Este método novo permite a gravação simultânea intracelular de um motoneurônio único adulto rato e a medição da força produzida por suas fibras musculares. A investigação combinado das propriedades eléctricas e mecânicas das unidades motoras em animais normais e geneticamente modificadas é um avanço para o estudo do sistema neuromuscular.
O motoneurônio espinhal tem sido um sistema modelo bom para estudar a função neural, porque é um neurónio do sistema nervoso central, com as propriedades únicas de (1) tendo alvos prontamente identificáveis (fibras musculares) e, portanto, tem uma função bem conhecido (para controlar a contracção muscular), (2) ser o alvo convergente de muitas redes e descendente da coluna vertebral, daí o nome de "via comum final", e (3), com uma soma grande que faz com que seja possível a penetração los com afiadas eletrodos intracelulares . Além disso, quando estudados in vivo, é possível gravar, simultaneamente, a actividade eléctrica dos motoneurónios e da força desenvolvida pelo músculo seus alvos. Realizando gravações intracelulares de motoneurónios in vivo, por conseguinte, colocar o experimentalista, na posição única de ser capaz de estudar, ao mesmo tempo, todos os compartimentos da "unidade motora" (o nome dado à motoneurónio, do seu axónio, eas fibras musculares que inerva 1): Os insumos que incidem sobre o motoneurônio, as propriedades eletrofisiológicas do motoneurônio, eo impacto destas propriedades em função fisiológica dos neurônios motores, ou seja, a força produzida por seu motor. No entanto, esta abordagem é muito difícil, porque a preparação não pode ser paralisado e, assim, a estabilidade mecânica para a gravação intracelular é reduzida. Assim, este tipo de experiências só foi alcançado em gatos e em ratos. No entanto, o estudo dos sistemas motores espinais poderia fazer um salto formidável se que era possível realizar experiências semelhantes em ratinhos normais e geneticamente modificados.
Por razões técnicas, o estudo das redes espinhal em ratos, principalmente se limitado a neonatal em preparações in vitro, onde os neurônios motores e as redes espinhal são imaturos, os neurônios motores são separados de suas metas, e quando estudado em fatias, o MOtoneurons são separadas a maior parte das suas entradas. Até recentemente, apenas alguns grupos conseguiram realizar gravações intracelulares de motoneurônios in vivo 2-4, incluindo a nossa equipe, que publicou uma nova preparação que nos permitiu obter gravações muito estáveis de motoneurônios in vivo em camundongos adultos 5,6. No entanto, estas gravações foram obtidos em animais paralisados, isto é, sem a possibilidade de gravar a saída força destes neurónios motores. Aqui apresentamos uma extensão da preparação original em que fomos capazes de obter gravações simultâneas das propriedades eletrofisiológicas das motoneurônios e da força desenvolvida por seu motor. Esta é uma conquista importante, pois nos permite identificar os diferentes tipos de neurônios motores com base no seu perfil de força, e revelando assim a sua função. Juntamente com modelos genéticos perturbar circuito segmentar vertebral 7-9, ou reproduzindo doen humanaSE 10,11, esperamos que esta técnica para ser uma ferramenta essencial para o estudo do sistema motor espinhal.
A preparação descrita aqui é o primeiro que permite, no rato adulto, a gravação simultânea intracelular de um motoneurônio lombar e a medição da força produzida pelas fibras musculares inervadas por seu axónio.
Devido ao pequeno tamanho do animal, as técnicas cirúrgicas necessárias para esta preparação pode ser um desafio para adquirir. No entanto, uma vez que essas capacidades são dominados, a cirurgia inteira pode ser realizada em três horas, e os animais podem sobreviver…
The authors have nothing to disclose.
Este trabalho foi possível graças ao apoio financeiro da Fondation pour la Recherche Médicale (FRM), o Milton bolsa de pós-doutorado Safenowitz para a pesquisa de ALS (ALS Association), Grants NIH NINDS NS05462 e NS034382, e Grant ANR HyperMND.
Name of the reagent | Company | Catalogue number | Comments (optional) |
Atropine sulfate | Aguettant | ||
Methylprenidsolone | Pfizer | Solu-Medrol | |
Sodium pentobarbitone | Sanofi-Aventis | Pentobarbital | |
Ketamine | |||
Xylazine | |||
Glucose | |||
Plasma expander | Roger Bellon | Plasmagel | |
Blunt scissors | FST | 14079-10 | |
Blunt fine scissors | FST | 15025-10 | |
Vannas Spring Scissors | FST | 15002-08 | |
Fine forceps serrated | FST | 11370-32 | |
Fine forceps serrated | FST | 11370-31 | |
Cunningham Spinal Adaptor | Stoelting Co. | ||
Kwik-Cast sealant | WPI | #KWIK-CAST | |
Ventilator | CWE Inc | SAR-830/AP | |
Capnograph | CWE Inc | μcapstar | |
Heating blanket | Harvard Apparatus | 507221F | |
Intracellular amplifier | Axon Instruments | Axoclamp 2B | |
Pipette puller | Sutter Instruments | P-97 | |
KCl | Sigma-Aldrich | P9333-500G |