Кохлеарных имплантов (ДИ) позволяют слышать прямым электрической стимуляции слухового нерва. Однако плохое частоты и разрешения, интенсивность ограничивает качество слуха с СНГ. Здесь мы опишем optogenetic стимуляции слухового нерва у мышей в качестве альтернативной стратегии для слухового исследований и разработке будущих ДИ.
Прямая электрическая стимуляция спиральных ганглиев (SGNs) по кохлеарных имплантов (CIS) позволяет открытый понимания речи в большинстве имплантированных глухих субъектов 1- 6. Тем не менее, звук кодирование с текущими СНГ плохое разрешение и частоту интенсивности вследствие широкого распространения тока от каждого электрода контакт активирующего большое количество SGNs вдоль оси tonotopic улитки 7- 9. Оптический стимуляции предлагается в качестве альтернативы электрической стимуляцией, что обещает более ограниченном пространстве активацию SGNs и, следовательно, более высоким разрешением по частоте кодирования. В последние годы, прямой инфракрасной подсветки улитки был использован, чтобы вызвать реакцию в слухового нерва 10. Тем не менее она требует более высоких энергий, чем электрическая стимуляция 10,11 и остается неопределенность в отношении базового механизма 12. Здесь мы опишем метод, основанный на optogenetics стимулировать SGNsс низкой интенсивности синего света, используя трансгенных мышей с нейронной выражения channelrhodopsin 2 (ChR2) 13 или вируса-опосредованной экспрессии ChR2-вариант поймать 14. Мы использовали микро-светоизлучающие диоды (μLEDs) и волоконно-связанных лазеров для стимулирования ChR2-выражающие SGNs через небольшой искусственного отверстия (cochleostomy) или круглого окна. Мы анализировали ответов на волосистой части головы записями легких вызванные потенциалы (optogenetic слуховые реагирования ствола мозга: oABR) или микроэлектродов записей от слухового пути и сравнили их с акустической и электрической стимуляции.
По данным Всемирной организации здравоохранения, 360 миллионов человек во всем мире страдают от потери слуха. В глухих субъектов, прямое электрическая стимуляция SGNs цис обеспечить открытый понимания речи в большинстве из них 1,2,4,5. Даже при том, ДИ были имплантированы в более чем 200 тысяч людей, поэтому является наиболее успешным neuroprosthesis, звук кодирования обусловлен текущими кохлеарных имплантов ограничено. ДИ на основе электрической стимуляцией с помощью определенного количества электродов, где каждый из них активирует tonotopic область слухового нерва, таким образом, минуя дисфункциональное сенсорную орган Корти в улитке. Нормальный слух слушатели могут дискриминировать более 2000 частот, однако сегодняшние ДИ использовать только до 12-22 частотных каналов 4. Это связано с широко распространенной тока от каждого стимулирующего электрода 7,9, активируя большое количество SGNs, которые представляют собой множество различных звуковых частот 8,15. Этоограничение может быть улучшена с помощью многополярного стимуляцию, но за счет более высокое энергопотребление 16,17. Их выход динамический диапазон для интенсивности звука также ограничен, как правило, ниже 6-20 дБ 4,18. По этим причинам, улучшения частоты и разрешения, интенсивность являются важными задачами для повышения производительности CI для улучшения распознавания речи в шумной обстановке, стихосложения понимания и восприятия музыки.
Другой вариант, чтобы стимулировать слуховой нерв является оптический стимуляция. Свет может быть легко направлены в целевой небольшое население SGN, обещает более пространственного ограничения, повышение разрешающей способности по частоте, а также расширение динамического диапазона, в результате чего более высоким разрешением интенсивности. Действительно, кохлеарная стимуляция инфракрасного света показал отличную частотное разрешение на животных моделях 10,11,19. Одним из недостатков этого вида стимуляции является то, что он требует более высоких энергий, чем электрической стимуляцией <suр> 10,11. Кроме того, опасения по поводу способности метода напрямую стимулировать слуховые нейроны были подняты 12,20.
