Özet

Subpiaal Adeno-geassocieerde Virus 9 (AAV9) Vector Levering in Volwassene Muizen

Published: July 13, 2017
doi:

Özet

Het doel van de huidige studie was het ontwikkelen en valideren van de kracht en de veiligheid van de lever-adeno-geassocieerde virus 9 (AAV9) -gemedieerde genafgifte door gebruik te maken van een nieuwe subpiale genafgifte techniek bij volwassen muizen.

Abstract

De succesvolle ontwikkeling van een subsea adeno-geassocieerde virus 9 (AAV9) vectorleveringstechniek bij volwassen ratten en varkens is eerder gemeld. Met behulp van subliep-geplaatste polyethyleen katheters (PE-10 of PE-5) voor AAV9-afgifte is aangetoond dat krachtige transgene expressie via de spinale parenchyma (witte en grijze stof) in subpiaal geïnjecteerde spinale segmenten is. Vanwege het brede scala van transgene muismodellen van neurodegeneratieve ziekten, is er een sterk verlangen naar de ontwikkeling van een krachtige vectorbezorgingstechniek van het centraal zenuwstelsel (CNS) in volwassen muizen. Dienovereenkomstig beschrijft de onderhavige studie de ontwikkeling van een spinale subpiale vectorafgifte-inrichting en techniek om een ​​veilige en effectieve spinale AAV9-afgifte in volwassen C57BL / 6J-muizen mogelijk te maken. Bij spinaal geïmmobiliseerde en verdoofde muizen werd de pia mater (cervicale 1 en lumbale 1-2 spinale segmentale niveau) ingehakt met een scherpe 34 G-naald met behulp van een XYZ-manipulator. Een tweede XYZ maNipulator werd vervolgens gebruikt om een ​​stompe 36G-naald in de lumbale en / of cervicale subruimte te verplaatsen. De AAV9-vector (3-5 μl; 1,2 x 10 13 genoomkopieën (gc)) die coderende voor groen fluorescerend eiwit (GFP) werd vervolgens subliep geïnjecteerd. Na injecties werd de neurologische functie (motor en sensorisch) periodiek beoordeeld en werden dieren 14 dagen na AAV9-afgifte met 4% paraformaldehyde geperfuseerd. Analyse van horizontale of transversale ruggenmerg secties vertoonde transgen expressie door het hele ruggenmerg, zowel in grijs als wit. Daarnaast werd intense retrogradelie gemedieerde GFP expressie gezien in de dalende motoraxonen en neuronen in de motorcortex, nucleus ruber en formatio reticularis. Geen enkele neurologische dysfunctie werd opgemerkt bij dieren. Deze gegevens tonen aan dat de subpiavevector-afgifte techniek succesvol kan worden gebruikt in volwassen muizen zonder dat er sprake is van proceduregerelateerd ruggenmergletsel, en wordt geassocieerd met zeer krachtige transgene expressiesSion doorheen de ruggengraat neuraxis.

Introduction

Het gebruik van AAV-vectoren om een ​​verscheidenheid aan ruggenmerg en CNS neurodegeneratieve aandoeningen te behandelen, wordt een goed geaccepteerd platform om de expressie van genen die van belang zijn, effectief te regelen of stil te maken. Een van de belangrijkste beperkingen voor het effectievere gebruik van deze technologie om CNS / ruggenmergstoornissen te behandelen, is het beperkte vermogen om AAV-vector (en) te leveren aan het diepe hersen- of ruggenmergparenchym bij volwassen zoogdieren.

Er werd aangetoond dat de systemische afgifte van AAV9 bij volwassen knaagdieren, katten of niet-menselijke primaten slechts matig effectief is om transgen expressie in neuronen in de hersenen en ruggenmerg 1 , 2 , 3 te induceren. De effectievere intrathecale afgifte van AAV9-vectoren is ook aangetoond dat het slechts beperkt transgene expressie in anatomisch gedefinieerde zwembaden van neuronen leidt. Meer specifiek is het duivels geweestDat de cisternal of lumbo-sacrale intrathecale AAV9-afgifte in niet-menselijke primaten, varkens of knaagdieren leidt tot een hoog niveau van transgene expressie in spinale a-motoneuronen en segmentale dorsale wortelganglionneuronen. Minimaal of geen expressie in spinale interneuronen of stijgende of dalende axonen in de witte materie is echter 4 , 5 , 6 , 7 gezien . Collectief tonen deze gegevens aan dat er een zeer effectieve biologische-anatomische barrière bestaat, die de diffusie van intrathecaal afgeleide AAV voorkomt in dieper parale wervelkolom.

