Quirais aminoácidos álcoois são moléculas versátil para uso como andaimes em síntese orgânica. A partir de L-lisina, sintetizar aminoácidos álcoois por uma reação em cascata enzimática combinando diastereoselective C-H oxidação catalisada por dioxigenase seguido por clivagem do moiety ácido carboxílico do aminoácido correspondente hidroxila por um descarboxilase.
Aminoácidos álcoois são compostos versáteis com uma ampla gama de aplicações. Por exemplo, eles têm sido usados como quirais andaimes em síntese orgânica. Sua síntese por convencional de química orgânica, muitas vezes, requer processos de síntese de várias etapas tedioso, com difícil controle do resultado estereoquímica. Apresentamos um protocolo para enzimaticamente sintetizar amino álcoois a partir de L-lisina prontamente disponível em 48h. Este protocolo combina duas reações químicas que são muito difíceis de realizar por síntese orgânica convencional. Na primeiro passo, a regio – diastereoselective oxidação e de uma ligação C-H não ativada de lisina da cadeia lateral é catalisada por uma dioxigenase; uma segunda oxidação regio – e diastereoselective, catalisada por uma dioxigenase regiodivergent pode levar à formação da 1,2-dióis. Na última etapa, o grupo carboxílico do aminoácido alfa é clivado por uma descarboxilase piridoxal-fosfato (PLP) (DC). Esta etapa de dimerização afeta somente o carbono alfa de aminoácidos, mantendo o centro estereogênico hidroxi-substituídos na posição beta/gama. Aminoácidos álcoois resultantes são, portanto, opticamente enriquecidos. O protocolo foi aplicado com sucesso para a síntese de semipreparative-escala de quatro aminoácidos álcoois. Monitoramento das reações foi realizada por cromatografia líquida de alta eficiência (HPLC) após derivatização pelo 1-fluoro-2,4-dinitrobenzeno. Simples purificação pela extração de fase sólida (SPE) oferecidas os aminoácidos álcoois com excelente rendimento (93% de > 95%).
Apesar dos benefícios oferecidos por biocatálise, a integração das etapas biocatalytic em vias sintéticas ou rotas biocatalytic totais permanece na sua maioria limitada a resoluções de cinéticas enzimáticas. Estas rotas têm sido amplamente utilizadas como um primeiro passo na síntese assimétrica de quimio-enzimático, mas biocatálise oferece muitas possibilidades mais no grupo funcional interconversões com elevada estereosseletividade1,2,3 . Além disso, como reações de biocatalytic são realizadas em condições similares, portanto, é viável para realizar reações em cascata em uma moda de um pot-4,5.
Quirais aminoácidos álcoois são moléculas versátil para uso como auxiliares ou andaimes em síntese orgânica6. O grupo amino álcool é frequentemente encontrado em metabólitos secundários e em ingredientes farmacêuticos ativos (API). Álcoois primários β-amino estão prontamente disponíveis a partir dos correspondentes ácidos α-amino por síntese química convencional, mas o acesso para álcoois quirais de γ-amino ou álcoois secundários aminoácidos requer muitas vezes tediosas vias sintéticas junto com sensível controle da estereoquímica7,8,9,10. Devido à sua elevada estereosseletividade, biocatálise pode fornecer uma rota sintética superior a esses blocos de construção quirais11,12,13,14.
Nós relatamos anteriormente a síntese de mono – e di-hidroxi-L-lisinas por diastereoselective hidroxilação enzimática catalisada por dioxygenases do ferro (II) / α-ketoacid-dependente família oxigenase (αKAO) (Figura 1)15. Em particular, a partir de L-lisina, a dioxigenase KDO1 catalisa a formação doS(3) – hidroxi derivado (1), enquanto o (R. 4) – derivado (2) é formado pela reação com dioxigenase KDO2. Sucessivas regiodivergent hydroxylations por KDO1 e KDO2 levam à formação doR, 4R(3) – dihidroxi – L-lisina (3) na forma opticamente pura. No entanto, a gama limitada de substrato destas enzimas impede sua grande utilização na síntese química, especialmente na hidroxilação de aminas simples, como um moiety ácido carboxílico em posição α do grupo amino é essencial para a atividade16.
