Özet

Optimización y Análisis Comparativo de Métodos de Enriquecimiento de ADN de Organelos Vegetales Adecuados para Secuenciación de Próxima Generación

Published: July 28, 2017
doi:

Özet

Se presentan la comparación y optimización de dos métodos de enriquecimiento de ADN organelar de plantas: centrifugación diferencial tradicional y fraccionamiento del gDNA total basado en el estado de metilación. Evaluamos la cantidad y calidad de ADN resultante, demostramos el rendimiento en secuenciación de próxima generación de lectura corta y discutimos el potencial de uso en la secuenciación de una molécula de larga lectura.

Abstract

Los genomas organelares de las plantas contienen grandes elementos repetitivos que pueden someterse a apareamiento o recombinación para formar estructuras complejas y / o fragmentos sub-genómicos. Los genomas organelas también existen en mezclas dentro de una célula o tipo de tejido dado (heteroplasmia), y una abundancia de subtipos puede cambiar durante el desarrollo o cuando está bajo tensión (desplazamiento subestequiométrico). Se requieren tecnologías de secuenciación de próxima generación (NGS) para obtener una comprensión más profunda de la estructura y la función del genoma organelar. Los estudios de secuenciación tradicionales utilizan varios métodos para obtener ADN organelar: (1) Si se utiliza una gran cantidad de tejido de partida, se homogeneiza y se somete a centrifugación diferencial y / o gradiente de purificación. (2) Si se utiliza una cantidad menor de tejido ( es decir, si las semillas, el material o el espacio son limitados), se realiza el mismo proceso que en (1), seguido por amplificación del genoma completo para obtener suficiente ADN. (3) El análisis bioinformático puede ser usado para buscarEl ADN genómico total y analizar las lecturas organelas. Todos estos métodos tienen desafíos inherentes y compensaciones. En (1), puede ser difícil obtener una cantidad tan grande de tejido de partida; En (2), la amplificación de todo el genoma podría introducir un sesgo de secuenciación; Y en (3), la homología entre los genomas nucleares y organelas podría interferir con el montaje y el análisis. En plantas con genomas nucleares grandes, es ventajoso enriquecer el ADN organelar para reducir los costos de secuenciación y la complejidad de la secuencia para los análisis bioinformáticos. Aquí, comparamos un método de centrifugación diferencial tradicional con un cuarto método, un enfoque adaptado CpG-metil pulldown, para separar el ADN genómico total en fracciones nucleares y organelares. Ambos métodos producen suficiente ADN para NGS, el ADN que está altamente enriquecido para las secuencias organelares, aunque en diferentes proporciones en las mitocondrias y los cloroplastos. Se presenta la optimización de estos métodos para el tejido foliar de trigo y se discuten las principales ventajas ydLas ventajas de cada enfoque en el contexto de la entrada de la muestra, la facilidad del protocolo, y la aplicación descendente.

Introduction

La secuenciación del genoma es una poderosa herramienta para disecar la base genética subyacente de rasgos importantes de las plantas. La mayoría de los estudios de secuenciación del genoma se centran en el contenido del genoma nuclear, ya que la mayoría de los genes se encuentran en el núcleo. Sin embargo, los genomas organelos, incluyendo las mitocondrias (a través de eucariotas) y plastidios (en las plantas, la forma especializada, el cloroplasto, trabaja en fotosíntesis) aportan información genética significativa esencial para el desarrollo de organismos, la respuesta al estrés y la aptitud general 1 . Genomas organelas se incluyen normalmente en el total de extracciones de ADN destinados a la secuenciación del genoma nuclear, aunque los métodos para reducir el número de organelos antes de la extracción de ADN también se emplean [ 2] . Muchos estudios han utilizado resultados de secuenciación de las extracciones totales de gDNA para ensamblar genomas organelos 3 , 4 , 5 ,Xref "> 6 , 7. Sin embargo, cuando el objetivo del estudio es centrarse en los genomas organelares, el uso del gDNA total incrementa los costos de secuenciación debido a que muchas lecturas están" perdidas "en las secuencias de ADN nuclear, particularmente en plantas con genomas nucleares grandes Además, debido a la duplicación y transferencia de secuencias organelares en el genoma nuclear y entre orgánulos, la resolución de la posición correcta de la cartografía de secuenciación lee al genoma adecuado es bioinformatically desafiante 2 , 8. La purificación de los genomas organelares del genoma nuclear es uno Estrategia para reducir estos problemas.Más estrategias bioinformáticas se pueden utilizar para separar las lecturas que mapa a las regiones de homología entre las mitocondrias y los cloroplastos.

