Özet

높은 처리량 정량 실시간 RT-PCR 분석 유형 I과 III 인터페론 하위 유형의 발현 양상을 결정하는

Published: March 24, 2015
doi:

Özet

This protocol describes a high-throughput qRT-PCR assay for the analysis of type I and III IFN expression signatures. The assay discriminates single base pair differences between the highly similar transcripts of these genes. Through batch assembly and robotic pipetting, the assays are consistent and reproducible.

Abstract

Described in this report is a qRT-PCR assay for the analysis of seventeen human IFN subtypes in a 384-well plate format that incorporates highly specific locked nucleic acid (LNA) and molecular beacon (MB) probes, transcript standards, automated multichannel pipetting, and plate drying. Determining expression among the type I interferons (IFN), especially the twelve IFN-α subtypes, is limited by their shared sequence identity; likewise, the sequences of the type III IFN, especially IFN-λ2 and -λ3, are highly similar. This assay provides a reliable, reproducible, and relatively inexpensive means to analyze the expression of the seventeen interferon subtype transcripts.

Introduction

유형 I과 III 인터페론 (IFN)는 모든 척추 동물 1 바이러스 및 기타 병원성 자극와 현재에 대한 면역 반응에 중요하다. 면역 및 비 면역 세포가 응답, IFN이뿐만 아니라, 표현하고 분비한다. 이러한 수신자 같은 수용체 (TLR), 스팅, 그리고 RIG-I 등의 선천성 면역 센서는 병원체 관련 분자 패턴 (PAMP) 3,4 탐지시 타입 I과 III IFN 발현을 유도한다. 인간에서, 내가 IFN 유형은 2,5 복잡한 IFNAR-1 / IFNAR2 수용체에 IFN-β, -ω, -κ 및 IFN-α의 12 하위 유형 및 바인딩을 포함한다. 유형 III IFN은 IFN-λ1, -λ2 및 -λ3을 포함하고 IL10RB / IL28RA 수용체 복합체 (2)에 결합한다. 클래식, 유형 I과 III IFN 다음 STAT1 / STAT2 이종를 모집하고 인터페론 자극 유전자 (ISG) 6의 전사를 시작 각각의 수용체 복합체에 결합한다. ISG 항 바이러스 및 항에서, 함수의 다양한 범위에 관여적응 면역 반응 (7)의 활성화에 증식 활동.

병원체가 회피 파괴 및 IFN 시그널링 경로의 요소를 하이재킹 진화 수많은 메카니즘은 선천성 면역 반응 8 IFN의 중요성을 보여준다. 예를 들어, 우두 바이러스는 야바 같은 질병 바이러스가 I과 III IFN 단백질 (10)를 입력 억제하는 당 단백질을 분비하는 동안 9 IFN 입력 담즙산이 IFNAR-동성와 미끼 수용체를 표현한다. 숙주 방어에서의 역할 외에, IFN 또한 암 감시 및 자동 염증성 질환의 숫자에 연루 유방암 세포에서 IFN의 발현을 사일런 싱 immunosurveillance (11)을 제한, IFN-α의 과잉 생산은 전신의 개발기구는 홍 반성 루푸스 (12), 및 STING의 잘못된 활성화 STING 관련 혈관에 IFN 과도한 양으로 인한 전신 염증에 이르게(13). 치료 적, IFN이 다발성 경화증 (14)을 치료하는 데 사용되며, 이러한 털 세포 백혈병 (18)과 만성 골수성 백혈병 (19) 등의 HBV (15)와 HCV 16, 17, 및 암과 같은 만성 바이러스 성 감염. 특정 생리 학적 과정에서 IFN의 관련성에 대한 질문은 지속적으로이 사이토 카인 가족의 유비쿼터스 특성을 알 수있다.

특히 IFN-α 아형, 종종 하나의 엔티티 20-23로보다는 밀접하게 관련 그룹,하지만 서로 다른 단백질로 간주됩니다 I IFN을 입력합니다. 척추 동물의 진화 (24)에 걸쳐 존재와 IFN-α 서브 타입을 포함하여 여러 IFN 종의 지속성, 이러한 서브 타입의 적어도 일부는 특정 또는 고유 기능을 가지고 있음을 시사한다. 이는 IFN 발현의 패턴 형성 및 해독 아형 (17)의 하나 이상의 특정 기능을 특성화하는 것이 도움이 될 수있다. t 공부의 도전그는 자신의 공유 시퀀스 정체성을 기반으로 I과 III IFN 하위 유형을 입력 : 열두 IFN-α 아형이> 50 % (25)을 공유하고 IFN-λ 아형 자신의 아미노산 서열의 81~96% (26)를 공유 할 수 있습니다. 설명 QRT-PCR 분석에서, 분자 표지 (MB) 및 잠금 핵산 (LNA) 형광 프로브는 매우 유사한 IFN 하위 유형 시퀀스 사이의 단일 염기 쌍의 차이를 구별하고, IFN 식 서명의 특성을 허용. 분석의 384 웰 플레이트 형식은 각각 성적 증명서 사본 번호와 ΔCq에 의한 분석을 가능하게 정량 (전사 기준) 및 반 정량적 (하우스 키핑 유전자 (HKG)) 조치가 모두 포함됩니다. 프라이머 / 프로브 (PR / 납)를 통해 건조 가능한 자동화 된 멀티 채널 피펫 팅하고, 장기 보존에 의해 용이하게 배치 조립체는, 분석의 재현성, 유틸리티, 실용성을 강화 플레이트 상에 설정한다.

이 프로토콜은 프로세스를 설명합니다384 잘 QRT-PCR 분석 플레이트 인간 IFN 서브 타입 (표 1)을 대상으로 최대 17 개국 PR / 납 세트와 (그림 1)의 제조. PR / Pb와 콘텐츠 소스 플레이트 (도 2) 로봇 멀티 채널 피펫을 사용하여 자동화 될 수있는 프로세스에서 여러 분석 384- 웰 플레이트를 제조하기 위해 사용되는 작업 세트. 초기 포커스 인간 IFN 식 서명을 연구하기위한 프로토콜을 만드는 동안,이 방법은 물론 붉은 털 원숭이에 적용되어왔다. 플레이트 레이아웃이 다소 상이하고, PR / 납 세트 (표 2)는 별개이지만, 인간의 붉은 털 플레이트를 만들기위한 전반적인 제조 방법은 동일하다. 프로토콜의 최소의 변경으로, 상기 방법은 밀접하게 관련된 유전자의 다른 그룹을 연구하는 분석법의 개발을 허용하기 위해 수행 될 수있다.

