Pronostico di HIV-1 Uso corecettore (tropismo) mediante analisi della sequenza utilizzando un approccio genotipica

Il protocollo è riassunto in fig. 4. 1. Raccolta di campioni di sangue Raccogliere almeno 3 ml di sangue in EDTA al sito clinico. I campioni possono essere conservati fino ad una settimana a 4 ° C. Inviare i campioni di sangue EDTA quanto prima al laboratorio per posta ordinaria. 2. Isolamento di HIV RNA e / o DNA Ottenere l'RNA virale e / o DNA a partire da 1000 microlitri di sangue intero, siero o plasma, utilizzando il MagNA Pure isolamento degli acidi nucleici Compact I kit di Io e il MagNA Pure System Compact. Eluire l'acquisita RNA o DNA in 50 microlitri tampone TE. In alternativa, altri procedimenti di purificazione di acidi nucleici possono essere utilizzati. 3. Amplificazione della regione env Amplificare la regione env (figg. 2 e 4) sia da RNA o DNA provirale plasma. A-1245 bp lungo prodotto, comprendente la maggior parte della proteina Env (nt 6556-7811 according di HXB2) viene generato. I campioni di RNA: RT-PCR di reazione RNA virale presenta una struttura molto complessa secondaria (Fig. 4) che possono ostacolare la reazione RT. Per evitare questo problema, incubare RNA 10 pl a 65 ° C per 10 minuti (già nel tubo PCR e nella macchina PCR) e quindi ridurre la temperatura a 50 ° C. Aggiungere 40 ml di PCR Master Mix compreso il primer Env-F e Env-R. Master Mix per RT-PCR In-House-System: Volume / reazione (pl) concentrazione finale RNasi-free H 2 O 14,4 Buffer 5x (Qiagen OneStep RT-PCR Kit) 10 1x 5x Q-Solution 10 1x dNTP Mix (10 mM ciascuno) <td> 2 400 uM di ciascun dNTP Enzym-Mix (Qiagen OneStep RT-PCR Kit) 2 Primer Env-F (100 pM) 0,3 0,6 micron Primer Env-R (100 pM) 0,3 0,6 micron RNase Inhibitor (RNasin) 1 5 unità / reazione Env-F: 5'-CAAAGCCTAAAGCCATGTGTAAA -3 '(nt 6556 → 6586 secondo HXB2) Env-R: 5'-AGTGCTTCCTGCTGCTCCTAAGAACCC -3 '(nt 7785 ← 7811) Eseguire la reazione di RT a 50 ° C per 30 minuti. Eseguire la prima PCR come segue: 95 ° C, 15 min 1 x 95 ° C, 30 sec 50 ° C, 30 sec 72 ° C, 2 min </td> 1 x 95 ° C, 30 sec 56 ° C, 30 sec 72 ° C, 2 min 38 x 72 ° C, 10 min 4 ° C ∞ I campioni di DNA: reazione PCR Per i campioni di DNA provirale, nessuna reazione RT è necessaria, e la reazione di PCR può avviare direttamente. Aggiungere 40 ml di PCR Master Mix a 10 microlitri di DNA provial. Master Mix per PCR In-House-System: Volume / reazione (pl) concentrazione finale RNasi-free H 2 O 15,4 Buffer 5x (DNA Polymerase HotStarTaq) 10 1x 5x Q-Solution 10 1x dNTP Mix (10 mM ciascuno) 2 400 uM di ciascun dNTP Enzym-Mix (DNA polimerasi HotStarTaq) 2 Primer Env-F (100 pM) 0,3 0,6 micron Primer Env-R (100 pM) 0,3 0,6 micron Env-F: 5'-CAAAGCCTAAAGCCATGTGTAAA -3 '(nt 6556 → 6586) Env-R: 5'-AGTGCTTCCTGCTGCTCCTAAGAACCC -3 '(nt 7785 ← 7811) Eseguire le condizioni di PCR come descritto in precedenza per i campioni di RNA (Punto 3.1.4). 4. Amplificazione della regione V3: nested PCR Per la nested PCR, utilizzare 5 microlitri dalla prima reazione di PCR (senza precedente analisi in gel di agarosio) come modello e aggiungere 95 ml di Mas PCRter Mix. Master Mix per Nested-PCR In-House Volume / reazione (pl) concentrazione finale H 2 O 61,9 10x PCR Buffer 10 1x 5x Q-Solution 20 1x dNTP Mix (10 mM ciascuno) 2 200 mM di ciascun dNTP Primer Env-2F (100 mM) 0,3 0,6 micron Primer Env-2R (100 mM) 0,3 0,6 micron HotStarTaq DNA polimerasi 0,5 2,5 unità / reazione Env-2F: 5'-GTCCAAAGGTATCCTTTGAGCCAATTC -3 '(nt 6838 → 6864) <strong> Env-2R: 5'-CACCACTCTTCTCTTTGCCTTGGTGGGTGC -3 '(nt 7712 ← 7742) Eseguire la PCR come segue: 93 ° C, 15 min 1 x 95 ° C, 30 sec 50 ° C, 30 sec 72 ° C, 90 sec 1 x 95 ° C, 30 sec 56 ° C, 30 sec 72 ° C, 90 sec 43 x 72 ° C, 10 min 4 ° C ∞ Analizzare il prodotto di PCR su un gel di agarosio 1% (Fig. 4). Il prodotto atteso è 902 bp di lunghezza. Purificazione dei campioni di sequenziamento. Purificare il prodotto di PCR con il kit di purificazione PCR-Qiagen, utilizzando il protocollo, soluzioni e micro-colonne fornite dal fornitore. Eluire in 30-100 microlitri di buffer PE, dell'intensità banda. In alternativa, i campioni possono essere purificato