Özet

Модель человека печени химерных мыши семейной гиперхолестеринемией, с помощью индуцированных плюрипотентных стволовых клеток гепатоцитов

Published: September 15, 2018
doi:

Özet

Здесь мы представляем протокол для создания человеческой печени химерных мыши модели семейной гиперхолестеринемией, используя человеческое индуцированных плюрипотентных стволовых клеток гепатоцитов. Это является полезной моделью для тестирования новых терапий для гиперхолестеринемии.

Abstract

Семейной гиперхолестеринемией (FH) в основном вызвано мутациями липопротеинов низкой плотности рецептора (LDLR) и приводит к повышенным риском сердечно-сосудистых заболеваний раннего начала из-за заметное повышение ЛПНП в крови холестерина (LDL-C). Статины являются первой линией гиполипидемические препараты для лечения FH и другие виды гиперхолестеринемии, но появляются новые подходы, в частности PCSK9 антител, которые в настоящее время проходит испытания в клинических испытаниях. Изучить новые терапевтические подходы для FH, новых лекарств или новых формулировок, мы должны надлежащим в естественных условиях модели. Однако различия в метаболические профили липидов, по сравнению с людьми являются ключевой проблемой доступных животных моделей FH. Для решения этой проблемы, мы породили модель человеческой печени химерных мыши, с помощью FH индуцированных плюрипотентных стволовых клеток (iPSC)-производных гепатоцитов (iHeps). Мы использовали/Ldlr– / –/Rag2– / –/Il2rg– / – (LRG) мышах, чтобы избежать иммунной неприятие трансплантированных человеческих клеток и для оценки эффекта LDLR-дефицит iHeps в LDLR null фон. Пересаженные FH iHeps может населить 5-10% печени мыши LRG основе человеческого альбумина пятнать. Кроме того прижившимися iHeps ответил гиполипидемические препараты и резюмировалась клинические наблюдения повышенной эффективности PCSK9 антител, по сравнению с статины. Наши человеческой печени химерных модель таким образом может быть полезным для доклинических испытаний новых терапий для FH. Используя тот же протокол, аналогичных человеческой печени химерных мышей для других генетических вариантов FH или мутации, соответствующий других наследственных заболеваний печени, также могут быть созданы.

Introduction

Рецептор липопротеинов низкой плотности (LDLR) захватывает LDL холестерина (LDL-C) в крови, чтобы модулировать синтез холестерина в печени. Мутации в гене LDLR являются наиболее частой причиной семейной гиперхолестеринемией (FH)1. Статины традиционно первая линия препаратов для лечения FH и другие виды гиперхолестеринемии (унаследованные или приобретенных). Статины препятствовать 3-гидрокси-3-methylglutaryl кофермент редуктазы снизить синтез холестерина в печени2. Кроме того статины увеличить уровень LDLR на поверхности гепатоцитов содействовать плазмы LDL-C разминирование. Однако основных предостережение лечения статинами является, что они одновременно стимулировать выражение proprotein конвертазы Субтилизин/ОА 9 (PCSK9), фермент, который привязывается к LDLR для содействия ее деградации3. Этот эффект отвечает за недостаточное или даже null ответ на статинов у многих пациентов. Изучая этот механизм неожиданно, привело к открытию альтернативный способ лечения гиперхолестеринемии. PCSK9 антитела, недавно утвержденных FDA в настоящее время используется в клинических испытаниях и показать более высокой эффективности и лучшего терпимости чем статины4. Успех PCSK9 антител также подразумевает, что могут существовать другие терапевтические возможности для модуляции путь деградации LDLR (кроме PCSK9) у больных с гиперхолестеринемией. Аналогичным образом есть интерес к разработке новых ингибиторов PCSK9 помимо антител, например, siRNA oligos5.