참조 그림 1과 아래 2

표 1 및 표 2를 참조 벨오우

Protocol

기본 시리얼 희석 1. 준비 (그림 3A) 참고 : PR / 납 세트 대상 시퀀스를 포함 선형화 플라스미드의 직렬 희석 시리즈 QRT-PCR 분석을위한 양적 기준으로 사용됩니다. IFN 서브 타입에 대한 각각의 표준 용액을 희석 세트는 90 분석 판을 실행하기에 충분한 볼륨이 포함되어 있습니다. 검사에 사용 된 희석 표준 곡선의 네 점은 20-32 (표 3)의 범위의 값 CT를 커버하도록 선택된다. 해동은, 소용돌이, 그리고 간단히 표준 (50 PM)와 연어 정자 DNA (ssDNA를, 10 ㎎ / ㎖) 원액을 원심 분리기. 물 20.3 ㎖로 ssDNA를 51 μl를 혼합하여 17 표준 희석 세트의 ssDNA를 / 물 믹스를 준비합니다. 표준 희석 세트에 대해 하나의 8 관 PCR 스트립 레이블. 참고 : 주식 솔루션의 표준 희석액의 제조 2 ~ 3 시간이 소요됩니다. F에 ssDNA를 / 물 혼합 190 μl를 분배IRST의 스트립 튜브와 나머지 5 개의 튜브에 ssDNA를 / 물 혼합 180 μL. 믹스 ssDNA를 / 물 190 μL와 튜브에 50 μM의 표준 재고에서 10 μl를 전송하여 1:20 희석을 수행; 와류 신속하고 PCR 스트립 원심 분리. 시리즈의 다음 튜브에 가장 최근에 희석 된 튜브에서 20 μl를 전송하여 1:10의 희석을 수행; 와류 신속하고 PCR 스트립 원심 분리. 희석 시리즈의 마지막 튜브까지 단계를 반복 1.6 표준을 받았다. 반복 각 표준에 대해 1.3 ~ 1.7 단계를 반복합니다. 아래 표 3 참조 프라이머 / 프로브 (잠 / PB)과 없음 템플릿 제어 2. 준비 (NTC) 근무하는 믹스 (그림 3B) 참고 : 각 1.7 ml의 PR / 납 재고 30 분석 플레이트를 만들 것입니다 재고 믹스 작업 128.6 μL 없음 템플릿 컨트롤 (NTC)를 작업 세트. 홍보 / PB가 근무하는 믹스를 설정 준비합니다. 하지E : PR / 납 세트의 준비 및 NTC 근무하는 2 ~ 3 시간 소요됩니다 주식 솔루션에서 혼합합니다. 스톡 용액의 제조에 대하여 초순수 100 μM의 프라이머 및 프로브를 재현 탁. 열일곱 2 ml의 튜브까지 레이블; 분석에 포함 된 각 PR / 납 세트 하나. 해동은, 소용돌이, 그리고 간단히 프라이머 (100 μM), 프로브 (100 μM) 및 ssDNA를 (10 ㎎ / ㎖) 원액을 원심 분리기. 12.5 μL 전자 멀티 채널 피펫을 사용하여 모든 관에 ssDNA를 2 μl를 추가합니다. 해당 정방향 프라이머를 추가 리버스 프라이머, 각 PR / 납 재고 튜브를 작업 세트에 프로브. 붉은 털 원숭이 PR / 납 세트 인간의 IFN 서브 타입과 표 2를 대상으로 홍보 / PB 세트 표 1을 참조하십시오. 각 홍보의 볼륨을 일정하게 물을 추가 / PB 200 μL에게 주식 튜브를 작업 세트. 주 : 추가의 프라이머, 프로브의 양 및 물 PR / 납의 필요한 최종 반응 농도에 의존설정합니다. NTC 근무하는 믹스를 준비합니다. NTC 작업 주식에 대한 라벨이 5 튜브 PCR 스트립은 혼합합니다. 각 홍보 / PB의 14.3 μL 적절한 NTC 근무하는 혼합 튜브로 설정 전송합니다. NTC 우물에 대한 PR / 납 세트 조합은 표 4를 참조하십시오. NTC 근무하는 각각의 물을 추가 128.6 μL에 최종 볼륨을 가지고 혼합합니다. 소용돌이 짧게 원심 분리기, 얼음 또는 장기 저장을 위해 -20 ° C에서 어둠 속에서 튜브를 배치합니다. 아래 표 4 참조 홍보 / PB가 작동 주식을 설정 희석. 각 홍보 / PB의 최종 볼륨을 가지고 물 1.5 ml의 추가, NTC 근무하는 믹스에 필요한 PR / 납 세트의 분취의 제거를 수행하면 1.7 ml의 재고 튜브를 작업 세트. 소용돌이 짧게 원심 분리기, 얼음 또는 장기 저장을 위해 -20 ° C에서 어둠 속에서 튜브를 배치합니다. <p클래스 = "jove_title"> 3. 자동화 된 멀티 채널 피펫을 사용하여 384 개 웰 분석 플레이트의 제조 384 웰 분석 플레이트, 분취에 대한 PR / 납 세트와 NTC 믹스의 96 웰 소스 판을 준비합니다. 참고 : PR / 납 동작 스톡 믹스에서 소스 판의 준비 미만 1 시간이 소요됩니다. 각각의 96- 웰 플레이트 소스 여섯 384- 웰 분석 플레이트 (도 3C)를 만들기에 충분하다. 간단히 소용돌이 및 홍보 / PB가 작동 주식과 NTC 근무하는 믹스를 설정 원심 분리기. 냉장 96 웰 냉각 블록에서 새로운 96 웰 플레이트를 놓고 각 PR / 납 세트의 우물을 지정 또는 NTC는 우물 (그림 2 참조)가 나타납니다 섞는다. 250 μL 전자 멀티 채널 피펫을 사용하여 96 웰 플레이트에 물을 추가 모든 홍보에 물을 66 μl를 분배 / PB는 (대상 17 4 우물 제외)도 설정합니다. 4 대상 17 우물에 물 82.5 μl를 분배. 물론 모든 NTC 믹스에 물 27.5 μl를 분배. </리> 올바른 PR / (PB)은 96 웰 플레이트의 지정 우물에 주식을 작업 세트 추가 올바른 PR / 납 54 μL가 (대상 17 4 우물 제외) 지정된 PR / 납 세트 우물에 주식을 작업 집합 분배. 대상 (17) 홍보 / PB의 67.5 μl를 분배하면 지정된 대상 17 PR / 납 세트 우물에 주식을 작업 집합. 지정된 우물에 올바른 NTC 근무하는 믹스의 22.5 μl를 추가합니다. 콘텐츠 웰의 바닥에 적용되기 위해서는 700 XG에서 1 분 동안 접착 씰 플레이트와 원심 분리기 96- 웰 플레이트 봉쇄. 96- 웰 플레이트 어댑터를 사용 볼텍스 믹서에서 96 웰 플레이트를 넣고 1000 rpm에서 1 분 동안 혼합한다. 원심 분리기 700 x g에서 5 분 동안 96 웰 플레이트. 같은 날에 사용하는 경우, 그렇지 않으면 사용할 때까지 -20 ℃에서 저장, 4 ° C에서 어둠 속에서 96 – 웰 소스 판을 보관하십시오. 자동화 된 멀티 채널 피펫을 사용하여 설정하는 PR / 납을 추가하여 384 웰 분석 플레이트를 준비합니다. 참고 : 96 – 웰 소스 플레이트로부터 6 분석 플레이트의 제조 3 ~ 4 시간이 소요됩니다. 판을 만들기에 앞서, 4 ° C로 냉각 둥지를 사전 차리고 분당 20~25리터 (LPM) 사이에 불고 공기가 80 ° C에 125 ° C에 판 증발기 하단 열 블록을 미리 가열한다. 