在这里,我们详细介绍了P soralen交联,Ligated和S选择的H ybrids(SPLASH)的S等位基因的方法,使得能够在体内对分子内和分子间RNA-RNA相互作用进行基因组范围的映射。 SPLASH可用于研究包括酵母,细菌和人在内的生物体的RNA相互作用。
了解RNA与自身和其他人的相互作用是了解细胞中基于RNA的基因调控的关键。虽然已经显示RNA-RNA相互作用(例如微小RNA-mRNA相互作用)的实例调节基因表达,但是在细胞中发生RNA相互作用的完全程度仍然是未知的。以前研究RNA相互作用的方法主要集中在与特定蛋白质或RNA物种相互作用的RNA亚类。在这里,我们详细介绍了一种名为S等位基因的交联S型, L型化和S型选择性蛋白(SPLASH)的方法,其允许以无偏倚的方式在体内全基因组捕获RNA相互作用。 SPLASH利用体内交联,接近连接和高通量测序来鉴定全球范围内的分子内和分子间RNA碱基配对伙伴。 SPLASH可以应用于不同的生物体,包括细菌,酵母和人类细胞,以及a多样性的细胞条件,以促进理解不同细胞背景下RNA组织的动力学。整个实验SPLASH协议需要大约5天的时间才能完成,计算工作流程需要大约7天的时间才能完成。
研究大分子如何折叠和相互作用是理解细胞中基因调控的关键。在过去十年中,为了了解DNA和蛋白质如何促进基因调控,在过去十年中已经做了很多努力,对基因表达的转录后调控相对较少。 RNA在其线性序列及其二级和三级结构中携带信息1 。与其自身和其他物质配对的能力对于其在体内的功能是重要的。高通量RNA二级结构探测的最新进展已经为转录组2,3,4,5,6,7,8中的双链和单链区域的位置提供了宝贵的见解关于配对互动伙伴关系的信息仍然很大程度上缺失。为了确定哪个RNA序列与转录组中的另一个RNA区域相互作用,我们需要全球成对的信息。
以全球,公正的方式映射成对的RNA相互作用传统上是一个重大的挑战。虽然以前的方法,如CLASH 9 ,hiCLIP 10和RAP 11被用来以大规模的方式鉴定RNA相互作用,但是这些技术通常将RNA碱基配对映射到与特定蛋白质或RNA物种相互作用的RNA亚类。研究全球RNA相互作用的最新进展包括方法RPL 12 ,其不能在体内稳定RNA相互作用,因此可能仅捕获体内相互作用的子集。为了克服这些挑战,我们和其他人开发了全基因组,无偏见的策略p RNA 在体内相互作用,使用修饰版本的交联剂补骨脂素13,14,15 。在本协议中,我们描述了使用生物素化的补骨脂素在体内交联碱基配对RNA,然后进行邻近连接和高通量测序的P soralen交联,Ligigated和S选择Hyrbrids(SPLASH)的S等位基因的细节。识别RNA基因配对伙伴全基因组( 图1 ) 15 。
在本手稿中,我们描述了使用培养的贴壁细胞进行SPLASH的步骤,在这种情况下是HeLa细胞。相同的方案可以容易地适应于悬浮哺乳动物细胞和酵母和细菌细胞。简言之,HeLa细胞用生物素化的补骨脂素处理并在365nm下照射以在体内交联相互作用的RNA碱基对。然后从细胞中提取RNA,用链霉抗生物素蛋白珠片段碎片化并富集交联区域。然后使用接近连接将相互作用的RNA片段连接在一起,并制成用于深度测序的cDNA文库。测序后,将嵌合RNA映射到转录组/基因组上以鉴定彼此配对的RNA相互作用区域。我们已经成功地利用SPLASH在酵母和不同人类细胞中识别数千个RNA相互作用,包括分子内和分子间RNA碱基配对在不同类别的RNA,如snoRNA,lncRNA和mRNAs,以瞥见结构组织和相互作用模式的细胞中的RNA。
在这里,我们详细描述了SPLASH的实验和计算工作流程,这是一种允许我们以全基因组方式识别成对RNA相互作用的方法。我们已经在细菌,酵母和人类文化中成功地利用SPLASH,并且预计该策略可以广泛应用于不同细胞状态下的多种生物。协议中的关键步骤之一是从至少20μg的交联RNA开始,为下游过程提供足够的材料。然后将RNA片段化至100个碱基并进行PAGE大小选择。这些步骤对于我们在图书馆生成过?…
The authors have nothing to disclose.