Для тестирования новых терапий для FH и вообще любой другой тип гиперхолестеринемии, необходимы соответствующие в естественных условиях модели. Основной проблемой текущего в естественных условиях модели, основном мышей6 и кроликов7, являются их физиологические различия с людьми. Самое главное эти проблемы включают различные липидного метаболизма профиля. Поколение человеческой печени животных химерных8 может помочь преодолеть этот нюанс. Человеческой печени химерных мышь — это тип «гуманизированные» мышь с ее печень, заселена с человека гепатоцитов, например, основного человеческого гепатоцитов (ПГГ)9. Проблема с ПГГ состоит в том, что они не могут быть расширенной ex vivo, быстро теряют свою функцию после изоляции, и ограниченным источником. Альтернативой ПГГ является использование индуцированных плюрипотентных стволовых клеток (iPSC)-производных гепатоцитов (iHeps)10. Примечательно iPSCs конкретного пациента и может выращиваться на неопределенный срок, поэтому iHeps могут быть изготовлены по требованию, которая является значительным преимуществом над свежие ПГГ. Кроме того iPSCs также может быть легко генной инженерии с конструктора nucleases исправления или вводить мутации в isogenic фон, чтобы позволить более верным сравнения11.

Человеческой печени химерных мышь с прижившимися ПГГ показать сходство с людьми в печени метаболические профили, наркотиков ответы и восприимчивость к инфекции вируса гепатита12. Это делает их хорошей моделью для изучения гиперлипидемии в естественных условиях. Наиболее широко используемый мыши модели основаны на/фа– / –/Rag2– / –/Il2rg– / – (ФРГ) мыши13 и УПА трансгенные мыши8, в котором до 95% мыши печени могут быть заменены ПГГ. Интересно, что недавний доклад описал человека FH печени химерных мышь (основанный на мыши ФРГ) с ПГГ от пациента, перевозящих гомозиготных мутации LDLR 14. В этой модели repopulated человека гепатоцитов без функциональных LDLR, но остаточный мыши гепатоцитов сделал, тем самым уменьшая утилита для выполнения в vivo тестирование препаратов, опираясь на LDLR пути.

Здесь мы приводим подробный протокол, основанный на наших недавно опубликованной работе15 за отлаживание FH iHeps в/Ldlr– / –/Rag2– / –/Il2rg– / – (LRG) мыши печени. Эта человеческой печени химерных мышь является полезным для моделирования FH и выполнения тестирования на наркотики в vivo.

Protocol

Все описанные здесь методы, которые предполагают использование животных были утверждены Комитетом по использовать Live животных в области преподавания и научных исследований (CULATR) из университета Гонконга. 1. мышь, подготовка и фенотипические тестирования Поко?…

Representative Results

Направленного дифференцирования человека iPSCs в iHepsПри достижении 70% слияния, человеческие iPSCs дифференцированы в iHeps с 3-х ступенчатая протокол16 (рис. 1 верхняя группа). После 3 дней дифференцировки энтодермы iPSC колонии становятся …

Discussion

Предыдущие исследования с использованием iHeps грызунов подтвердили, что они являются эффективным способом для изучения наследственных заболеваний печени17. Для дальнейшего расширения использования этой технологии и потому что текущих FH Животные модели субоптимальные, мы …

Açıklamalar

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Эта работа была поддержана Shenzhen науки и технологии Совета основной исследовательской программы (JCYJ20150331142757383), стратегической приоритетной исследовательской программы Китайской академии наук (XDA16030502), Гонконг грант Совета темы на основе исследования Схема (T12-705/11), программа сотрудничества Фонда Национальный природный науки Китая (N-HKU730/12 и 81261160506), команда исследовательского проекта Гуандун естественных наук и научно-исследовательских грантов Совета Специального административного района Гонконг Фонд (2014A030312001), Гуанчжоу науки и технологий программы (201607010086) и провинции Гуандун науки и технологии программы (2016B030229007 и 2017B050506007).