자동화 된 멀티 채널 피펫에 스위치를 두 번 소프트웨어 아이콘을 클릭하여 IFN 분석 판을 만들기위한 프로토콜을 엽니 다. 플랫폼을 설정하려면, 플랫폼 위치 1에서 완전히 전체 피펫 팁 상자를 배치, 위치 4의 96 웰 소스 판, 위치 (6)의 새로운 384 웰 플레이트는 재생 버튼을 눌러 실행을 시작합니다. 참고 : 실행이 완료되면, 각이 잘 홍보 / PB 믹스의 5 μl를 포함합니다. 참고 : ssDNA를의 최종 금액은 384 웰 분석 플레이트의 웰 당 추가 0.025 μg의입니다. 부드럽게 웰의 바닥에있는 유체를 보장하는 평평한 표면 384- 웰 분석 플레이트를 누르고 접착제를 적용판 인감. 원심 분리기 700 x g에서 1 분 동안 접시입니다. 판 드라이어로 384 웰 분석 플레이트를 배치, 접착제 플레이트 씰을 제거하고 우​​물 바로 위에 384 웰 매니 폴드를 놓습니다. 384 웰 분석 플레이트의 내용 건조, 새로운 접착제 플레이트 씰을 적용 할 때, 사용할 때까지 4 ° C에서 어둠 속에서 호일, 레이블 및 저장소에 포장. 주 : 후판 6 개월 이상 4 ℃에서 저장 될 수있다. 반복 단계는 3.2.3-3.2.6 6 × 때까지 384 웰 분석 플레이트는 준비 또는 96 웰 소스 판의 액체가 거의 소모된다. 냉각 둥지를 끄고 소프트웨어를 닫고, 자동화 된 멀티 채널 피펫을 끕니다. 판 건조기의 전원을 끄십시오. 4.로드 및 384 웰 분석 플레이트를 실행 잘 HKG, ssDNA를, PCR 마스터 믹스, 물에 대한 PR / 납 세트로 구성 믹스를 두 개의 하우스 키핑 유전자 (HKG)를 준비, (건조 된 384 웰 분석 플레이트에 추가 할 <strong> 그림 3D). 참고 : 믹스의 준비 및 분석 플레이트를로드하는 것은 1 ~ 2 시간이 소요됩니다. 분석 플레이트를 실행하면보다 2 시간이 소요됩니다. 각 HKG 믹스 1.5 ML 튜브 레이블. 84.9 μL 물 ssDNA를 (10 ㎎ / ㎖)의 2 μl를 희석. 희석 된 ssDNA를 2 μL, 물 11.8 μL, 마스터 믹스 23 μL 및 HKG 홍보 / PR 각 튜브, 소용돌이, 간단히 원심 분리기로 설정 올바른 20 배의 9.2 μl를 추가합니다. 인간의 분석에 대한 HKG로 글리 세르 알데히드 -3- 인산 탈수소 효소 (GAPDH)과 유비퀴틴 C (UBC)를 사용 (재료 표 참조). 붉은 털 분석에 대한 HKG로 GAPDH와 18S 리보솜 RNA를 사용합니다. 주 : 상기 분석을 수행하는 데 사용되는 HKG 유연하고 세포 유형에 적합한 유전자를 반영해야 테스트중인 GAPDH, UBC 및 18S는 일반적으로 사용되는 HKG의 예이다. 다른 HKG 더 적합 할 수 있습니다. 샘플 및 positi 준비잘 샘플 또는 양성 대조군의 cDNA, 마스터 믹스, 물 구성 믹스를 제어했습니다, 건조 된 384 웰 분석 플레이트에 추가 할 수 있습니다. 샘플을 준비하고 충분한 양의 양성 대조군 믹스 21 판 우물 (그림 3D)에 분배 할 수 있습니다. cDNA 합성에 앞서, DNase의 소화 단계 RNA 샘플을 준비하는 제조업체의 지침을 따르십시오. 제조업체의 지침을 다음의 RNase H (각 시료 24 μL의 최종 부피)으로 처리하여 RNA의 적어도 500 NG의 cDNA 합성에서 사전에 샘플 및 양성 대조군을 준비합니다. 사용할 때까지 -20 ℃에서 제조 된 cDNA를 저장합니다. 해동은, 소용돌이, 그리고 간단히 샘플의 cDNA를 원심 분리기. 마스터 믹스의 78.8 ㎕를 각 24 μL 샘플 및 양성 대조군 튜브에 물 54.8 μl를 추가합니다. 간단히 와동 및 원심 분리 튜브. 표준을 준비하고 NTC는 물론, 죄수를 혼합마스터 믹스 및 물 sisting은 건조 384- 웰 분석 플레이트 (도 3d)에 첨가한다. 기준을 잘 섞는다를 들어, 1.5 ML 튜브에 마스터 믹스 275 μL에 물 165 μl를 추가합니다. NTC는 잘 섞는다를 들어, 1.5 ML 튜브에 마스터 믹스의 52.5 μL 물 52.5 μl를 추가합니다. 간단히 와동 및 원심 분리 튜브. 믹스 및 샘플 로딩 건조 된 384 웰 분석 플레이트를 준비합니다. 700 x g에서 1 분간 건조 된 384 웰 분석 4 ° C 접시와 원심 분리기를 제거합니다. , 냉장 384 웰 냉각 블록에 접시를 놓고 접착제 플레이트 씰을 제거하고 다양한 믹스 및 샘플 (그림 1) 피펫 될 위치를 지정하는 판의 우물을 설명합니다. 표준 잘 믹스, 표준 384 웰 분석 플레이트를로드, NTC는 물론, 샘플, 긍정적 인 제어, HKG 믹스 (그림 3E)을 섞는다. 소용돌이 짧게 원심 분리기 모든 솔루션 플레이트에 분배하기 전에. 표준의 6 μL 잘 30 μL 전자 멀티 채널 피펫 각 표준에 잘 혼합 분배. 12.5 μL 전자 멀티 채널 피펫과 잘 지정에 올바른 표준 용액을 희석의 1.5 μl를 분배. NTC의 7.5 μL 잘 30 μL 전자 멀티 채널 피펫과 잘 각각 NTC에 혼합 분배. 30 μL 전자 멀티 채널 피펫으로 지정된 우물에 샘플의 7.5 μl를 분배. 12.5 μL 전자 멀티 채널 피펫으로 지정된 우물에 혼합 HKG 홍보 / PB의 2.5 μl를 분배. 30 μL 전자 멀티 채널 피펫 남은 물과 마스터 믹스 혼합물의 7.5 μL와 빈 우물을 채우기; 물 7.5 ㎕를 단독으로도 작동합니다. 700 × g으로 1 분간 광 접착 필름과 함께 원심 384- 웰 분석 플레이트 봉쇄. 2,600 rpm에서 2 분간 볼텍스 믹서에 밀봉 384- 웰 플레이트 와동및 X g 700에서 5 분 동안 원심 분리. , QRT-PCR 기계에 밀봉 된 384 웰 분석 플레이트를 놓고 분석 레이아웃 템플릿을 열고 실행을 시작합니다. 참고 : 결과는 스프레드 시트 또는 분석을 위해 텍스트 파일로 내보낼 수 있습니다. 분석을 위해 다음과 같은 최적의 유전자 증폭기 반응 조건을 사용하여 : ⅰ) 50 ℃ 2 분, ⅱ) 95 ° C 10 분 동안, III)을 25 초 동안 95 ° C, ⅳ) 1 분 동안 59 ° C. 반복은 40 사이클 III 및 IV 단계를 반복합니다. 스프레드 시트 응용 프로그램 소프트웨어에 QRT-PCR 플랫폼에서 원시 데이터를 내 보냅니다. 선형성을 관찰하기위한 표준 곡선으로 설정 한 각 4 점 기준을 그린다. ΔCq을 계산하여 또는 네 개의 점 표준 곡선 (27)에 따라 복사 번호 분석을 수행합니다. 아래 그림 3 참조