Figura 1: Biocatalytic conversões de L-lisina. Conversão em (3S) – hidroxi – L-lisina (1) catalisada por KDO1 dioxigenase; (4R) – hidroxi – L-lisina (2) catalisada por KDO2 dioxigenase; e 3R, 4R– dihidroxi – L-lisina (3) pela reação em cascata sucessivamente catalisada por dioxygenases KDO1 e KDO2. Clique aqui para ver uma versão maior desta figura.
Descarboxilação é uma reação comum no metabolismo17. Em particular, aminoácido DCs (CE 4.1.1) está livre de cofator (pyruvoyl-dependente) ou enzimas PLP-dependentes e catalisar a descarboxilação de aminoácidos para as correspondentes poliaminas em bactérias e maior organismos18,19 , 20 , 21 , 22. o mono – e compostos (Figura 3) 4–7, 10–11 correspondem a cadaverina hidroxilada, a diamina obtida pela descarboxilação da L-lisina. Cadaverina é um bloco de construção fundamental para a indústria química, especificamente é um componente de polímeros de poliamida e poliuretano. Portanto, produção de base biológica desta diamina partir de recursos renováveis tem atraído a atenção como uma alternativa à rota do petróleo-baseados, e vários microorganismos têm foi projetados para essa finalidade. Estas vias metabólicas, lisina DC (PMD) é a enzima chave. LDC é uma enzima PLP-dependentes pertencentes ao alanina racemase (AR) estruturais família23. Os DCs PLP-dependentes (PLP-DCs) são conhecidas por serem altamente específicas do substrato. No entanto, algumas enzimas possuem a capacidade de promiscuidade ligeira, sendo ativo no sentido de aminoácidos L-ornitina e L-lisina, como por exemplo o LDC de Selenomonas rumirantium (LDCSrum), que tem similares constantes cinéticas para lisina e ornitina descarboxilação24,25. Este substrato estendido especificidade desta enzima faz com que um bom candidato para a descarboxilação de mono – e di-hidroxi-L-lisina. Além disso, para localizar DCs ativo para os derivados de hidroxila de lisina, examinamos o contexto genômico dos genes que codificam as enzimas αKAO. Com efeito, em genomas procariontes os genes que codificam enzimas envolvidas na via biossintética mesma são geralmente co localizados em clusters de gene. O gene KDO2 (de Chitinophaga pinensis) foi encontrado co localizados com um gene que codifica o putativo PLP-DC (Figura 2). Em contraste, nenhuma codificação de gene para DC foi encontrado quando se analisa o contexto genômico da dioxigenase KDO1. A proteína do PLP-DC de c. pinensis (DCnegras), portanto, foi selecionada como um candidato promissor para catalisar o passo de descarboxilação da reação em cascata.
Figura 2: contexto genômico do gene KDO2 em c. pinensis. Clique aqui para ver uma versão maior desta figura.
Consequentemente, nós projetamos as reações enzimáticas da cascata envolvendo dioxygenases e DCs para atingir a síntese de álcoois alifáticos quiral β e γ-amino de aminoácidos (Figura 3). Como relatado anteriormente, a oxidação de C-H catalisada pela αKAO apresenta o centro estereogênico hidroxi-substituídos com diastereoseletividade total; a quiralidade Cβ/γ será preservada na etapa de dimerização, que afeta somente o carbono Cα do ácido aminado moiety16.
Figura 3: análise Retrosynthetic. (A) Retrosynthesis de β e γ-amino álcoois (R) – 1,5 – diaminopentan-2-ol (4) (5R) – hidroxi – L-lisina e (S) – 1,5 – diaminopentan-2-ol (5) e 1,5-diaminopentan-3-ol (6) de L-lisina. (B) Retrosynthesis de β, γ e β, δ-amino dióis (2S, 3S) – 1,5 – diaminopentane-2,3-diol (10) e 2R, 4S– 1,5 – diaminopentane-2,4-diol (11) a partir de (R. 5)- hidroxi-L-lisina e 2R, 3R– 1,5 – diaminopentane-2,3-diol (7) a partir de L-lisina. Clique aqui para ver uma versão maior desta figura.