Materials

Materials
40 µm Cell strainer BD B4-VW-352340
6-Well plate Thermofisher 140675 Extracellular matrix coated
Accutase Millipore SCR005
Acetylcholine Sigma Aldrich A6625 Dissolve in water
Antigen retrieval solution IHC World IW-1100-1L
Calcium chloride Sigma Aldrich C8106 CaCl2
Cell dissociation enzyme Thermofisher 12604-013 TrypLE
D-glucose Sigma Aldrich D8270
Dimethyl sulfoxide Sigma Aldrich D5879 DMSO
DMEM Thermofisher 10829 Knockout DMEM
DNase I Roche 11284932001
EDTA USB 15694 0.5 M, PH=8.0
Extracellular matrix (for cell suspension) Corning 354234 Matrigel
Extracellular matrix (for iHep differentiation) Corning 354230 Matrigel
Hepatocyte basal medium Lonza CC-3199
Hepatocyte culture medium Lonza CC-3198
High-fat and high-cholesterol diet Research Diet D12079B
Human Activin A Peprotech 120-14E
Human hepatocyte growth factor Peprotech 100-39
Human iPSC maintenance medium STEMCELL Technologies 5850 mTeSR1
Human oncostatin M Peprotech 300-10
Ketamine 10% Alfasan N/A
L-glutamine Thermofisher 35050
LDL-C detection kit WAKO 993-00404 and 993-00504
Magnesium chloride VWR P25108 MgCl2
Meloxicam Boehringer Ingelheim NADA 141-213
Monopotassium phosphate USB S20227 KH2PO4
Non-essential amino acids Thermofisher 11140
PBS GE SH30256.02 Calcium and magnesium-free
PCSK9 antibodies Sanofi and Regeneron Pharmaceuticals SAR236553/REGN727 Alirocumab
Phenobarbital Alfamedic company 013003
Phenylephrine RBI P-133 Dissolve in water
Potassium chloride Sigma Aldrich P9333 KCl
Povidone-iodine Mundipharma Betadine
Recombinant mouse Wnt3a R&D Systems 1324-WN-500/CF
ROCK inhibitor Y27632 Sigma Aldrich Y0503-5MG
RPMI 1640 Thermofisher 21875
Serum replacement Thermofisher 10828
Silicone coated petri dish Dow Corning Sylgard 184 silicone elastomer kit
Simvastatin Merck Sharp & Dohme ZOCOR
Sodium bicarbonate Sigma Aldrich S6297 NaHCO3
Sodium chloride Sigma Aldrich S7653 NaCl
Trypan blue solution 0.4% Thermofisher 15250061
U-46619 Cayman 16450 Dissolve in DMSO
Xylazine 2% Alfasan N/A
β-mercaptoethanol Thermofisher 31350
Name Company Catalog Number Yorumlar
Antibodies
AAT DAKO A0012 1:400
ALB Bethyl Laboratories A80-129 1:200
ASGPR Santa Cruz Sc-28977 1:100
HNF4A Santa Cruz Sc-6557 1:35
NANOG Stemgent 09-0020 1:200
OCT4 Stemgent 09-0023 1:200
Name Company Catalog Number Yorumlar
Mice
Il2rg-/- Jacson lab 003174
Ldlr-/- Jacson lab 002077
Rag2-/- Jacson lab 008449
Name Company Catalog Number Yorumlar
Equipments
Automated cell counter Invitrogen Countess
Gamma irradiator MDS Nordion Gammacell 3000 Elan II
Insulin syringe BD 324911
Powerlab ADInstruments Model 8/30
Slides scanning system Leica biosystems Aperio scanScope system
Sliding Microtome Leica biosystems RM2125RT
Stereomicrocope Nikon SMZ800
Tissue processing system Leica biosystems ASP200S
Wire myograph DMT 610M
Name Company Catalog Number Yorumlar
Softwares
Digital slide viewing software Leica Aperio ImageScope Version 12.3.2
Image J NIH Version 1.51e
Image processing software Adobe Photoshop CC Version 2015
Microscope imaging software Carl Zeiss AxioVision LE Version 4.7