Representative Results

QRT-PCR 분석은 세포 유형 및 다양한 상황에서 타입 I IFN 및 III의 발현 패턴을 분석하도록 구현 될 수있는 바와. 예를 들어, 인간의 타입 I IFN 및 III 식 서명 6 공여체 TLR 리간드 자극 된 말초 혈 단핵 세포 (PBMC)에서 분석 하였다; 폴리 I : C (25 ㎍ / ㎖), LPS (10 NG / ㎖), 이미 퀴 모드 (10 μM)과의 CpG 올리고 뉴클레오티드 (1 μM) (도 4). 데이터는 스프레드 시트 애플리케이션 소프트웨어를 사용하여 분석 및 단백질 서열 (27)의 계통에 따라 시계 방향으로 배열 된 IFN-α 아형과 레이더 차트로 제시 하였다. 인간 IFN 발현의 레이더 차트 세이 디자인에 혼입 분석의 두 가지 방법을 사용하여 계산 로그 스케일로 표시된다 : HKG (ΔCq)로 정규화 절대 된 CQ 값, 총 RNA의 마이크로 그램 (μg의) 당 템플릿의 수를 복사 . 카피 수의 값은 O 결과로부터 산출되는 FA 성적표의 표준 곡선. 데이터는 TLR 작용제에 의해 유발되는 인간 IFN 발현 서명 특정 리간드 것을 보여준다. 아래 그림 4 참조 인간 IFN 발현 서명을 알 수 있듯이, 유형의 발현 서명은 붉은 털 원숭이의 I과 III IFN은 특정 TLR 리간드했다. 3 시간 (도 5)을위한 C (50 ㎍ / ㎖), LPS (10 ㎍ / ㎖), 및 이미 퀴 모드 (10 ㎍ / ㎖) : 3 공여자 PBMC 폴리 I로 자극 하였다. 기준에 자극되지 않은 세포에서 IFN 아형 발현은 낮았다. C : IFN-γ 아형의 수에는 제한 LPS 및 폴리 I에 대한 응답으로 표현되었다. 대조적으로, 이미 퀴 모드에 응답하여 IFN 발현 높고 하위 표현식 넓은이었다. 세 TLR (28) 작용제 IFN-β와 IFN-λ1의 발현이 향상되었다. 아래 그림 5 참조 항상 "> 그림 1 :. 열일곱 PR / 납 세트와 384 웰 분석 플레이트의 레이아웃 대상 수는 PR / 납 집합을 의미한다. 네 점 표준 곡선 (어두운 회색 삼각형) 열 1-5에 추가됩니다. HKG PR / 납 세트 (흰색 배경), 컬럼 6, 7 나머지 컬럼에 8-24을 추가 열일곱 PR / 납 세트 중 하나에 특이된다. 샘플은 열 6-24 (검은 색 화살표)에서, 행 AP에 추가됩니다. 열 다섯의 맨 아래에있는 두 개의 우물 (O5, P5 참조)은 물과 마스터 믹스를받을 수 있습니다. 이 그림의 더 큰 버전을 보려면 여기를 클릭하십시오. 그림 2. 열일곱 PR / 납 집합과 96- 웰 플레이트 소스 레이아웃 대상 번호 PR / Pb를 지칭설정합니다. 홍보 / PB 세트가 여러 우물에 추가 할 때 검은 색 화살표가 나타냅니다. NTC 믹스 지정된 우물 (어두운 회색 배경)에 추가됩니다. 대각선으로 두 개의 우물 (F3, G3)이 사용되지. 이 그림의 더 큰 버전을 보려면 여기를 클릭하십시오. 그림 3 : QRT-PCR 분석 프로토콜의 특정 단계의 회로도 AE 다이어그램 프로토콜의 부분을 선택합니다.. (A) 단계 1 : 표준 희석액의 제조. (B) 2 단계 : PR / 납 및 NTC 근무하는 믹스의 준비. (C) 단계 3.1 : PR / 납 세트와 NTC 믹스의 96 잘 작동 주식 판의 준비. (D) 단계 4.1-3 : 384 웰 분석 플레이트를로드하는 믹스의 준비. (E) 세인트EP 4.5 : 384 웰 분석 플레이트로드. 다이어그램은 오른쪽 아래 왼쪽 상단에서 읽습니다. 인터페론 (IFN) 분석 용 시약은 -20 ℃로 저장되고, 왼쪽 칸에 표시됩니다; 프로토콜의 행 별도의 조치. 이 그림의 더 큰 버전을 보려면 여기를 클릭하십시오. 도 4 :. 말초 혈 단핵 세포에서 인간 IFN 식 서명 (PBMC)는 TLR 리간드로 자극시키고, RNA는 QRT-PCR 분석을 위해 수확 하였다 자극 PBMC에 사용 TLR 리간드에 대한 응답으로 다르다. 피크 응답의 기하학적 수단은 I를 폴리 : C (25 ㎍ / ㎖) 8 시간 (적색 사각형), LPS (10 NG / ㎖)으로 4 시간 (녹색 삼각형), 이미 퀴 모드 (10 μM)로 16 시간을 연속적으로 ( 자주색 다이아몬드) 소비재 (1 μM)에서16 시간 (검은 색 원), 16 시간에서 비자극 제어 (파란색 원) 6 기증자 (왼쪽) HKG UBC ΔCq의 표현의 함수로 로그 (10) 규모에 표시되거나 RNA의 μg의 당 카피 수로 (오른쪽) . IFN-α 아형 아미노산 서열 유사성의 계통 플롯에 따라 정렬된다. 