В качестве альтернативы инфракрасной стимуляции, мы используем optogenetics оказывать SGNs чувствительна к свету. Optogenetics является новым подходом, который сочетает в себе генетические и оптические методы неинвазивного и специально контрольными клетками с высоким временным точностью (отзывы 21- 23). В настоящее время наиболее часто используется модальность использует выражение микробного channelrhodopsin 2 (ChR2) гена Chlamydomonas reinhardtii и их варианты, кодирующую легкую закрытого катионов канал 24. ChR2 является 7-трансмембранный-спираль белок, который, когда трансдуцированных в нейроны и активируется синим светом, выступает в качестве неселективного канал катион, таким образом, деполяризации клеток 24- 27. ChR2 был хорошо охарактеризован 24,28- 31 и многие варианты были разработаны, чтобы изменить ACTIOн спектр, стробирующие свойства и проницаемость 32,33. Целью нашей работы является установление кохлеарного optogenetics для активации слухового пути. Отметим, что optogenetic подход к стимулируют слуховой нерв требуется генетическую манипуляцию спирального ганглия для выражения channelrhodopsin. Работа с мышами и крысами позволяет использовать доступные трансгенных животных 13,34,35, которые обеспечивают экспрессию channelrhodopsin с небольшой изменчивостью вдоль оси tonotopic и через 36 животных. Сочетание условных аллелей 37 с соответствующими CRE-строк предусматривает выражения клеточно-специфической. Перенос гена в спирального ганглия других животных требует использования вируса, таких как адено-ассоциированный вирус, который является стандартным подходом в optogenetics 38, и что мы показали свою эффективность в мышей 36. Генетические манипуляции и выражение трансгенов, кодирующих чужеродные протеины несут риски для побочных эффектов, таких как IMMUпе ответы и / или распространение, угрозу состояние или даже смерть генетически модифицированных клеток. Для этой демонстрации мы используем трансгенных мышей, экспрессирующих ChR2 в спиральных нейронов ганглиев под Thy-1 промотора 13 оптически стимулировать слуховые пути. Отметим, что другие варианты channelrhodopsin могут быть использованы с той же целью, как мы показали, используя вирус-опосредованной передаче варианта поймать 14 в SGNs 39.
В то время как кохлеарная optogenetics требуется генетические манипуляции, он предлагает молекулярную настройки для оптимизации стимуляции SGN и обещания улучшить частоту и разрешение интенсивности по сравнению с электрической стимуляции. Optogenetic стимуляция слухового пути очень важен для слуха исследования. Например, он обещает успехи в изучении деятельности зависит от уточнения tonotopy в процессе разработки, в анализе потребности в спектральной интеграции в звуковой localizatионов и от степени взаимодействия частотно-специфических афферентных проекций в центральной слуховой системы.
Описанные эксперименты демонстрируют optogenetic стимуляцию SGNs, и может, в принципе, также могут быть использованы, чтобы стимулировать внутреннюю и / или наружных волосковых клеток, при условии, что выражение опсинов. Эти эксперименты требуют большого терпения и заботы. Как упоминалось ран…
The authors have nothing to disclose.
Эта работа была поддержана Федеральным министерством образования и научных исследований (Бернштейн Фокус для нейротехнологиям предоставить 01GQ0810, Т. Мозер, и MED-EL Германия); Немецкий исследовательский фонд через Центр наноразмерных микроскопии и молекулярной физиологии мозга (FZT 103, Т. Мозер) и через SFB889, Н. Strenzke и Т. Мозер).
Urethane | Sigma Aldrich | U2500-100G | Anesthetic |
Xylazine HCl | RXV | Sedative and analgesic | |
Buprenorphine | Reckitt Benckiser | Analgesic | |
Dumont #5 Forceps | Fine Science Tools | 11251-10 | It is used to hold hard tissue, e.g. bone or materials. Never use them to hold soft delicated tissue |
Dumont #5 – Fine Forceps | Fine Science Tools | 11254-20 | Only to be used to hold soft tissue |
Fine Scissors – Sharp | Fine Science Tools | 14060-09 | To open the skin and help with the muscle dissection |
Lempert Rongeurs | Fine Science Tools | 16004-16 | They are very useful to easily remove the bone from the bulla |
473-nm laser | Changchun New Industries | MLL-III473 | 100 mW solid state 473 nm laser |
Laser driver | Changchun New Industries | DPSSL MLL 100 mW | TTL operated laser driver |
250 µm optical fiber | Any comercial ; e.g. Thorlabs | M42L05 | |
Acousto-optical modulator | Crystal Technology, Inc. | PCAOM VIS | Control the amount of light coupled into the fiber from the laser |
Controller for Acousto-optical modulator | Crystal Technology, Inc. | 160T1-8SAR-24-0.8 | Control the acousto-optic modulator |
Solo2 laser power & energy meter | Gentec-EO | Used to measure light intensity of the LED and the fiber coupled laser | |
Blue µLED | Cree | C470UT200 | It is necessary to build several μLED devices because easily get damaged or the isolation is not good enough |
TDT System | Tucker-Davis Technologies | RZ6-A-P1 | It can be used any system for stimulus generation presentation and data acquisition |
Single-shank, 16-channel silicon probe | Neuronexus | a1x16-5mm-100-177-CM16LP | These are fragile devises, must be handled carefully and cleaned after use |
Omnidrill | World Precision Instruments | 503598 | Perform craniotomy for IC recordings and reference screw implantation |
Micro Drill Steel Burrs | any commercial; e.g. Fine Science Tools | 19007-07 | |
Self tapping bone screw | any commercial; e.g. Fine Science Tools | 19010-10 | Reference screw |
Micromanipulator | any commercial; e.g. Luigs+NeumannInVivo Unit Junior 4 axis | Positioning of recording probe |