Referanslar

  1. Brown, M. S., Goldstein, J. L. A receptor-mediated pathway for cholesterol homeostasis. Science. 232 (4746), 34-47 (1986).
  2. Endo, A. The discovery and development of HMG-CoA reductase inhibitors. J Lipid Res. 33 (11), 1569-1582 (1992).
  3. Dubuc, G., et al. Statins upregulate PCSK9, the gene encoding the proprotein convertase neural apoptosis-regulated convertase-1 implicated in familial hypercholesterolemia. Arterioscler Thrombo Vasc Biol. 24 (8), 1454-1459 (2004).
  4. Robinson, J. G., et al. Efficacy and safety of alirocumab in reducing lipids and cardiovascular events. N Engl J Med. 372 (16), 1489-1499 (2015).
  5. Fitzgerald, K., et al. Effect of an RNA interference drug on the synthesis of proprotein convertase subtilisin/kexin type 9 (PCSK9) and the concentration of serum LDL cholesterol in healthy volunteers: a randomised, single-blind, placebo-controlled, phase 1 trial. Lancet. 383 (9911), 60-68 (2014).
  6. Ishibashi, S., et al. Hypercholesterolemia in low density lipoprotein receptor knockout mice and its reversal by adenovirus-mediated gene delivery. J Clin Invest. 92 (2), 883-893 (1993).
  7. Watanabe, Y. Serial inbreeding of rabbits with hereditary hyperlipidemia (WHHL-rabbit). Atherosclerosis. 36 (2), 261-268 (1980).
  8. Carpentier, A., et al. Engrafted human stem cell-derived hepatocytes establish an infectious HCV murine model. J Clin Invest. 124 (11), 4953-4964 (2014).
  9. Tateno, C., et al. Near completely humanized liver in mice shows human-type metabolic responses to drugs. Am J Pathol. 165 (3), 901-912 (2004).
  10. Basma, H., et al. Differentiation and transplantation of human embryonic stem cell-derived hepatocytes. Gastroenterology. 136 (3), 990-999 (2009).
  11. Soldner, F., et al. Generation of isogenic pluripotent stem cells differing exclusively at two early onset Parkinson point mutations. Cell. 146 (2), 318-331 (2011).
  12. Bissig, K. D., et al. Human liver chimeric mice provide a model for hepatitis B and C virus infection and treatment. J Clin Invest. 120 (3), 924-930 (2010).
  13. Azuma, H., et al. Robust expansion of human hepatocytes in Fah(-/-)/Rag2(-/-)/Il2rg(-/-) mice. Nat Biotechnol. 25 (8), 903-910 (2007).
  14. Bissig-Choisat, B., et al. Development and rescue of human familial hypercholesterolaemia in a xenograft mouse model. Nat Commun. 6, 7339 (2015).
  15. Yang, J., et al. Generation of human liver chimeric mice with hepatocytes from familial hypercholesterolemia induced pluripotent stem cells. Stem Cell Rep. 8 (3), 605-618 (2017).
  16. Kajiwara, M., et al. Donor-dependent variations in hepatic differentiation from human-induced pluripotent stem cells. Proc Natl Acad Sci USA. 109 (31), 12538-12543 (2012).
  17. Chen, Y., et al. Amelioration of hyperbilirubinemia in gunn rats after transplantation of human induced pluripotent stem cell-derived hepatocytes. Stem Cell Rep. 5 (1), 22-30 (2015).
  18. Ortmann, D., Vallier, L. Variability of human pluripotent stem cell lines. Curr Opin Genet Dev. 46, 179-185 (2017).
  19. Liu, H., Kim, Y., Sharkis, S., Marchionni, L., Jang, Y. Y. In vivo liver regeneration potential of human induced pluripotent stem cells from diverse origins. Sci Transl Med. 3 (82), 82ra39 (2011).

Play Video

Bu Makaleden Alıntı Yapın
Yang, J., Wong, L., Tian, X., Wei, R., Lai, W., Au, K., Luo, Z., Ward, C., Ho, W., Ibañez, D. P., Liu, H., Bao, X., Qin, B., Huang, Y., Esteban, M. A., Tse, H. A Familial Hypercholesterolemia Human Liver Chimeric Mouse Model Using Induced Pluripotent Stem Cell-derived Hepatocytes. J. Vis. Exp. (139), e57556, doi:10.3791/57556 (2018).

View Video