이 그림은 원래 면역학 및 세포 생물학 (27)에 게재되었다. 그림 5 :. 말초 혈액 단핵 세포에서 붉은 털 원숭이 IFN 식 서명 (PBMC)를 (사각형, 다이아몬드, 그리고 삼각형으로 지정) 세 개의 붉은 털 원숭이에서 자극 PBMC에 사용되는 TLR 리간드에 대한 응답으로 다른 전혈에서 분리하고, C (50 ㎍ / ㎖) 또는 이미 퀴 모드 (10 ㎍ / ㎖) : 리포 폴리 사카 라이드 (LPS) (10 ㎍ / ㎖), 폴리 I로 자극. 세포는 OPE (0 시간에 수확N 모양) 또는 IFN 발현을 측정하는 TLR 자극 (폐쇄 모양의 3 시간) 후. 유형 I, II 및 III IFN의 성적 수준 (왼쪽) HKG GAPDH ΔCq의 표현의 기능 또는 사본 번호 / μg의 RNA를 (오른쪽)로 로그 (10) 규모에 표시됩니다. 이 그림은 원래 인터페론의 저널과 사이토 카인 연구 28 년에 출판되었다. 표 1. 인간 IFN 프라이머 / 프로브 세트 시퀀스 및 반응 정보 이 테이블의 더 큰 버전을 보려면 여기를 클릭하십시오. 표 2 :. 히말라야 원숭이 IFN 프라이머 / 프로브 세트 시퀀스 및 반응 정보 이 테이블의 더 큰 버전을 보려면 여기를 클릭하십시오. 플라스미드 농도 (FM) B C 디 IFN-α1 (25) 2.5 0.25 0.025 IFN-α2 (25) 2.5 0.25 0.025 IFN-α4 2,500 (250) (25) 2.5 IFN-α5 (25) 2.5 0.25 0.025 IFN-α6 (250) (25) 2.5 0.25 IFN-α7 (250) (25) 2.5 0.25 IFN-α8 (250) (25) 2.5 0.25 IFN-α10 (25) 2.5 0.25 0.025 IFN-α14 (25) 2.5 0.25 0.025 IFN-α16 (250) (25) 2.5 0.25 IFN-α17 (25) 2.5 0.25 0.025 IFN-α21 (25) 2.5 0.25 0.025 IFN-λ1 (25) 2.5 0.25 0.025 IFN-λ2 (25) 2.5 0.25 0.025 IFN-λ3 (250) (25) 2.5 0.25 IFN-β (25) 2.5 0.25 0.025 IFN-ω (250) (25) 2.5 0.25 표 3 : 표준 희석 세트 농도 정보를 제공합니다. IFN PR / 납 세트 추가 물 볼륨 추가 (ML) NTC 1 IFN-β, -ω, -λ3 85.7 NTC 2 IFN-α1, -α5 100.0 NTC 3 IFN-α2 114.3 NTC 4 IFN-α4 114.3 NTC (5) IFN-α7 114.3 NTC (6) IFN-α6, -α8, -α10 85.7 NTC (7) IFN-α14, -α16 100.0 NTC (8) IFN-α17 114.3 NTC (9) IFN-α21, -λ1 100.0 NTC (10) IFN-λ2 114.3 표 4 : NTC 근무하는 정보를 혼합합니다.

Discussion

이 보고서는 설계, 배치 생산 및 연구 실험실 설정에서 매우 유사한 유전자의 집합의 전사를 측정하기위한 분석의 분석을 향해 접근 방법을 설명합니다. 여기에보고 높은 처리량 QRT-PCR 분석은 IFN-γ 및 측정 – 높은 특이 λ 하위 유형. 이 방법은 두 가지 주요 측면, 상동 유전자 가족의 구성원 및 홍보 / PB 세트가 미리로드 안정적이고 일관성있는 384 웰 분석 판의 제작을위한 생산 플랫폼의 개발을 구별 PR / 납 세트의 디자인을 포함한다. QRT-PCR 프로브는 자신의 특이성 (29)을 강화쪽으로 구조 (MB) 또는 화학 물질 (LNA) 접근 방식을 통합합니다. 서스 분석 (표 2)의 프라이머 세트의 두 들어, 증폭 불응 돌연변이 시스템 (ARMS)은 상기 특이성을 향상 30 프라이머 서열 내로 통합되었다. 그것은 enha에 엑손 – 엑​​손 접합을 대상으로 가장 좋습니다 동안유형 I 유전자는 인트론이 부족 IFN 때문에 QRT-PCR 반응의 후부 특이성이 가능하였습니다. 따라서, 게놈 DNA를 PCR 반응에서 증폭 할 것이고, 이후에 RNA 추출의 DNase 처리에 의해 분해되어야한다.