我们感谢万实验室和Nagarajan实验室的成员进行了详细的讨论。 N.Nagarajan得到A * STAR的资助。姚先生获得了A * STAR和Science-Branco Weiss奖学金社会的资助。
1 Kb Plus DNA Ladder | Life Technologies Holdings Pte Ltd | 10787026 | DNA ladder |
10 bp DNA ladder | Life Technologies Holdings Pte Ltd | 10821-015 | DNA ladder |
20 % SDS solution | First BASE | BUF-2052-1L | |
20x SSC | First BASE | BUF-3050-20X1L | |
3.0 M Sodium Acetate Solution | First BASE | BUF-1151-1L-pH5.2 | Required for nucleic acid precipitation |
40% Acrylamide/Bis Solution, 19:1 | Bio-Rad | 1610145 | TBE Urea gel component |
Ambion Buffer Kit | Life Technologies Holdings Pte Ltd | AM9010 | |
Ammonium Persulfate, Molecular Grade | Promega | V3131 | TBE Urea gel component |
Bromophenol Blue | Sigma-Aldrich | B0126-25G | |
Chloroform | Merck | 1.02445.1000 | RNA extraction |
Single strand DNA ligase | Epicentre | CL9025K | CircLigase II ssDNA Ligase |
Centrifuge tube filters | Sigma-Aldrich | CLS8160-96EA | Costar Spin-X centrifuge tube filters |
D5628-1G DIGITONIN CRYSTALLINE | Sigma-Aldrich | D5628-1G | For cell treatment |
Dark Reader Transilluminator | Clare Chemical Research | Dark Reader DR89X Transilluminator | Blue light transilluminator |
DNA Gel Loading Dye (6X) | Life Technologies Holdings Pte Ltd | R0611 | Required for agarose gel electroporation |
Dulbecco's Modified Eagle Medium | Pan BioTech | P04-03500 | For Hela cell culture |
Streptavidin magnetic beads | Life Technologies Holdings Pte Ltd | 65002 | Dynabeads MyOne Streptavidin C1 |
Magnetic stand for 15ml tubes | Life Technologies Holdings Pte Ltd | 12301D | DynaMag-15 |
Magnetic stand for 15ml tubes | Life Technologies Holdings Pte Ltd | 12321D | DynaMag-2 |
ThermoMixer | Eppendorf | 5382 000.015 | Eppendorf ThermoMixer C |
Biotinylated psoralen | Life Technologies Holdings Pte Ltd | 29986 | EZ-Link Psoralen-PEG3-Biotin |
F8T5/BL | Hitachi | F8T5/BL | 365 nm UV bulb |
Fetal Bovine Serum | Life Technologies Holdings Pte Ltd | 10270106 | Components of Hela medium |
Formamide | Promega | H5052 | Component in hybridization buffer |
G8T5 | Sankyo-Denki | G8T5 | 254 nm UV bulb |
Glycogen | Life Technologies Holdings Pte Ltd | 10814010 | Required for nucleic acid precipitation |
Nanodrop | Life Technologies Holdings Pte Ltd | Nanodrop 2000 | Spectrophotometer for nucleic acidquantification |
Nuclease free water | First BASE | BUF-1180-500ml | |
Penicillin Streptomycin | Life Technologies Holdings Pte Ltd | 15140122 | Components of Hela medium |
High-Fidelity DNA polymerase (2x) | Life Technologies Holdings Pte Ltd | F531L | Phusion High-Fidelity PCR Master Mix with HF Buffer (2x) |
Primers Set 1 | New England Biolabs | E7335L | PCR primers |
DNA Gel Extraction Kit | QIAgen | 28106 | QIAquick Gel Extraction Kit |
Fluorometric Quantification kit | Life Technologies Holdings Pte Ltd | Q32854 | Qubit dsDNA HS Assay Kit |
