我们描述了一种新<em>在体内</em>成像技术,夫妻颅内窗户和高分辨率的双光子显微镜的荧光嵌合体小鼠。此成像平台助剂在脑组织和微脉管系统中的动态变化,在单细胞水平后,病理损伤的研究,是适应评估颅内药物输送和分配。
我们已经成功地整合先前建立1-4颅内窗口(ICW)技术与活体双光子共聚焦显微镜,以开发一种新型的平台,允许长期直接可视化组织结构的变化颅内。在单细胞成像分辨率在一个实时的方式提供补充超出标准的终点组织学分析,这看起来仅仅在'快照'的横截面组织提供的动态信息。
荧光嵌合体小鼠中建立这个活体成像技术,我们能够形象四个荧光通道同时进行。通过将荧光标记的细胞,如GFP +骨髓,它可以跟踪研究长期的迁移,在组织内的积分和微分这些细胞的命运。进一步整合的二次mCherry胶质瘤肿瘤细胞系的报道细胞,如,允许字符terization细胞:细胞相互作用。通过加入内活体染料和抗体可以高亮显示组织的微环境中的结构变化,例如CD31标记的抗体和葡聚糖分子。
此外,我们描述了我们的的ICW成像模型相结合,与小动物的微辐射器,提供了立体定向照射,建立一个平台,通过动态组织发生变化,电离辐射的管理,可以评估。
电流的限制,我们的模型中包括的显微镜,它被限制为从副皮质表面深度达900微米,限制成像大脑背侧轴的外显率。颅骨的存在使得ICW一个更具挑战性的技术过程相比,更具规模及动用室模型,目前用于研究乳腺组织和脂肪垫5-7。此外,ICW省新娘许多挑战时,优化成像。
更好地理解的结构和生物学上的变化,在大脑中产生在响应各种病症,治疗干预是改善治疗策略的关键。然而,在研究这些结构和生物学上的变化,特别是关于颅内病理学当前的挑战之一,是无法获得的组织,无法研究体内设置的变化随时间的演化和动态进展。检查软组织肿瘤的发展变化,通过5-7代的“窗口”技术先前已证明是成功的。 ICW模型的发展证明是技术上具有挑战性,由于取出颅骨而不损坏煽动感染相关的脑组织的必要性。以前的论文试图瘦的头骨,以可视化的组织8-10然而,产生高分辨率的清晰IM年龄完全去除颅骨需要11。重复长期成像(30天)最近才成为一个可行的选择,通过成像1,11,以前短的时间框架已经研究5。
在过去的十年中,已经澄清的起源新血管的病理刺激,特别是在肿瘤的形成和发展,提供新的治疗目标的治疗肿瘤的一个主要目标。很大争议仍然围绕新血管在肿瘤的发生发展过程中大脑或以下的辐射来源。传统的血管生成被认为是发生血管生成,从预先存在的血管12发芽的一个过程,其中新血管形成。然而,更近期的研究,表明先前假设的胚胎的血管发生过程中可能会发挥更相当大的作用,在病理性血管形成。 VAsculogenesis涉及招聘的骨髓,然后又直接参与形成新的血管内皮12-14的成人angioblast同行的。越来越多的证据表明,血管内皮前体细胞从骨髓动员到启动新生血管的形成在致癌基因介质15-17。然而,这些研究提供这些骨髓细胞的直接贡献(BMDCs的贡献百分比不同类型的病理刺激和反应的治疗18-21)血管内皮矛盾的证据。
因此,建立可重复的实验高分辨率活体成像的方法,允许长期反复研究的过程中,北京现代舞团融合到肿瘤血管和对治疗的反应是无价的。标准组织学技术无法提供动态信息的MATION需要确定长期存活,分化和整合的细胞产生新生血管,因此不能明确证明细胞相互作用的机制。
我们已经表明,使用我们的实验方法,有不同程度的BMDC招聘两个电离辐射和颅内肿瘤生长,然而,一个招聘,病理学站点特定的,而不是一个入侵的整个颅内组织11,22。我们已经表明,招聘如下时间敏感的图案表明由一个单一的动物11,22重复成像。同样, 在体内成像也可以提供宝贵的见解可以使荧光标记的肿瘤细胞成像和跟踪内重要的血管内皮细胞的CD31抗体突出肿瘤细胞转分化的可能性直接形成自己的内皮进入肿瘤细胞模仿。