PR / 납 세트의 타깃 영역은 각각의 IFN에 대한 성숙 펩티드의 코딩 영역으로 제한되었다. 때문에 IFN-α 아형, 특히 성숙 펩타이드 지역 중 높은 서열의 유사성, 그것은 특이성을 확인하기 위해 감도를 손상 때때로 필요했다. 특히 다른 IFN-α 서브 타입에 비해 성숙한 펩타이드 성적은 네 개의 고유 한 염기가 IFN-α17와 사건이었다. 대상 IFN-α17 프로브 특이성을 제한하는 여러 아형의 성적 증명서를 결합하는 프라이머를 요구했다. 그 결과, PCR 반응시켜 PCR 시약 및 loweri의 상당한 부분을 차지하는만큼, IFN-α17 이외 아형을 증폭 할IFN-α17 대한 특이 적 프로브의 형광 신호의 진폭 겨. 이러한 IFN으로 매우 유사한 유전자 민감하고 특정 PR / 납 세트를 디자인으로 추가 과제는의 GenBank 데이터베이스에 주석 시퀀스는 디자인시 전체 또는 명시되지 않은 다른 항목이있을 수도 있다는 가능성이다. 다시이 새로 주석 서열 완벽 설계시에 데이터베이스의 시퀀스의 버전과 정렬되지 않은에서 IFN-α17위한 도전이었다. 잠을 설계 할 때 따라서 / (PB)은 예의 검토되지 않은 유전자 세트, 주기적으로 표적 유전자의 최신 주석 서열을 확인하는 것이 현명하다. 마지막으로, PR / 납 셋이 전사되지만 번역되지 될 수 가유를 증폭하지 않도록 할 필요가있다.

PR / 납 세트를 설계 한 후, 다음 과제는 17 개국 홍보 / PB의 PCR 조건을 최적화하는 것은 하나의 384 웰 플레이트에 설정합니다. 성적 표준 impor의 아르홍보 / PB 세트의 특이성을 테스트하고 수많은 다른 PCR 반응의 QRT-PCR 조건의 조화를 위해 필수적이 될에 TANT. 성적 기준에 대해 홍보 / PB 세트를 테스트하는 것은 효율성과 감도를 설정; 매우 유사한 발현 유전자를 발현하는 플라스미드 설정 PR / 납 선택적 기능 유전자의 전사를 측정하는 것을 보장 할 필요가있다. 전 사체 수준은 하우스 키핑 유전자 (ΔCq) 내지 반 정량 분석​​ 상대적인 이외에 정량적 분석 수단 (전 사체의 수)를 제공한다.

다중 384- 웰 분석 플레이트로 96 웰 플레이트에서 소스 로봇 멀티 채널 피펫은 정밀도와 플레이트 간 결과의 일관성을 개선한다. 수행이 플레이트에 분주 시약으로 건조 연어 정자 DNA (ssDNA를)를 안정화시키고 장기 기억 PR / 납 세트를 유지 담체로서 사용된다. 플레이트를 건조시켜 또한 반응의 볼륨이 작아결과적으로 귀중한 샘플을 보존하고 비싼 시약의 사용을 감소 재현 가능한 결과, 필요한. 이 단계를 통해, 판의 배치는 6 개월 이상 정밀도와 일관성을 제공하는 조립된다.

판 준비에 따라, 품질 관리 대책은 판의 배치의 일관성을 확인하는 것이 중요하다. 이를 위해, 표준의 추가로 네 세트 접시에 실행됩니다. "5 배 표준"판 성능을 추적하고 개인 판의 표준이 비교되는 데이터 세트를 생성합니다. 각 표준의 열 10 배 희석은 분석 설계시 사용되지만, 공간 고려 네 점은 각각의 분석 플레이트에 표준 곡선에 사용하고, 5 배 표준 플레이트에 대한 것을 요구한다. 또한, 양성 대조군은 플레이트의 무결성을 보장하기 위해 각 플레이트에 포함되어야한다.

일반적으로, 그것은 홍보 / PB의 하나에서 여섯 분석 플레이트를 준비하기 위해 3 ~ 4 시간 소요ource 판; 이 연구 실험실에서 하루에 열두 판을 준비 가능하다. 각 인간 IFN 하위 유형 분석 플레이트 열일곱 PR / 납 세트를 검사하고 다섯 실험 샘플을 수용 할 수 있기 때문에, 어셈블리의 어느 날 3060 실험 데이터 포인트를 생성 할 수있는 능력과 판의 배치를 생산하고 있습니다. QRT-PCR 플랫폼 원시 데이터가 처리 및 자동 분석 미리 디자인 템플릿을 채우기 위해 스프레드 시트 애플리케이션 소프트웨어에서 프로그램 스크립트를 사용하여 조립 될 수있다. 이 방법은 손에 데이터를 입력함으로써 방지 복사 오류를 최소화하고 조사 데이터 분석이 아닌 데이터 어셈블리에 초점을 맞출 수 있습니다. 여기에 설명 된 바와 같이, 높은 처리량이 QRT-PCR 분석은 인간 또는 붉은 털 원숭이 샘플 인터페론 아형의 발현을 측정하는 데 적용 할 수있는 다른 화학 종 또는 상동 유전자 세트를 사용하도록 구성 될 수있다. 플레이트 레이아웃의 유연성은 사용자가 프라이머를 변경할 수 있습니다 / 프로브의 유전자를 맞게 설정특정 세포 유형 또는 모델 시스템을 향한 관심. 이 분석은 면역 반응에 관여하는 신호 전달 메커니즘을 해명 병원체를 연구 세포 배양 모델에서 또는 질병 모델의 컨텍스트의 환자 샘플에서 IFN 식 서명을 측정하기 위해 적용될 수있다.