RNA clean up kit | Qiagen | 74106 | RNeasy Mini Kit Silica-membrane column |
Rnase Inhibitor | Life Technologies Holdings Pte Ltd | AM2696 | SUPERase In |
Reverse transcriptase | Life Technologies Holdings Pte Ltd | 18080400 | SuperScript III First-Strand Synthesis SuperMix |
Nucleic Acid Gel Stain | Life Technologies Holdings Pte Ltd | S11494 | SYBR GOLD NUCLEIC ACID 500 UL |
T4 Polynucleotide Kinase | New England Biolabs | M0201L | End repair enzyme |
T4 RNA Ligase 1 | New England Biolabs | M0204L | Enzyme for proximity ligation |
T4 RNA Ligase 2, truncated KQ | New England Biolabs | M0373L | Enzyme for adaptor ligation |
Temed | Bio-Rad | 1610801 | TBE Urea gel component |
Guanidinium thiocyanate-phenol-chloroform | Life Technologies Holdings Pte Ltd | 15596018 | TRIzol® Reagent for RNA extraction |
Urea | First BASE | BIO-2070-5kg | |
UV crosslinker | Stratagene | 400072 | UV Stratalinker 1800 |
UV Transilluminator | UVP | 95-0417-01 | For visualizing of bands |
Xylene Cyanol FF | Sigma-Aldrich | X4126-10G | |
DNA cleanup it | Zymo Research | D4004 | Zymo DNA concentrator-5 |
List of software required | |||
FastQC software | 0.11.4 | http://www.bioinformatics.babraham.ac.uk/projects/fastqc/ | |
SeqPrep software | 1.0.7 | https://github.com/jstjohn/SeqPrep | |
BWA software | 0.7.12 | http://bio-bwa.sourceforge.net/ | |
SAMTOOLS software | 1.2.1 | http://www.htslib.org/ | |
PULLSEQ software | 1.0.2 | https://github.com/bcthomas/pullseq | |
STAR software | 2.5.0c | https://github.com/alexdobin/STAR | |
rem_dups.py PYTHON script | PYTHON 2.7.11 | https://github.com/CSB5/splash/tree/master/src | |
find_chimeras.py PYTHON script | PYTHON 2.7.11 | https://github.com/CSB5/splash/tree/master/src | |
pickJunctionReads.awk AWK script | AWK GNU 4.1.2 | https://github.com/CSB5/splash/tree/master/src | |
Buffer composition | |||
Elution buffer: | |||
0.3 M sodium acetate | |||
Lysis Buffer: | |||
50 mM Tris-Cl pH 7.0 | |||
10 mM EDTA | |||
1% SDS | |||
Always add Superase-in fresh before use except when washing beads | |||
Proteinase K Buffer | |||
100 mM NaCl | |||
10 mM TrisCl pH 7.0 | |||
1 mM EDTA | |||
0.5% SDS | |||
Hybridization Buffer | |||
750 mM NaCl | |||
1% SDS | |||
50 mM Tris-Cl pH 7.0 | |||
1 mM EDTA | |||
15% formamide (store in the dark at 4 °C) | |||
Always add Superase-in fresh before use | |||
2x SSC Wash Buffer | |||
2x NaCl and Sodium citrate (SSC) (diluted from 20x SSC Invitrogen stock) | |||
0.5% SDS | |||
2X RNA fragmentation buffer | |||
18mM MgCl2 | |||
450mM KCl | |||
300mM Tris-CL pH 8.3 | |||
2x RNA loading Dye: | |||
95% Formamide | |||
0.02% SDS | |||
0.02% bromophenol blue | |||
0.01% Xylene Cyanol | |||
1mM EDTA | |||
3' RNA adapter sequence | 5rAppCTGTAGGCACCATCAAT/3ddC | ||
RT primer sequence | AGATCGGAAGAGCGTCGTGTAGGGAAAGAGTGTAGATCTCGGTGGTCGC/iSp18/CACTCA/iSp18/TTCAGACGTGTGCTCTTCCGATCTATTGATGGTGCCTACAG |