<p类=的“jove_content”>模型的通用性增强了图像的4个荧光通道的能力,提供一个详尽的研究不同的细胞和生物过程的组合数。我们能够图像CFP intravitally(蓝色),GFP(绿色),樱桃/ RFP(红色),和Alexa647/APC(远红光),同时在一个单一的领域,随着时间的推移反复。研究人员可以基因修饰细胞表达的频道,以及购买染料和抗体的荧光染料,以反白显示的结构变化,特别感兴趣的。到目前为止,研究中常用的染料和抗体包括CD31和葡聚糖的微脉管系统及其变化的在1,11,23,24组织,虽然利用用于此目的的远红光的信道可用于在其他两个亮点提到的渠道。其它染料包括SYTOX橙色,将突出区域的细胞凋亡的标记,如从公司VISEN的,同样,已被特定cifically设计用于在体内 。进一步的二次谐波产生(SHG)信道的四个常用的荧光所述途径,可以添加和优化,可视化图像模型7的内源性胶原纤维周围血管的基底膜。为了展示我们的模型中的适应性,以及上面提到的细胞 – 细胞相互作用,我们一直在研究药物 – 细胞相互作用。我们看着抑制剂药物,如AMD3100,SDF-1的抑制剂,其作用是在信令网参与在BMDC招聘11。同样,我们遗传工程出脑胶质瘤U87移植瘤细胞表达VEGFTrap,VEGF抑制剂25,通过IRES的GFP分子结合。通过使用RFP + BM,我们能够研究VEGF对招聘的BMDCs血管的作用。最近,我们利用模型来研究药物动力学看着MEC大汉族主义背后的肿瘤划定的药物荧光26日 ,在细胞水平上。通过使用一个定制建房子,我们已经能够,整合立体交付辐射评估治疗的反应,肿瘤和BMDCs的小动物辐照。
通过使用我们的新型活体成像方法研究人员将深入了解单细胞的实时变化中出现的各种病症和系统,帮助澄清了许多功能和生物学特性的组织变化。
到目前为止,所有的图像中描述的三个渠道是可以互换的三个标记的利益在其他车型和叶子的研究人员提供了一个宝贵的工具看许多细胞类型和相互作用。规划要求,以确保所有的标记和细胞类型已经成功地集成了记者的荧光分子在不同的通道。
除了 这里使用的标准的三个通道,我们也能够整合的第四CFP通道(图4A)和胶原蛋白的SHG通道7( 图4B)。延伸看细胞相互作用在体内和另外的可能性允许用户承接人口混合研究特定的细胞与细胞间的相互作用,同时保留其他标记的两个通道。例如,我们已经看了书(RFP)在肿瘤细胞和癌症干细胞(CFP)在1:3的比例比较他们的兴趣intratum口服相互作用(图4A)。我们观察到,坚持7天植入后的混合人口的比例,仍然可以被看作两个细胞群。
CFP通道提供与GFP激发和发射光谱通道,因此重叠的技术问题,由于需要确定真正的CFP那些实际上GFP + +细胞成像后处理。成像后处理,可以进行内置在蔡司LSM软件从而直接对双光子显微镜,在GFP图像中减去从CFP图像的被留下( 图4A)在真正的CFP细胞产生。比减法的前提是依赖于同样明亮的图像的CFP激光(458 nm)的荧光,而GFP激光(488纳米),CFP和GFP的细胞是由于过高荧光CFP细胞。除了CFP,我们也已经能够使用先前公布的设置看SHG水平等描绘的胶原纤维,使周围血管基底膜(图4B)。
另一个适应这种模式已利用一个定制的使用立体定向制导的辐射照射直径为2毫米的小组织部分有能力的小动物辐照。通过照射目标窗口,它是可以看一下对下面的组织的影响辐射。我们最近发表的一项研究,在影响辐射对正常脑组织就招聘的BMDCs血管,专门寻找他们的作用,辐射后的组织变化。我们发现,招聘的BMDCs时间和剂量依赖性的正常组织11。
送货和整合提供药物治疗学研究的机制是可行的被标记有荧光标记物。中我们的研究中,我们已经能够跟踪生产VEGFTrap的,抗血管生成的药物阻断VEGF信号在当地生产25。我们通过基因修饰肿瘤细胞表达IRES EGFP与(4CI图)加上VEGFtrap基因和使用RFP'捐赠'BM是能够形象的EGFP:生产VEGFtrap,的BMDC互动和血管同时(图4Cii)。这表明了模型的通用性和可用信道。这也是可行的药物动力学由于单细胞分辨率的承诺来看看。荧光素(GFP +)是用来划定肿瘤在手术过程中,以确保最大的切除来实现26。通过静脉内注射,而成像,它是可能的,以证明发生的分界不通过活性的荧光素的摄取到肿瘤细胞本身,但的药物,而不是通过收集到的基质区,吨输入法,看到的缺乏共定位10分钟后注射荧光素(图4D)。