Açıklamalar

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

이 작품은 CBER / FDA-NIAID / NIH 부처 간 계약 YI-AI-6153-01, FDA / CBER 교내 자금 및 FDA 의료 대책 이니셔티브에 의해 지원되었다. TCT는, MNB는 VPM은, LMS, 그리고 KDK는 미국 에너지 Departmen과 미국 사이의 부처 간 계약을 통해 과학 교육의 오크 리지 연구소에 의해 관리 생물 의약품 평가 연구 센터의 연구 참여 프로그램에 대한 약속에 의해 지원되었다 식품 의약품 안전청.

Materials

0.2mL PCR Tube Strips  Eppendorf (Westbury, NY, USA) E0030 124 286
12-channel 384 Equalizer Electronic Pipette, 0.5-12.5uL Thermo-Fisher Scientific (Waltham, MA, USA) 14-387-139 *Discontinued
12-channel 384 Equalizer Electronic Pipette, 1-30uL Thermo-Fisher Scientific (Waltham, MA, USA) 14-387-137 *Discontinued
12-channel Electronic Pipette, 5-250uL Thermo-Fisher Scientific (Waltham, MA, USA) 14-387-118 *Discontinued
2.0mL Micro Centrifuge tube, sterile Celltreat Scientific Products (Shirley, MA, USA) 229446
8-channel Electronic Pipette, 15-1250uL Thermo-Fisher Scientific (Waltham, MA, USA) 14-387-115 *Discontinued
Disposable Reagent Reservoirs  VWR International (Radnor, PA, USA) 89094-668 25mL reservoirs with 2 dividers
E-Centrifuge Wealtec Corp. (Sparks, NV, USA) 1090003
Eukaryotic 18S rRNA (18S) Applied Biosystems (Foster City, CA, USA) Hs99999901_s1 Rhesus HKG Primer/probe set
Fixed Speed Mini Vortexer Thermo-Fisher Scientific (Waltham, MA, USA) 02-215-360
Gas Permeable Adhesive Plate Seal Thermo-Fisher Scientific (Waltham, MA, USA) AB-0580 Disposable plate seal used during the plate preparation process 
Glyceraldehyde-3-phosphate dehydrogenase (GAPDH) FBR (Silver Spring, MD, USA) Custom Order Human HKG Primer/probe set
Glyceraldehyde-3-phosphate dehydrogenase (GAPDH) Applied Biosystems (Foster City, CA, USA) Rh02621745_g1 Rhesus HKG Primer/probe set
Hudson Solo automated multichannel pipettor  Hudson Robotics (Springfield, NJ, USA) 800200 Modified with a 384-well cooling nest
Linearized plasmids (IFN genes) Aldevron (Fargo, ND, USA) Custom Order Item 3000, 3580; used for assay standards 
LNA inhibitors Exiqon (Woburn, MA, USA) Custom Order Item 500100
LNA Probes Sigma-Proligo (St. Louis, MO, USA) Custom Order Material number VC00023
Matrix Filtered Pipet Tips, 12.5uL Thermo-Fisher Scientific (Waltham, MA, USA) 14-387-193
Matrix Filtered Pipet Tips, 30uL Thermo-Fisher Scientific (Waltham, MA, USA) 14-387-196
Matrix TallTip Extended Length Pipet Tips, 1250uL Thermo-Fisher Scientific (Waltham, MA, USA) 14-387-160
Matrix TallTip Extended Length Pipet Tips, 250uL Thermo-Fisher Scientific (Waltham, MA, USA) 14-387-152
MicroAmp Optical 384-Well Reaction Plate with Barcode Applied Biosystems (Foster City, CA, USA) 4309849
MicroAmp Optical 96-Well Reaction Plate Applied Biosystems (Foster City, CA, USA) N8010560
MicroAmp Optical Adhesive Film Applied Biosystems (Foster City, CA, USA) 4311971 Adhesive film used for sealing the plate prior to the qRT-PCR run 
Microsoft Excel 2010 Spreadsheet Microsoft (Redmond, WA, USA)  Office 2010 Visual Basic programming language 
MixMate Vortex Mixer Eppendorf (Westbury, NY, USA) 5353 000.014 2 dimensional plate vortex apparatus
Molecular Beacon Probes FBR (Silver Spring, MD, USA) Custom Order
PCR Cooler, iceless cold storage system for 96 well plates and PCR tubes Eppendorf (Westbury, NY, USA) Z606634-1EA
Plate Dryer (manifold) Mechanical and Electrical Design Fabrications, NIH Office of Research Services (Bethesda, MD, USA) Custom Order
Primer sets FBR (Silver Spring, MD, USA) Custom Order
pUC57 plasmid DNA Genescript (Piscataway, NJ, USA) SD1176
Rnase-Free 1.5mL Microfuge Tubes Life Technologies (Grand Island, NY, USA) AM12400
RNase-free DNase Set (50) Qiagen (Valencia, CA, USA) 79254
RNase H New England Biolabs (Ipswitch, MA, USA) M0297L
RNeasy Mini Kit (250) Qiagen (Valencia, CA, USA) 74106
Robot Tips (clear tip pre-sterilized pipet tips) Hudson Robotics (Springfield, NJ, USA) 800350-S
Salmon Sperm DNA Solution Invitrogen (Carlsbad, CA, USA) 15632-011
SoftLinx Version V Hudson Robotics (Springfield, NJ, USA) Custom Order Software for programming pipetting steps
TaqMan Fast Universal PCR Master Mix (2x), no AmpErase UNG Life Technologies (Grand Island, NY, USA) 4352042
ABgene Adhesive Plate Seals   Thermo-Fisher Scientific (Waltham, MA, USA) AB0580
Ubiquitin C (UBC) Applied Biosystems (Foster City, CA, USA) Hs01871556_s1 Human HKG Primer/probe set
Verso cDNA synthesis Kit Thermo-Fisher Scientific (Waltham, MA, USA) AB1453B
ViiA 7 Real-Time PCR System Applied Biosystems (Foster City, CA, USA) 4453536
Water-Ultra Pure Quality Biological, INC. (Gaithersburg, MD, USA) 351-029-101
Zipvap 384 (plate dryer heating element) Glas-Col LLC (Terre Haute, IN, USA) 384-109A Plate Dryer