A partir de L-lisina e seus (5R)-hidroxi derivado, nós relatamos aqui um dois/três passo, um pote, procedimento enzimático combinando dioxygenases e PLP-DCs para obter o destino aminoácidos álcoois. Antes da síntese em escala de laboratório das moléculas do alvo, o método foi desenvolvido em escala analítica para ajustar as condições de reação, por exemplo, as concentrações de enzima, necessárias para permitir que a conversão completa das matérias-primas; apresentamos este procedimento também.
Derivados e álcoois quirais de aminoácidos têm uma ampla gama de aplicações, desde auxiliares quirais para a síntese orgânica para terapia farmacêutica. Síntese de várias etapas para a produção de aminoácidos álcoois por síntese orgânica convencional são numerosos, mas nem sempre é eficiente porque passos de proteção/desproteção tedioso juntamente com um controle sensível do estereoquímica16. Uma abordagem biocatalytic que dispensa as medidas de proteção/desproteção e ?…
The authors have nothing to disclose.
Os autores graças a Véronique de Berardinis para discussão proveitosa e Alain Perret, Christine Pellé e Peggy Sirvain para suporte técnico.
HEPES | Sigma Aldrich | H3375 | |
L-lysine hydrochloride | Sigma Aldrich | L5626 | |
(5S)-hydroxy-L-lysine | Sigma Aldrich | GPS NONH | Out sourcing |
α-ketoglutaric acid | Sigma Aldrich | 75892 | |
Sodium ascorbate | Sigma Aldrich | A7631 | |
Ammonium Iron(II) sulfate hexahydrate | Acros | 201370250 | |
Pyridoxal phosphate (PLP) | Sigma Aldrich | 82870 | |
3,4-dimercaptobutane-1,2-diol (DTT) | Sigma Aldrich | D0632 | |
1-fluoro-2,4-dinitrobenzene (DNFB) | Sigma Aldrich | D1529 | |
Ethanol | VWR | 20825.290 | |
Sodium hydrogen carbonate | Sigma Aldrich | 71631 | |
HCl 37% | Sigma Aldrich | 435570 | |
HCl 0.1M | Fluka | 35335 | |
Acetonitrile HiPerSolv CHROMANORM for LC-MS | VWR | 83640.320 | |
2,2,2-trifluoroacetic acid | VWR | 153112E | |
Ammonia 28% | VWR | 21182.294 | |
Methanol HiPerSolv CHROMANORM for LC-MS | VWR | 83638.32 | |
Formic acid | Acros | 270480010 | |
Phosphoric acid 85% | Acros | 201145000 | |
Deuterium oxide | Acros | 320,710,075 | |
NaOH | Sigma Aldrich | S5881 | |
C18 HPLC column | Phenomenex | 00F-4601-Y0 | |
Accela UHPLC System | ThermoFisher Scientific | ||
Accela PDA detector | ThermoFisher Scientific | ||
4mm syringe filters – 0,22µm – PVDF | Merck | SLGVR04NL | |
Single-use tuberculin syringe with ml graduation, Luer tip | VWR | HSWA5010.200V0 | |
Cation exchange resin 100-200 mesh | Sigma Aldrich | 217506 | |
Mixed mode cation-exchange solid-phase extraction cartridge 6 mL | Waters | 186000776 | |
Extraction manifold | Waters | WAT200609 | |
Rotary evaporator | Büchi | 531-0103 | |
Lyophilizer alpha 1-2 LDplus | Christ | L083302 | |
Micropipette 20 µL | Eppendorf | 3121000031 | |
Micropipette 100 µL | Eppendorf | 3121000074 | |
Micropipette 500 µL | Eppendorf | 3121000112 | |
Micropipette 1000 µL | Eppendorf | 3121000120 | |
300 MHz spectrometer | Bruker | ||
2 mL microtube | CLEARLine | CL20.002.0500 | |
50 mL conical-bottom centrifuge tube | Fischer Scientific | 05-539-8 | |
25 mL round-bottom flask 14/23 | Fischer Scientific | 10353331 | |
100 mL round-bottom flask 29/32 | Fischer Scientific | 11786183 | |
250 mL round-bottom flask 29/32 | Fischer Scientific | 11786183 | |
250 mL erlenmeyer flask | Fischerbrand | 15496143 |