이 절차는 성인 마우스 뇌 미토콘드리아 – 관련 ER의 멤브레인 또는 MAMs 및 MAMs과 mitochondrial 준비에서 glycosphingolipid 강화 microdomain 분수에서 분리하는 방법을 보여줍니다.
세포 세포 소기관은 모양과 셀 별 고유 및 외부 신호를 받게 아르 구성을 변화와 고도의 동적 구조입니다. 그들의 멤브레인은 종종 신호 분자와 막 구성 요소 1,2,3,4의 교환을위한 허브가 정의 연락처 사이트에서 juxtaposed 있습니다. endoplasmic 소포체 (ER)와 + 채널이 미토콘드리아 관련-ER 멤브레인 또는 MAMs 4,5,6로 알려져 있습니다 IP3에 민감한 칼슘 2 개구에서 미토콘드리아 사이에 형성되는 간 organellar 막 microdomains. 단백질 / 지질 조성과 이러한 멤브레인 연락처 사이트의 생화학 특성을 광범위하게 특히 세포 내 칼슘 2 + 4,5,6을 조절에서의 역할과 관련하여 연구되었습니다. ER은 +,이 용량에서 칼슘이 세포의 하류 공정의 무수한을 조절 세포 칼슘 (2)의 기본 저장소 역할을 + 신호, incl포스트 병진 단백질 접힘, 단백질 maturation7을 uding. 미토콘드리아, 다른 한편으로,이를 통해 하류 칼슘 2 + 불균형 4,8의 apoptotic 경로의 개시를 방지 cytosolic 칼슘 2 + 농도를 버퍼링하여 칼슘 2 + 항상성을 유지하고 있습니다. MAMs의 동적 특성은 그들에게 이상적인 사이트는 칼슘 2 + 신호와 mitochondrial 칼슘 2 + 농도, 지질 생합성 및 수송, 에너지 신진 대사와 세포 생존 4,9,10,11,12 규제 등의 기본적인 세포 메커니즘을 해부 할 수 있습니다. 여러 프로토콜은 간 조직 및 배양 세포 13,14에서 이러한 microdomains의 정화에 대한 설명되었습니다.
계정에 이전에 다음 ID로 출판 방법을 복용, 우리는 성인 마우스의 뇌에서 미토콘드리아와 MAMs의 절연을위한 프로토콜을 적응하고 있습니다. 이 절차에 우리는 추가 정화 단계, 즉 트리톤의 X100 추출을 추가하는 전자nables MAMs의 glycosphingolipid 강화 microdomain (GEM) 분수의 고립. 이러한 GEM의 준비가 플라즈마 막 나 다른 세포 세포막에서 유래 caveolae과 지질 보트와 여러 단백질 구성 요소를 공유하고 수용체 단백질의 클러스터링에 대한 포인트를 수집처럼 단백질 단백질 상호 작용 4,15에 대한 작동하도록 제안하고 있습니다.
세포 멤브레인 간 또는 세포 소기관과 세포의 플라즈마 막 사이의 접촉의 사이트는 기본 세포 프로세스에 동적 신호 플랫폼을 나타냅니다. 생리학 및 병리학 조건 모두에 따라 자신의 기능과 구성의 정확한 특성은 안정적이고 재현 정화 프로토콜이 필요합니다. 여기에 설명 된 방법은 특별히 성인 마우스의 뇌에서 MAMs와 해당 보석의 절연 및 정화를 위해 우리 실험실에서 최적화되었습니다. 이 ?…
The authors have nothing to disclose.
우리는 초기 프로토콜을 속에에 레 사노의 공헌을 인정합니다. Ad'A. 유전 및 유전자 치료에 의자를 부자 어린이 (JFC)의 보석상을 보유하고 있습니다. 이 작품은 NIH 보조금 GM60905, DK52025 및 CA021764, 그리고 미국의 레바논 시리아 관련 자선 단체 (ALSAC)에 의해 부분적으로 재정 지원을했습니다.
Name of Reagent/Material | Company | Catalogue Number | Yorumlar |
REAGENTS | |||
Fractionation | |||
Sucrose | Fisher Scientific | S5-500 | |
Sodium Bicarbonate | Sigma-Aldrich | S-5761 | |
Magnesium Chloride, Hexahydrate | Fisher Scientific | BP214-500 | |
Calcium Chloride, Dihydrate | Sigma-Aldrich | C-5080 | |
MAM | |||
D-Mannitol | Sigma-Aldrich | M9546-250G | |
Hepes | Fisher Scientific | BP310-500 | |
EGTA | Sigma-Aldrich | E4378-250G | |
BSA, Fraction V, Heat Shock, Lyophilizate | Roche | 03-116-964-001 | |
Percoll | GE | 17-0891-02 | |
GEM | |||
Triton X-100 | Sigma-Aldrich | T9284-500 ml | |
Sodium Chloride | Fisher Scientific | S271-3 | |
Tris Base | Roche | 03-118-142-001 | |
HCl | Fisher Scientific | A144S-500 | |
EDTA | Fisher Scientific | BP120-500 | |
Sodium Dodecyl Sulfate (SDS) | Fisher Scientific | BP166-500 | |
Common | |||
Protease Inhibitors Tablets, Complete EDTA-free | Roche | 11-873-580-001 | |
EQUIPMENT | |||
2 ml Douce All-Glass Tissue Grinders | Kimble Chase | 885300-0002 | |
15 ml Polypropylene Conical Centrifuge Tubes, BD Falcon | BD | 352097 | |
30 ml Round-Bottom Glass Centrifuge Tubes | Kimble Chase | 45500-30 | |
15 ml Round-Bottom Glass Centrifuge Tubes | Kimble Chase | 45500-15 | |
Ultracentrifuge tubes, Ultra-Clear, Thinwall, 14×89 mm | Beckman-Coulter | 344059 | |
Parafilm | Cole-Parmer | PM996 | |
Disposable Borosilicate Glass Pasteur Pipets, 9″ | Fisher Scientific | 13-678-20C |