Özet

Preparación de mitocondriales enriquecidos fracciones de Análisis metabólico en<em> Drosophila</em

Published: September 30, 2015
doi:

Özet

Mitochondria play central roles in the regulation of metabolism and homeostasis. Subtle changes in mitochondrial metabolism that affect organismal physiology could be difficult to detect in whole organism metabolomics studies. Here we describe an isolation method that enhances the detection of subtle metabolic shifts in Drosophila melanogaster.

Abstract

Since mitochondria play roles in amino acid metabolism, carbohydrate metabolism and fatty acid oxidation, defects in mitochondrial function often compromise the lives of those who suffer from these complex diseases. Detecting mitochondrial metabolic changes is vital to the understanding of mitochondrial disorders and mitochondrial responses to pharmacological agents. Although mitochondrial metabolism is at the core of metabolic regulation, the detection of subtle changes in mitochondrial metabolism may be hindered by the overrepresentation of other cytosolic metabolites obtained using whole organism or whole tissue extractions.

Here we describe an isolation method that detected pronounced mitochondrial metabolic changes in Drosophila that were distinct between whole-fly and mitochondrial enriched preparations. To illustrate the sensitivity of this method, we used a set of Drosophila harboring genetically diverse mitochondrial DNAs (mtDNA) and exposed them to the drug rapamycin. Using this method we showed that rapamycin modifies mitochondrial metabolism in a mitochondrial-genotype-dependent manner. However, these changes are much more distinct in metabolomics studies when metabolites were extracted from mitochondrial enriched fractions. In contrast, whole tissue extracts only detected metabolic changes mediated by the drug rapamycin independently of mtDNAs.

Introduction

El objetivo de este procedimiento es desarrollar fracciones enriquecidas mitocondriales que producen metabolitos mitocondriales suficientes para estudios de metabolómica utilizando Drosophila melanogaster. En nuestra experiencia, la metabolómica análisis utilizando métodos de extracción celular enteros son incapaces de detectar sutiles cambios de metabolitos mitocondriales en Drosophila. Sin embargo, fraccionamiento mitocondrial antes del análisis metabolómica aumenta la sensibilidad para identificar los cambios de metabolitos mitocondriales.

Las mitocondrias son orgánulos celulares responsables para proporcionar 90% de la energía que las células necesitan para la función normal 1. En los últimos años se ha reconocido que las mitocondrias juegan un papel mucho más dinámico en la función celular y del organismo que simplemente la producción de trifosfato de adenosina (ATP), y ahora son reconocidos como centros para la regulación de la homeostasis metabólica 2,3. Las mitocondrias son el resultado de un proceso en el que endosimbiótica dislinajes microbianos Tinct fusionaron ~ Hace 1,5 millones de años 4. Como las mitocondrias evolucionaron hasta convertirse en verdaderos orgánulos, genes de la endosymbiont fueron incorporados en el genoma nuclear emergente. En los animales hoy en día, aproximadamente 1.500 proteínas mitocondriales son codificada en el núcleo, mientras que 37 genes permanecen en el ADNmt, 13 de los cuales codifican proteínas mitocondriales que son subunidades de los complejos de enzimas de la fosforilación oxidativa 5. Es necesaria la coordinación entre las mitocondrias y compartimentos nucleares para mantener la función mitocondrial adecuada.

