina centromero subisce dinamica superiore confrontato con la maggior parte uno. La dinamica romanzo visualizzata da nucleosomi centromero negli studi di30 16,HS-AFM esemplificano l’opportunità unica fornita da questa tecnica di singola molecola di visualizzare direttamente le proprietà strutturali e dinamiche di nucleosomi. Esempi di queste funzionalità saranno brevemente discusso e illustrati alla fine del libro. Questo progresso è stato effettuato a causa dello sviluppo di nuovi protocolli per formazione immagine AFM di nucleosomi, nonché le modifiche dei metodi esistenti. L’obiettivo del protocollo descritto qui è di rendere questi entusiasmanti progressi negli studi di singola molecola AFM nucleosoma accessibile a chiunque abbia voglia di utilizzare queste tecniche nelle loro indagini della cromatina. Molte delle tecniche descritte sono applicabili a problemi oltre lo studio dei nucleosomi e può essere utilizzati per indagini di altre proteine e DNA sistemi di interesse. Alcuni esempi di tali applicazioni possono essere trovati in pubblicazioni35,36,37,38,39,40,41, 42,43,44,45,46,47,48,49 e prospettive di AFM studi di vari sistemi biomolecolari sono date in recensioni29,50,51,53,54.
Il protocollo descritto sopra è piuttosto semplice e fornire risultati altamente riproducibili, anche se alcuni problemi importanti possono essere enfatizzati. Funzionalizzati APS-mica è un substrato fondamentale per ottenere risultati affidabili e riproducibili. Un’elevata stabilità di APS-mica è una delle caratteristiche importanti di questo substrato che permette di preparare il substrato imaging in anticipo per l’uso che può essere utilizzato almeno due settimane dopo la fase di preparazione. 5…
The authors have nothing to disclose.
Autore di contributi: YLL e MSD progettato il progetto; MSD assemblati nucleosomi. MSD e ZS eseguite analisi di esperimenti e dati AFM. Tutti gli autori ha scritto e modificato il manoscritto.
Plasmid pGEM3Z-601 | Addgene, Cambridge, MA | 26656 | |
PCR Primers | IDT, Coralville, IA | Custom Order | (FP) 5'- CAGTGAATTGTAATACGACTC-3' (RP) 5'-ACAGCTATGACCATGATTAC-3' |
DreamTaq polymerase | ThermoFischer Scientific, Waltham, MA | EP0701 | Catalog number for 200 units |
PCR purification kit | Qiagen, Hilden, Germany | 28104 | Catalog number for 50 units |
Tris base | Sigma-Aldrich, St. Louis, MO | 10708976001 | Catalog number for 250 g |
EDTA | ThermoFischer Scientific, Waltham, MA | 15576028 | Catalog number for 500 g |
(CENP-A/H4)2, recombinant human | EpiCypher, Durham, NC | 16-0010 | Catalog number for 50 ug |
H2A/H2B, recombinant human | EpiCypher, Durham, NC | 15-0311 | Catalog number for 50 ug |
H3 Octamer, recombinant human | EpiCypher, Durham, NC | 16-0001 | Catalog number for 50 ug |
Slide-A-Lyzer MINI Dialysis Device Kit, 10K MWCO, 0.1 mL | ThermoFischer Scientific, Waltham, MA | 69574 | Catalog number for 10 devices |
Sodium Chloride | Sigma-Aldrich, St. Louis, MO | S9888-500G | Catalog number for 500 mg |
Amicon Ultra-0.5 mL Centrifugal Filters | Millipore-sigma, Burlington, MO | UFC501008 | Catalog number for 8 devices |
HCl | Sigma-Aldrich, St. Louis, MO | 258148-25ML | Catalog number for 25 mL |
Tricine | Sigma-Aldrich, St. Louis, MO | T0377-25G | Catalog number for 25 g |
SDS | Sigma-Aldrich, St. Louis, MO | 11667289001 | Catalog number for 1 kg |
Ammonium Persulfate (AmmPS) | Bio-Rad, Hercules, CA | 1610700 | Catalog number for 10 g |
30% Acrylamide/Bis Solution, 37.5:1 | Bio-Rad, Hercules, CA | 1610158 | Catalog number for 500 mL |
TEMED | Bio-Rad, Hercules, CA | 1610800 | Catalog number for 5 mL |
4x Laemmli protein sample buffer for SDS-PAGE | Bio-Rad, Hercules, CA | 1610747 | Catalog number for 10 mL |
2-ME | Sigma-Aldrich, St. Louis, MO | M6250-10ML | Catalog number for 10 mL |
ageRuler Prestained Protein Ladder | ThermoFischer Scientific, Waltham, MA | 26616 | Catalog number for 500 uL |
Bio-Safe™ Coomassie Stain | Bio-Rad, Hercules, CA | 1610786 | Catalog number for 1 L |
Nonwoven cleanroom wipes: TX604 TechniCloth | TexWipe, Kernersvile, NC | TX604 | |
Muscovite Block Mica | AshevilleMica, Newport News, VA | Grade-1 | |
Aminopropyl silatrane (APS) | Synthesized as described in 22 | ||
HEPES | Sigma-Aldrich, St. Louis, MO | H4034-25G | Catalog number for 25 g |
Scotch Tape | Scotch-3M, St. Paul, MN | ||
TESPA-V2 afm probe (for static imaging) | Bruker AFM Probes, Camarillo, CA | ||
MSNL-10 afm probe (for standard time-lapse imaing) | Bruker AFM Probes, Camarillo, CA | ||
Aron Alpha Industrial Krazy Glue | Toagosei America, West Jefferson, OH | AA480 | Catalog number for 2 g tube |
MgCl2 | Sigma-Aldrich, St. Louis, MO | M8266-100G | Catalog number for 100 g |
Millex-GP Filter, 0.22 µm | Sigma-Aldrich, St. Louis, MO | SLGP05010 | Catalog number for 10 devices |
BL-AC10DS-A2 afm probe (for HS-AFM) | Olympus, Japan | ||
Compound FG-3020C-20 | FluoroTechnology Co., Ltd., Kagiya, Kasugai, Aichi, Japan | ||
Compound FS-1010S135-0.5 | FluoroTechnology Co., Ltd., Kagiya, Kasugai, Aichi, Japan | ||
MultiMode Atomic Force Microscope | Bruker-Nano/Veeco, Santa Barbara, CA | ||
High-Speed Time-Lapse Atomic Force Microsocopy | Toshio Ando, Nano-Life Science Institute, Kanazawa University, Kakuma-machi, Kanazawa, Japan |