Referanslar

  1. Yan, N., Chen, Z. J. Intrinsic antiviral immunity. Nature. 13, 214-222 (2012).
  2. Pestka, S., Krause, C. D., Walter, M. R. Interferons, interferon-like cytokines, and their receptors. Immunological reviews. 202, 8-32 (2004).
  3. Baum, A., Garcia-Sastre, A. Induction of type I interferon by RNA viruses: cellular receptors and their substrates. Amino acids. 38, 1283-1299 (2010).
  4. Kotenko, S. V., et al. IFN-lambdas mediate antiviral protection through a distinct class II cytokine receptor complex. Nature. 4, 69-77 (2003).
  5. Hardy, M. P., Owczarek, C. M., Jermiin, L. S., Ejdeback, M., Hertzog, P. J. Characterization of the type I interferon locus and identification of novel genes. Genomics. 84, 331-345 (2004).
  6. Cheon, H., et al. IFNbeta-dependent increases in STAT1, STAT2, and IRF9 mediate resistance to viruses and DNA damage. The EMBO journal. 32, 2751-2763 (2013).
  7. Schneider, W. M., Chevillotte, M. D., Rice, C. M. Interferon-stimulated genes: a complex web of host defenses. Annual review of immunology. 32, 513-545 (2014).
  8. Hiscott, J., Nguyen, T. L., Arguello, M., Nakhaei, P., Paz, S. Manipulation of the nuclear factor-kappaB pathway and the innate immune response by viruses. Oncogene. 25, 6844-6867 (2006).
  9. Alcami, A., Symons, J. A., Smith, G. L. The vaccinia virus soluble alpha/beta interferon (IFN) receptor binds to the cell surface and protects cells from the antiviral effects of IFN. Journal of virology. 74, 11230-11239 (2000).
  10. Huang, J., et al. Inhibition of type I and type III interferons by a secreted glycoprotein from Yaba-like disease virus. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 104, 9822-9827 (2007).
  11. Bidwell, B. N., et al. Silencing of Irf7 pathways in breast cancer cells promotes bone metastasis through immune escape. Nature medicine. 18, 1224-1231 (2012).
  12. Di Domizio, J., Cao, W. Fueling autoimmunity: type I interferon in autoimmune diseases. Expert review of clinical immunology. 9, 201-210 (2013).
  13. Crow, Y. J., Casanova, J. L. STING-Associated Vasculopathy with Onset in Infancy – A New Interferonopathy. The New England journal of medicine. , (2014).
  14. Bermel, R. A., Rudick, R. A. Interferon-beta treatment for multiple sclerosis. Neurotherapeutics : the journal of the American Society for Experimental NeuroTherapeutics. 4, 633-646 (2007).
  15. Kingham, J. G., et al. Treatment of HBsAg-positive chronic active hepatitis with human fibroblast interferon. Gut. 19, 91-94 (1978).
  16. Heathcote, J., Main, J. Treatment of hepatitis C. Journal of viral hepatitis. 12, 223-235 (2005).
  17. Donnelly, R. P., Dickensheets, H., O’Brien, T. R. Interferon-lambda and therapy for chronic hepatitis C virus infection. Trends in immunology. 32, 443-450 (2011).
  18. Castaigne, S., et al. Interferon alpha in the treatment of hairy cell leukemia. Cancer. 57, 1681-1684 (1986).
  19. Kumar, L., Basade, M., Gulati, S. C. Role of interferon-alpha in chronic myeloid leukemia. The Journal of the Association of Physicians of India. 3, 26-32 (1995).
  20. Dai, C., et al. Interferon alpha on NZM2328.Lc1R27: Enhancing autoimmunity and immune complex-mediated glomerulonephritis without end stage renal failure. Clinical immunology (Orlando, Fla.). 154, 66-71 (2014).
  21. Maeda, S., et al. Interferon-alpha Acts on the S/G2/M Phases to Induce Apoptosis in the G1 Phase of an IFNAR2-Expressing Hepatocellular Carcinoma Cell Line. The Journal of biological chemistry. , (2014).
  22. Xia, C. Q., et al. Increased IFN-alpha-Producing Plasmacytoid Dendritic Cells (pDCs) in Human Th1-Mediated Type 1 Diabetes: pDCs Augment Th1 Responses through IFN-alpha Production. Journal of immunology. 193, 1024-1034 (2014).
  23. Hervas-Stubbs, S., et al. Conventional but not plasmacytoid dendritic cells foster the systemic virus-induced type I IFN response needed for efficient CD8 T cell priming. Journal of immunology. 193, 1151-1161 (2014).
  24. Manry, J., et al. Evolutionary genetic dissection of human interferons. The Journal of experimental medicine. 208, 2747-2759 (2011).
  25. Chen, J., Baig, E., Fish, E. N. Diversity and relatedness among the type I interferons. Journal of interferon & cytokine research : the official journal of the International Society for Interferon and Cytokine Research. 24, 687-698 (2004).
  26. Fox, B. A., Sheppard, P. O., O’Hara, P. J. The role of genomic data in the discovery, annotation and evolutionary interpretation of the interferon-lambda family. PloS one. 4, e4933 (2009).
  27. Hillyer, P., et al. Expression profiles of human interferon-alpha and interferon-lambda subtypes are ligand- and cell-dependent. Immunology and cell biology. 90, 774-783 (2012).
  28. Schramm, L. M., et al. High-throughput quantitative real-time polymerase chain reaction array for absolute and relative quantification of rhesus macaque types I, II, and III interferon and their subtypes. Journal of interferon & cytokine research : the official journal of the International Society for Interferon and Cytokine Research. 32, 407-415 (2012).
  29. Wang, Q., Chen, L., Long, Y., Tian, H., Wu, J. Molecular beacons of xeno-nucleic acid for detecting nucleic acid. Theranostics. 3, 395-408 (2013).
  30. Little, S., et al. Amplification-refractory mutation system (ARMS) analysis of point mutations. Current protocols in human genetics / editorial board, Jonathan L. Haines … [et al.]. 9 (Unit 9 8), (2001).

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Renn, L. A., Theisen, T. C., Navarro, M. B., Mane, V. P., Schramm, L. M., Kirschman, K. D., Fabozzi, G., Hillyer, P., Puig, M., Verthelyi, D., Rabin, R. L. High-throughput Quantitative Real-time RT-PCR Assay for Determining Expression Profiles of Types I and III Interferon Subtypes. J. Vis. Exp. (97), e52650, doi:10.3791/52650 (2015).

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