Utilizando los métodos descritos aquí hemos sido capaces de detectar cambios metabólicos mitocondriales en Drosophila que resultan de la manipulación de la coordinación entre los genomas mitocondriales y nucleares. Se utilizó una cepa de Drosophila en el que el ADNmt de su especie hermana D. simulans se colocó en una sola D. melanogaster fondo nucleares 6. Este mitonuclear 'perturbado'genotipo se comparó con el genotipo mitonuclear 'nativa', o co-evolucionado de D. melanogaster que lleva el mismo genoma nuclear con su D. nativa melanogaster ADNmt. El D. melanogaster y D. simulans ADNmts difieren de ~ 100 aminoácidos y> 500 sinónimo sustituciones que afectan a 7,8 comunicación mitonuclear. Hemos generado extractos de moscas enteras y extractos enriquecidos mitocondriales para estudiar los cambios de metabolitos en respuesta al estrés farmacológico. Aquí nos muestran que al utilizar fracciones mitocondriales enriquecida detectamos cambios pronunciados en metabolitos mitocondriales entre el genotipo co-evolucionado nativo que lleva el D. ADNmts melanogaster y el genotipo perturbado llevan D. simulans ADNmt. En contraste, los cambios de metabolitos entre estos dos genotipos son sutiles utilizando métodos normales que utilizan extracto de mosca conjunto. Por lo tanto, este método proporciona un camino para entender cómo ADNmts median cambios mitocondriales enrespuesta a diferentes fármacos.

Protocol

1. Reactivos y Soluciones Preparación de alimentos con mosca y los medios de comunicación Calor ingredientes de la mosca 11% de azúcar, 2% de levadura autolizada, 5,2% de harina de maíz, agar 0,79% w / v en agua en una placa calefactora puesta a 90 ° C. Agitar regularmente hasta que se obtiene una mezcla ligeramente densa homogénea. Preparar un volumen final de 550 ml de la comida de la mosca para un total de 100 viales con 5 ml volar comida en cada uno. Retirar de la fuente de calor,…

Representative Results

Utilizando el protocolo explicado anteriormente, se realizó un análisis metabolomic en fracciones enriquecidas mitocondriales y extractos animales enteros para probar el efecto de la droga rapamicina sobre ADNmts divergentes 7. Hemos entregado 200 M de rapamicina disolviendo el fármaco en la comida de la mosca. Las moscas se expusieron a la rapamicina durante 10 días. Los metabolitos a partir de extractos de moscas enteras y a partir de extractos mitocondriales se obt…

Discussion

Los pasos más críticos en este protocolo son: 1) la cría de moscas suficientes en abundante espacio. Es muy importante que no se pueblan la demografía jaulas con más de 150 moscas cada uno; 2) el cambio de la comida de las jaulas con frecuencia para evitar la competencia de alimentos y el estrés nutricional; y 3) el mantenimiento de todas las muestras a 4 ° C para garantizar la integridad durante el aislamiento de la fracción mitocondrial. También se recomienda para enfriar el tampón de aislamiento, el tampón…

Açıklamalar

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

This work was supported by Adelphi University faculty development grant and grant R15GM113156 from NIGMS awarded to EVC, grant R01GM067862 from NIGMS and grant R01AG027849 from NIA awarded to DMR.

Materials

0.2% tegosept -methyl 4-hydroxybenzoate  VWR AAA14289
Ethanol Sigma-Aldrich 792799
Mannitol Sigma-Aldrich M4125
Sucrose Sigma-Aldrich S9378
3-(N-morpholino) propanesulfonic acid (MOPS) Sigma-Aldrich M1254 
Ethylenediaminetetraacetic acid (EDTA) Sigma-Aldrich 38057 
Bovine serum albumin (BSA) Sigma-Aldrich 5470
KCL Sigma-Aldrich P9333
Tris HCL  Sigma-Aldrich RES3098T-B7
KH2PO4 Sigma-Aldrich 1551139
CO2 pads to anesthetize flies Tritech Research MINJ-DROS-FP
1 liter cage  Web Restaurant Store 999RD32
1 liter cage lid  Web Restaurant Store 999LRD
a glass-teflon dounce homogenizer  Fisher Scientific NC9661231
Sodium hydroxide Sigma-Aldrich S8045
rapamycin  LC Laboratories  R-5000
anti-porin MitoSciences MSA03
anti-alpha tubulin Developmental Studies Hybridoma Bank 12G10
Pierce™ BCA Protein Assay Kit  Thermo Scientific  23225
CO2 pad Tritech Research, Inc MINJ-DROS-FP
filter flask enasco SB08184M
rubber stopper enasco S08512M

Referanslar

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Bu Makaleden Alıntı Yapın
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