Nous décrivons un procédé pour la passivation d'une surface de verre en utilisant du polyethylene glycol (PEG). Ce protocole comprend le nettoyage de surfaces, la fonctionnalisation de la surface, et le revêtement de PEG. Nous introduisons une nouvelle stratégie pour traiter la surface avec des molécules de PEG à deux tours, ce qui donne une qualité supérieure de passivation par rapport aux méthodes existantes.
Spectroscopie de fluorescence seule molécule s'est avérée être un rôle déterminant dans la compréhension d'un large éventail de phénomènes biologiques à l'échelle nanométrique. Des exemples importants de ce que cette technique peut donner aux sciences biologiques sont les idées mécanistes sur protéine-protéine et les interactions protéine-acide nucléique. Lorsque les interactions des protéines sont sondés au niveau d'une seule molécule, les protéines ou leurs substrats sont souvent immobilisés sur une surface de verre, ce qui permet une observation de longue durée. Ce système d'immobilisation peut introduire des artefacts de surface indésirables. Par conséquent, il est essentiel pour passiver la surface du verre pour le rendre inerte. Revêtement de surface à l'aide de polyéthylène glycol (PEG) se distingue par sa haute performance en matière de prévention de l'interaction des protéines de manière non spécifique avec une surface de verre. Toutefois, la procédure de revêtement de polymère est difficile, en raison de la complication résultant d'une série de traitements de surface et l'exigence stricte que la surface doitêtre exempt de toutes les molécules fluorescentes à la fin de la procédure. Ici, nous fournissons un protocole robuste avec des instructions étape-par-étape. Il couvre le nettoyage de surface comprenant la gravure piranha, une fonctionnalisation de la surface avec des groupes amine, et enfin revêtement PEG. Pour obtenir une haute densité d'une couche de PEG, nous introduisons une nouvelle stratégie de traitement de la surface avec des molécules de PEG à deux tours, ce qui améliore remarquablement la qualité de passivation. Nous fournissons des résultats représentatifs ainsi que des conseils pratiques pour chaque étape critique de sorte que n'importe qui peut obtenir la qualité de surface passivation élevé.
Lors d'une étude de la protéine seule molécule, il est essentiel de parvenir à une qualité de passivation de surface de sorte que l'expérience est libre de tout dysfonctionnement de la protéine induite en surface ou dénaturation 1,2. Bien que d'une surface de verre traitée avec des agents tensioactifs, tels que l'albumine de sérum bovin, est couramment utilisé pour une seule molécule d'études de l'acide nucléique 3, le degré de sa passivation n'est pas assez élevé pour des études de protéines. Une surface de verre revêtue de polymère (polyethylene glycol, PEG) est supérieure à la 4-6 de la performance de passivation. Ainsi, il est devenu universellement utilisé pour les études de protéines mono-molécule depuis qu'il a été introduit à une étude de la fluorescence de molécules simples 7-10. La procédure de revêtement de polymère nécessite plusieurs traitements de surface 7,11,12. Par conséquent, il est difficile de suivre la procédure entière sans instructions détaillées. Souvent, le degré de passivation de surface varie selon le protocole is suivi. Nous présentons ici un protocole robuste, étape par étape les instructions, ce qui éliminera l'un des principaux goulets d'étranglement d'études de protéines d'une seule molécule. Voir la figure 1 pour une présentation.
Les étapes critiques de ce protocole
Il est essentiel de faire la surface hydrophile avant la réaction amino-silanisation. Ceci a été réalisé grâce à la gravure de piranha qui génère des groupes hydroxyles libres sur une surface de verre / quartz. Il est recommandé de ne pas garder la surface gravée de piranha exposée sur H 2 O ou de l'air pendant une longue période de temps depuis l'hydrophilie de la surface descend progressivement.
Les molécules de PEG NHS-ester sont réactifs. Il est conseillé de faire des aliquotes et stocker sous azote en -20 º C. La durée de conservation du produit chimique APTES à la température ambiante est faible. Il est conseillé de le remplacer par un nouveau chaque mois.
Modifications de ce protocole
Lorsque vous ne pouvez pas utiliser la gravure de piranha pour toute raison pratique, vous pouvez graver à l'aide de KOH pendant une longue période de temps (par exemple, overnight), qui fera également des groupes hydroxyles exposés. L'écueil de cette approche alternative est que la lame devient inutilisable après quelques recyclages en raison de fortes égratignures.
Il est souvent pratiqué pour brûler une surface de verre / quartz à l'aide chalumeau au propane, qui est efficace pour éliminer les matières organiques fluorescentes 7. Cette procédure n'a pas été inclus dans ce protocole car il est redondant de la gravure de piranha. Notez que cette procédure sera potentiellement conduire à une oxydation des groupes hydroxyle. Par conséquent, cette procédure ne devrait pas être effectuée une fois par surface a été gravé en utilisant KOH ou solution piranha.
Quand un tampon avec un pH inférieur à 7 est utilisé pour l'imagerie de molécule unique, la conformation de PEG passe de "champignon" à "brosse", ce qui réduit le degré de passivation. Par conséquent, quand un pH inférieur à 7,0 est utilisé, il est recommandé en outre pour passiver la surface en utilisant le tartrate de disuccinimidyle <sup> 7.