Mientras que los genomas organelares de muchas especies de plantas han sido secuenciados, poco se sabe acerca de la amplitud de la diversidad de genomas organelosDisponible en poblaciones silvestres o en piscinas de cría cultivadas. También se sabe que los genomas organelares son moléculas dinámicas que experimentan un reordenamiento estructural significativo debido a la recombinación entre secuencias repetidas 9 . Además, múltiples copias del genoma organelo están contenidas dentro de cada orgánulo, y múltiples organelos están contenidos dentro de cada célula. No todas las copias de estos genomas son idénticos, que se conoce como heteroplasmia. En contraste con el cuadro canónico de "círculos maestros", ahora hay evidencia creciente de una imagen más compleja de las estructuras del genoma organelar, incluidos los círculos sub-genómica, cromosomas lineales, concatamers lineales y estructuras ramificadas [ 10] . El ensamblaje de los genomas organelares de las plantas se complica aún más por sus tamaños relativamente grandes y sus sustanciales repeticiones invertidas y directas.

Los protocolos tradicionales para el aislamiento organelar, la purificación del ADN y el subsiguiente genoma La secuenciación a menudo es engorrosa y requiere grandes volúmenes de entrada de tejido, con varios gramos a más de cientos de gramos de tejido de hoja joven necesarios como punto de partida 11 , 12 , 13 , 14 , 15 , 16 , 17 . Esto hace inaccesible la secuenciación del genoma organelo cuando el tejido es limitado. En algunas situaciones, las cantidades de semillas son limitadas, como cuando es necesario secuenciar sobre una base generacional o en líneas masculinas estériles que tienen que ser mantenidas por cruce. En estas situaciones, el ADN organelar puede purificarse y luego someterse a amplificación de todo el genoma. Sin embargo, la amplificación del genoma completo puede introducir sesgo de secuenciación significativo, que es un problema particular al evaluar la variación estructural, las estructuras sub-genómicas y los niveles de heteroplasmia> 18. Los avances recientes en la preparación de bibliotecas para tecnologías de secuenciación de lectura corta han superado barreras de entrada baja para evitar la amplificación del genoma completo. Por ejemplo, el kit de preparación de biblioteca de Illumina Nextera XT permite que se utilice tan poco como 1 ng de ADN como entrada 19 . Sin embargo, las preparaciones de bibliotecas estándar para aplicaciones de secuenciación de larga lectura, como las tecnologías de secuenciación PacBio o Oxford Nanopore, todavía requieren una cantidad relativamente alta de ADN de entrada, lo que puede representar un reto para la secuenciación del genoma organelo. Recientemente, se han desarrollado nuevos protocolos de secuenciación de larga lectura para reducir las cantidades de entrada y ayudar a facilitar la secuenciación del genoma en muestras en las que es difícil obtener cantidades de microgramos de ADN 20 , 21 . Sin embargo, la obtención de fracciones orgánicas puras de alto peso molecular para alimentar estas preparaciones de biblioteca sigue siendo un desafío.

BuscamosO comparar y optimizar los métodos de enriquecimiento y aislamiento de ADN organelar adecuados para NGS sin necesidad de amplificación de todo el genoma. Específicamente, nuestro objetivo era determinar las mejores prácticas para enriquecer el ADN organelar de alto peso molecular a partir de materiales de partida limitados, como una submuestra de una hoja. Este trabajo presenta un análisis comparativo de los métodos para enriquecer el ADN organelar: (1) un protocolo de centrifugación diferencial tradicional modificado versus (2) un protocolo de fraccionamiento de ADN basado en el uso de un ADN comercialmente disponible CpG-metil-binding domain protein pulldown approach 22 aplicado al tejido vegetal 23 . Recomendamos las mejores prácticas para el aislamiento de ADN organelar de tejido de hoja de trigo, que puede ser fácilmente extendido a otras plantas y tipos de tejidos.

Protocol

1. Generación de materiales vegetales para el aislamiento orgánico y la extracción de ADN Crecimiento estándar de plántulas de trigo Plante las semillas en vermiculita en pequeñas ollas cuadradas con 4 a 6 semillas por esquina. Traslado a un invernadero o cámara de crecimiento con un ciclo de luz de 16 h, 23 ºC día / 18 ºC noche. Regar las plantas cada día. Fertilice las plantas con ¼ de cucharadita de fertilizante granular 20-20-20 NPK durante la germinación y…

Representative Results

Los protocolos presentados en este manuscrito describen dos métodos distintos para enriquecer el ADN organelar del tejido vegetal. Las condiciones aquí presentadas reflejan la optimización para el tejido de trigo. En la Figura 1 se describe una comparación de los pasos clave en los protocolos, la entrada de tejido requerida y la salida de ADN. Los pasos del protocolo DC que probamos siguen condiciones similares a las descritas anteriormente ( <strong cla…

Discussion

Hasta la fecha, la mayoría de los estudios de secuenciación organelar se centran en los métodos tradicionales de CC para enriquecer el ADN específico. Métodos para aislar orgánulos de diversas plantas se han descrito, incluyendo el musgo 40 ; Monocotiledóneas tales como trigo 15 y avena 11 ; Y dicotiledóneas tales como arabidopsis 11 , girasol 17 , y colza 14 . La mayor?…

Açıklamalar

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Nos gustaría agradecer el financiamiento del Departamento de Agricultura de Estados Unidos – Servicio de Investigación Agrícola y de la National Science Foundation (IOS 1025881 e IOS 1361554). Damos las gracias a R. Caspers por el mantenimiento de invernaderos y el cuidado de las plantas. También damos las gracias al Centro de Genómica de la Universidad de Minnesota, donde se realizaron los preparativos de la biblioteca de Illumina y la secuenciación. También estamos agradecidos por los comentarios de los editores de la revista y cuatro revisores anónimos que fortalecieron aún más nuestro manuscrito. También agradecemos a la OCDE por una beca a SK para integrar estos protocolos para proyectos colaborativos con colegas en Japón.