In een eerdere studie waarbij volwassen ratten en varkens werden gebruikt, werd een nieuwe subpiëlevectoraflezingstechniek ontwikkeld 8 . Met behulp van deze aanpak werd zeer krachtige en multi-segmentale transgene expressie aangetoond na een single-bolus subpiale AAV9-afgifte. Intense GFP expressie werd consequent gezienIn neuronen, gliale cellen en dalende / stijgende axonen door de geïnjecteerde spinale segmenten. Deze studie heeft voor het eerst aangetoond dat de pia mater de primaire belemmering voor de effectieve AAV9 diffusie in het spinale parenchyma uit de intrathecale ruimte vertegenwoordigt. Hoewel deze techniek en subpiële-injectie-inrichting eerder ontwikkeld is, is het relatief gemakkelijk te gebruiken bij grote knaagdieren (zoals ratten) of volwassen varkens, is het systeem niet geschikt voor gebruik in kleine dieren, zoals volwassen muizen. Vanwege het hoge aantal beschikbare transgene muismodellen van een verscheidenheid van neurodegeneratieve stoornissen is er een duidelijke behoefte aan de ontwikkeling van een effectieve spin-parenchymale vectorafgifte techniek in muizen. De beschikbaarheid van een dergelijke techniek zou de studie van het effect van specifieke gendemping mogelijk maken ( bijvoorbeeld met behulp van shRNA) of upregulatie met behulp van cel-niet-specifieke ( bv. Cytomegalovirus-CMV of Ubiquitin) of celspecifieke ( bijvoorbeeld synapsine of glial Fibrillair zuurEiwit (GFAP) promotoren tijdens de vroege postnatale ontwikkeling of onder zieke omstandigheden.

Bijgevolg hebben we in het onderhavige onderzoek een miniatuur subpieel vectorafleersysteem ontwikkeld en gevalideerd dat effectief in volwassen muizen kan worden gebruikt. Net als bij vorige ratten- en varkenstudies demonstreert dit werk een sterke transgenexpressie door het ruggenmercymie na een single-bolus subpiale AAV9-afgifte in muizen. De eenvoud van deze aanpak, de zeer goede verdraagbaarheid van geïnjecteerde muizen naar subpiale AAV9-afgifte en de hoge potentie van transgene expressie in het ruggenmergheelkunde suggereren dat deze techniek effectief kan worden geïmplementeerd in elke laboratoriuminstelling en gebruikt in experimenten gericht op spinale genexpressie.

Protocol

Deze studies werden uitgevoerd volgens een protocol dat is goedgekeurd door het Institutionele Diervoeder- en Gebruikskomitee van de Universiteit van Californië, San Diego, en was in overeenstemming met de Associatie voor de beoordeling van laboratoriumdiervriendelijke richtlijnen voor dierlijk gebruik. Alle studies werden uitgevoerd op een zodanige wijze dat de groepsgrootte en het dierlijk lijden beperkt werden. 1. Algemene dier- en chirurgische voorbereiding Voordat u …

Representative Results

Potentiële Transgen Expressie in Sub-AAV9-geïnjecteerde Segmenten: De analyse van transgen (GFP) expressie in ruggenmerg secties op 14 dagen na de afgifte van AAV9 vertoonde AAV9-dosis-afhankelijke GFP expressie door het ruggenmerg. Ten eerste werden twee bilaterale injecties van 3 μL AAV9-UBI-GFP geïnjecteerd in de bovenste lumbale subruimteruimte geassocieerd met de bijna volledige infectie van de witte en grijze stof in het hele lumbale ruggenmerg, da…

Discussion

De huidige studie beschrijft een techniek van subpiale vector (AAV9) levering in volwassen muizen. Zoals aangetoond in de bijbehorende video, kan deze aanpak en techniek effectief worden gebruikt, mits de vereiste instrumenten en pia-penetrerende naald en subpaalinjectie naald op de juiste manier worden vervaardigd volgens de vastgestelde en geteste specificaties.

Critische technische variabelen bij het uitvoeren van een consistente en veilige subpuale injectie in muizen: <b…

Açıklamalar

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Deze studie werd ondersteund door de SANPORC en ALSA Foundation grant (Martin Marsala); Het nationale duurzaamheidsprogramma, projectnummer LO1609 (Tsjechisch Ministerie van Onderwijs, Jeugd en Sport); En RVO: 67985904 (Stefan Juhas en Jana Juhasova).