Perspectives
Ce travail a fourni un protocole robuste pour atteindre la surface de haute qualité passivation. Ce protocole sera utile pour les études de fluorescence d'une seule molécule qui sont impliqués dans 14 des protéines ainsi que des complexes de protéines à l'intérieur des extraits cellulaires et les immunoprécipités 15. Il sera largement utilisé pour d'autres techniques d'une seule molécule comme la spectroscopie de force et de spectroscopie de couple 16. Il sera également utile pour la prévention de l'adsorption des cellules sur une surface 17.
Le protocole prévu dans ce travail est exigeant pour ses procédures en plusieurs étapes. passivation de surface en utilisant des lipides-PEG 8 et poly-lysine PEG 9 sont disponibles comme une approche alternative. Depuis, ils ne nécessitent pas de réactions chimiques, il est facile à mettre en œuvre. Cependant, le degré de passivation n'est pas aussi élevée que celle obtenue par l'intermédiaire chimique modification d'une surface.
The authors have nothing to disclose.
DDC, ACH, et CJ ont été soutenus par les subventions de démarrage (ERC-STG-2012-309509) par le Conseil européen de la recherche. J.-MN a été soutenue par la National Research Foundation (NRF) (2011-0018198) de Corée; et le Programme Centre de recherche Pioneer (2012-009586) par la NRF de Corée financé par le ministère de la Science, les TIC, et la planification future (PMD). Ce travail a également été soutenue par le Centre pour la santé BioNano-garde financé par MSIP de Corée que le projet Frontier mondial (H-GUARD_2013-M3A6B2078947). YKL et J.-HH ont été pris en charge par le Programme de bourses de la science Séoul de la ville de Séoul, en Corée. La protéine Rep marqué était un don généreux de M. Sua Myong.
1. Slide preparation and cleaning | |||
Acetone | Sigma | 32201 | 1 L |
Coverslips | VWR | 631-0136 631-0144 631-0147 | 24x32mm2, 22x40mm2, 24x50mm2 (No.1½, Rectangular) |
Diamond drill bits | MTN-Giethoorn, The Netherlands | LA-0564-00DB | 3/4 mm |
Duran slide holder | LGS, The Netherlands | 213170003 | |
Glass staining dishes | Fisher Scientific | 300101 | |
H2O2 | Boom | 6233905 | Opened bottles should be stored at 4 °C. 1 L, hydrogen peroxide 30% |
H2SO4 | Boom | 80900627.9010 | Sulfuric acid 95-98% |
KOH | Sigma | 30603 | Potassium hydroxide |
Methanol | Sigma | 32213 | 1 L |
Sonicator | Branson | Tabletop ultrasonic cleaner, 3510 | |
Quartz slides | Finkenbeiner | 1” x 3”, 1 mm thick | |
2. Coverslip cleaning | |||
Duran slide holder | LGS, The Netherlands | 213170003 | |
KOH | Sigma | 30603 | Potassium hydroxide |
Sonicator | Branson | Tabletop ultrasonic cleaner, 3510 | |
3. Amino-silanization of slides and coverslips | |||
Acetic acid | Sigma | 320099-500ML | Acetic acid, glacial |
APTES | Sigma-Aldrich | 281778-100ML | Store at the room temperature under N2 . Replace once in a month. 3-aminopropyl trimethoxysilane |
Flask (200mL) | VWR | Flask (200 mL) | Have one flask dedicated for aminosilanization. Pyrex flask |
Methanol | Sigma | 32213 | 1 L |
Sonicator | Branson | Tabletop ultrasonic cleaner, 3510 | |
4. Surface passivation using polymer (the first round) | |||
Biotin-mPEG | Laysan Bio | Biotin-PEG-SVA-5000-100mg | Store aliquots of 1-2 mg (enough for 10 slides) at -20 °C under N2. Biotin-PEG-SVA, MW 5,000 Da |
mPEG | Laysan Bio | MPEG-SVA-5000-1g | Store aliquots of 80 mg (enough for 10 slides) at -20 °C under N2. mPEG-succinimidyl valerate (SVA), MW 5,000 Da |
Sodium bicarbonate | Sigma | S6014-500G | |
6. Surface passivation (the second round) | |||
DMSO | Sigma-Aldrich | D8418-100ML | Dimethyl sulfoxide BioReagent, for molecular biology, ≥99.9% |
DST | Pierce | 20589 | Disuccinimidyl tartarate |
MS4-PEG | Pierce | 22341 | Dissolve 100 mg MS4-PEG in 1.1 mL DMSO. Store 20 mL aliquots at -20 °C. Short NHS-ester PEG, MW 333 Da |
Sodium bicarbonate | Sigma | S6014-500G | |
7. Assembling a microfluidic chamber | |||
Double sticky tape | Scotch | 10mm wide | |
Epoxy | Thorlabs | G14250 | Devcon 5 minute epoxy |
NaCl | Sigma-Aldrich | S9888-1 KG | Sodium chloride |
Neutravidin | Pierce | 31000 | Stock in 5 mg/mL in H2O at 4 °C. ImmunoPure NeutrAvidin Biotin-Binding protein |
Streptavidin | Invitrogen | S-888 | Stock 5 mg/mL in H2O or T50 at 4 °C. |
Trizma base | Sigma-Aldrich | T1503-1 KG | Tris |