总的来说,我们的策略结合新颖的和现有的技术实现了独特的实验平台,这是有利的,在动态细胞相互作用的研究。这一战略已被证明是一个非常宝贵的方法研究高分辨率的单细胞在治疗反应,动态演化的北京现代舞团,肿瘤与正常脑血管颅内。活体成像可以提供更好地理解颅内脑肿瘤血管BMDC招聘,迁移和分化,以及许多其他的动态过程等研究领域适应的分子调节。抑制推定因素调节BMDC组合与其他的治疗策略可以帮助组合疗法的精确定时的识别。此外,这种策略可以适应未来许多公关ojects不仅利用体内活体染色的染料,但也小分子抑制剂和荧光标记的纳米粒子,使研究人员能够追踪的分布和迁移模式更有针对性的疗法,以及纵向看在他们的动力学。
The authors have nothing to disclose.
我们想感谢先进的光学显微镜基金在玛嘉烈医院,尤其是詹姆斯Jonkman得知他们协助渠道上2Photon显微镜的初始设置。笔者想承认辐射响应(STTARR)程序及其附属资助机构的时空定位和扩增。我们感谢彼得痛恶,迈克尔Dr.Iacovos和Dr.Andras的纳吉博士为提供的VEGFTrap质粒和他们的手稿更正和反馈。 BTRC的工作人员继续支持和讨论是非常宝贵的,我们想他的科学输入纪念Dr.Abhijit古哈。工作是由CIHR和美国国立卫生研究院拨款。
Reagent | |||
NODSCID mice | Jackson Lab | 001303 | 8 week old |
B5/EGFP Mice | Jackson Lab | 003516 | |
ACTB/DsRED mice | Jackson Lab | 005441 | |
Tear Gel | Novartis | T296/2 | |
2% Lidocaine-Epinephrine | Bimeda MTC | 25SP | Use neat |
Vetbond | 3M | 1469SB | |
Self curing acrylic kit | Bosworth | 166260 | Use ~30% (w/v) |
10K MW Dextran-Alexa647 | Invitrogen | D22914 | Use @ 0.6 mg/kg in Saline |
CD31-APC | BDPharmingen | 551262 | Use @ 0.3 mg/kg in Saline |
AK-fluor (Fluorescein) 10% | AKORN inc. | NDC 17478-253-10 | Use @ 7.7 mg/kg in Saline |
Betadine solution | Purdue Products | NDC 67618-150 | |
Equipment | |||
Fine Tweezers | VWR | 82027-402 | |
Fine Dissection Scissors | VWR | 25870-002 | |
22G Needle | BD | 305156 | |
27G 0.5 ml TB syringe | BD | 305620 | |
Handheld Micro-Drill | Fine Science Tools | 18000-17 | |
2.7 mm Trephine drillbit | Fine Science Tools | 18004-27 | |
10 μl 30G Hamilton syringe | Sigma Aldrich | 20909-U | |
Glass Coverslip 3 mm | Warner Instruments | 64-0720 CS-3R | |
Fluorescence goggles | BLS | FHS/T01 | Basic head frame |
Stereotaxic frame | stoelting | 51950 | |
Mouse restrainer for IV injection | Brain Tree Lifescience | MTI |