Materials

2-mercaptoethanol (beta-mercaptoethanol; BME) Sigma Aldrich M3148-100ml
2-propanol (Isopropyl alcohol/isopropanol), bioreagent Sigma Aldrich I9516
agarose, Bio-Rad Cetified Megabase agarose Bio-Rad 1613108
analytical balance Mettler Toledo AB54-S
balance Mettler Toledo PB1502-S
bovine serum albumin (BSA) Sigma Aldrich B4287-25G
Ceramic grinding cylinders, 3/8in x 7/8in SPEX SamplePrep 2183
Cryogenic Blocks compatible with tissue homogenizer for holding 50 ml tubes SPEX SamplePrep 2664
DNaseI Sigma DN25
ethanol, absolute Decon Laboratories 2716
Ethylenediamine Tetraacetic Acid (EDTA), 0.5M Solution, pH8.0 Fisher BP2482-500
gel imaging system
gel stain Such as GelRed or Ethidium Bromide
grinding pestle, wide tip for 2 ml conical tubes
Guanidine-HCl, 8M solution ThermoFisher 24115
LightCycler 480 SYBR Green I Master Roche 4707516001
liquid nitrogen
Lysing enzymes from Trichoderma harzianum Sigma L1412
Magnesium Chloride G Bioscience 24115
magnetic rack ThermoFisher A13346
microcentrifuge tubes, LoBind 1.5 ml  Eppendorf 22431021
microcentrifuge tubes, standard nuclease-free 1.5 ml Eppendorf
microcentrifuge, refrigerated Sorvall  Legend X1R Or equivalent product, must be capable of reaching at least 18,000 x g with rotors for 50 ml tubes, Oak Ridge tubes, and 1.5 ml tubes
microcentrifuge, room temperature Eppendorf 5424 Or equivalent product, must be capable of reaching at least 18,000 x g with rotor for 1.5 ml and 2 ml microcentrifuge tubes
Microcon DNA Fast Flow Centrifugal Filter Units EMD Millipore MRCFOR100
Miracloth, 1 square per sample cut to fit funnel EMD Millipore 475855
NEBNext Microbiome DNA Enrichment Kit New England Biolabs E2612L
parafilm Parafilm M PM992
plastic pots and trays
polyvinylpyrrolidone (PVP) Fisher BP431-100
Proteinase K Qiagen 19131
Pulsed-Field Gel Electrophoresis rig (e.g. CHEF DR III) Bio-Rad 1703697
purification beads, Agencourt AMpureXP beads Beckman Coulter A63881
QIAamp DNA Mini Kit Qiagen 51304
Qiagen 20/g Genomic Tip DNA Extraction Kit Qiagen 10223
Qiagen Buffer EB (elution buffer) Qiagen 19086
Qiagen DNA Extraction Buffer Set Qiagen 19060
QiaRack Qiagen 19015
qPCR machine (e.g. Roche Light Cycler 480) Roche
qPCR plate sealing film Roche 4729757001
qPCR plate, 96 well plate Roche 4729692001
Qubit assay tubes Life Technologies Q32856
Qubit Broad Spectrum assay kit Life Technologies Q32850
Qubit High Sensitivity assay kit Life Technologies Q32851
RNaseA Qiagen 19101
Serological pipettes (20 ml) and pipet-aid Fisher 13-678-11
Small funnels, 1 per sample
Sodium Chloride Ambion AM9759
Soft paintbrush, 2 per sample
SPEX SamplePrep 2010 Geno/Grinder or another type of tissue homogenizer SPEX SamplePrep Or another comparable tissue homogenizer. If you do not have access to a tissue homogenizer, then grinding in a pre-chilled mortar and pestle will suffice (see protocol for details). However, a homogenizer will give more consistent results and total homogenization time is reduced.
Sucrose Omnipure 8550
TBE
thermomixer
Tris Sigma T2819-100ml
Triton X-100 Promega H5142
tube rotater
tubes, 50 mL conical polypropylene Corning 352070
tubes, 50 ml high-speed polypropylene  ThermoScientific/Nalgene 3119-0050 e.g. Nalgene Oakridge tubes or equivalent
vermiculite
water bath
water, sterile and certified Nuclease-free  Fisher 1481
water, sterile milliQ

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