Materials

C57BL/6J Mice Jackson Labs 664
Lab Standard Stereotaxic for Mice Harvard Apparatus 72-9568
Mouse Spinal Adaptor Harvard Apparatus 72-4811
XYZ Manipulator Stoelting 51604
Manual Infusion Pump Stoelting 51218
34G Beveled Nanofill Needle World Precision Instruments NF34BV-2
36G Blunt Nanofill needle World Precision Instruments NF-36BL-2
Fluriso, Isoflurane MWI Veterinary Supply 502017
Chlorhexidine Solution MWI Veterinary Supply 501027
20G Stainless Steel Needle Becton-Dickinson 305175
23G Stainless Steel Needle Becton-Dickinson 305145
30G Stainless Steel Needle Becton-Dickinson 305128
Cotton Tipped Applicator MWI Veterinary Supply 27426
Glass Capillary Beveller  Narishige International SM-25B
Slide Microscope Superfrost Leica Microsystems M80
50μl Microsyringe  Hamilton 81242
BD Intramedic PE-20 Tubing Becton, Dickinson 427406
BD Intramedic PE-10 Tubing Becton, Dickinson 427401
4-0 monofilament suture VetOne V1D397
Glass Capillary Beveller  Narishige Pipet Micro Grinder EG-40 
5 min Epoxy (Epoxy Clear) Devcon 14310
Euthanasia Solution MWI Veterinary Supply 11168
Heparin Inj 1000U/mL MWI Veterinary Supply 54254
Paraformaldehyde Sigma-Aldrich 158127
Sucrose Sigma-Aldrich S0389
Anti NeuN Antibody EMD-Millipore ABN78 Primary Rabbit Polyclonal Antibody, 1:1000
Anti-Choline Acetyltransferase (CHAT) Antibody EMD-Millipore AB144P Primary Goat Polyclonal Antibody, 1:100
Anti GFP Antibody Aves Labs GFP-1020 Primary Chicken Polyclonal Antibody, 1:1000
Donkey anti-Rabbit IgG (H+L) Secondary Antibody, Alexa Fluor 594 ThermoFisher Scientific A21207 Secondary Antibody, 1:1000
 Donkey anti-Rabbit IgG Secondary Antibody, Alexa Fluor 680 ThermoFisher Scientific A10043 Secondary Antibody, 1:1000
Donkey anti-Chicken IgY Secondary Antibody, Alexa Fluor 488 Jackson Immunoresearch Labs 703-545-155 Secondary Antibody, 1:1000
Donkey Anti-Goat IgG H&L (Alexa Fluor 647 Abcam ab150131 Secondary Antibody, 1:1000
Slide Microscope Superfrost Fisher Scientific 12-550-143
ProLong Gold Antifade Mountant Fisher Scientific P36930
Epifluorescence Microscope Zeiss Zeiss AxioImager M2
Fluorescence Confocal Microscope Olympus Olympus FV1000
Dextran Polysciences, Inc 19411
AAV9-UBC-GFP UCSD Viral Vector Core Laboratory

Referanslar

  1. Foust, K. D., et al. Intravascular AAV9 preferentially targets neonatal neurons and adult astrocytes. Nat Biotechnol. 27 (1), 59-65 (2009).
  2. Duque, S., et al. Intravenous administration of self-complementary AAV9 enables transgene delivery to adult motor neurons. Mol Ther. 17 (7), 1187-1196 (2009).
  3. Gray, S. J., et al. Preclinical differences of intravascular AAV9 delivery to neurons and glia: a comparative study of adult mice and nonhuman primates. Mol Ther. 19 (6), 1058-1069 (2011).
  4. Meyer, K., et al. Improving single injection CSF delivery of AAV9-mediated gene therapy for SMA: a dose-response study in mice and nonhuman primates. Mol Ther. 23 (3), 477-487 (2015).
  5. Foust, K. D., et al. Therapeutic AAV9-mediated suppression of mutant SOD1 slows disease progression and extends survival in models of inherited ALS. Mol Ther. 21 (12), 2148-2159 (2013).
  6. Passini, M. A., et al. Translational fidelity of intrathecal delivery of self-complementary AAV9-survival motor neuron 1 for spinal muscular atrophy. Hum Gene Ther. 25 (7), 619-630 (2014).
  7. Bell, P., et al. Motor neuron transduction after intracisternal delivery of AAV9 in a cynomolgus macaque. Hum Gene Ther Methods. 26 (2), 43-44 (2015).
  8. Miyanohara, A., et al. Potent spinal parenchymal AAV9-mediated gene delivery by subpial injection in adult rats and pigs. Mol Ther Methods Clin Dev. 3, 16046 (2016).
  9. Xu, Q., et al. In vivo gene knockdown in rat dorsal root ganglia mediated by self-complementary adeno-associated virus serotype 5 following intrathecal delivery. PLoS One. 7 (3), 32581 (2012).
  10. Xiao, X., Li, J., Samulski, R. J. Production of high-titer recombinant adeno-associated virus vectors in the absence of helper adenovirus. J Virol. 72 (3), 2224-2232 (1998).

Play Video

Bu Makaleden Alıntı Yapın
Tadokoro, T., Miyanohara, A., Navarro, M., Kamizato, K., Juhas, S., Juhasova, J., Marsala, S., Platoshyn, O., Curtis, E., Gabel, B., Ciacci, J., Lukacova, N., Bimbova, K., Marsala, M. Subpial Adeno-associated Virus 9 (AAV9) Vector Delivery in Adult Mice. J. Vis. Exp. (125), e55770, doi:10.3791/55770 (2017).

View Video