utilizzando esonucleasiI e veloce AP (Thermo fosfatasi alcalina). A tale scopo, aggiungere 6 microlitri Exo-AP prodotto Mix a 15 microlitri PCR e incubare 15 minuti a 37 ° C. 580 microlitri H 2 O 66 microlitri AP veloce 13,4 microlitri I Exo 5. Reazione Sequenza dell'amplicone V3 La reazione sequenza consiste in una reazione di PCR utilizzando una sola delle seguenti primers: Env-2: 5'-GTACAATGYACACATGGAATTAGGC -3 (nt 6959 → 6980) Env-5: 5'-AAAATTCCCCTCCACAATTA – 3 '(nt 7352 ← 7371) Env-6: 5'-GGCCAGTAGTATCAACTCAAC – 3 '(nt 6979 → 7000) Env-7: 5'-TGTCCACTGATGGGAGGGGC – 3 '(nt 7530 ← 7549) Env-10: 5 '- GCAGAATAAAACAAATTATAAACATGTGGC – 3' (nt 7478 ← 7507) Env-11: 5 '- TACATTGCTTTTCCTACTTTCTGCCAC – 3' (nt 7638 ← 7664) Primer di prima scelta sono: Env-2, 6 o Env-Env-7, Env-11 Utilizzare 1 microlitri dal amplicone V3 purificato come modello e aggiungere 9 ml di PCR master-mix. Sequencing Master Mix: 4 MIX sequenza microlitri (HIV-Genotipizzazione Kit) 4 microlitri H 2 O Primer 1 pl (100 pmol / pl) Eseguire la reazione di sequenza nel modo seguente: 96 ° C, 10 sec 50 ° C, 10 sec 36 x 60 ° C, 45 sec 4 ° C ∞ 6. Purificazione dei campioni di sequenziamento Purify sequenze USIng Sephadex G-50 superfine. Riempire il numero appropriato di pozzi nel "caricatore colonna" con Sephadex G-50 superfine. Trasferire il Sephadex al MAHVN4510 piastra filtro girando. Aggiungere 300 microlitri Milli-Q H 2 O in ciascun pozzetto nella piastra filtro, e incubare per almeno 3 ore a 2-8 ° C. Centrifugare le piastre per 5 min a 910Xg e 4-15 ° C. Gettare il flow-through. Aggiungere 10 ml H 2 O al prodotto sequenza e quindi la sequenza pipetta sulla piastra gonfiò Sephadex. Per ottenere il prodotto purificato, centrifugare la piastra per 5 min. a 910Xg e 4-15 ° C e raccogliere il flusso passante. 7. Sequenziamento dei campioni purificati sul sequencer ABI Prism 3130 XL Prima di ciascuna serie, modificare il buffer e verificare la quantità del polimero (POP7). Se necessario, sostituire il vecchio pallone polimero con uno nuovo. Utilizzare le condizioni di esecuzione salvate, tra cui un tempo di iniezione di 18 secondi. In questa macchina, la raccolta dei dati di segnale di un'esecuzione con 16 campioni di sequenza dura circa 60 min (36 cm capillare) o 150 min (50 cm capillare). 8. Sequenza di montaggio Utilizzare il programma Lasergene (DNA-Star) per allineare e modificare le sequenze (Fig. 5). Altri programmi di modifica di sequenza possono essere utilizzati. Utilizzare un "V3-Consensus B" e la sequenza consenso env come riferimenti. Lasergene crea una sequenza consenso del campione analizzato utilizzando tutti i dati grezzi disponibili e memorizzarli come file FASTA. Il file FASTA è un file di testo che include un header con il nome del campione e la sequenza nucleotidica. 9. Sequencing interpretazione dei dati e la previsione tropismo Sequenziamento interpretazione dei dati viene eseguita dal sistema web-based interpretazione geno2pheno [corecettore] ( http://coreceptor.bioinf.mpi-inf.mpg.de/index.php). Per la previsione tropismo, FPR diverse impostazioni possono essere selezionate. L'impostazione predefinita è secondo i tedesco-austriaco linee guida di terapia. Per FPR ≥ 20%, il virus è classificato come R5 quando FPR ≥ 20% e X4 per FPR <12,5%. Carica il file FASTA nel server. Questo server traduce la sequenza nucleotidica in aminoacidi, allinea con il consenso sequenza V3-B e produce una classificazione sottotipo. Inoltre, si genera una previsione dell'utilizzo corecettore (Fig. 4) espresso come tasso di falsi positivi (FPR). 10. Risultati rappresentativi Il geno2pheno [corecettore] uscita mostra una interpretazione graduale del tropismo. A seconda della probabilità di utilizzo corecettore, il testo e il colore di sfondo interpretazione varia da verde (FPR <20%), suggerendo una somministrazione sicura per MVC, al giallo, suggerendo un possibile, basso rischio ed infine al rosso. Rosso è il colore suggerisconozione non prescrivere MVC. Inoltre, il server genera un report pdf che può essere stampato, compilato con paziente e dati di esempio, e inviati al medico. Esempi di geno2pheno uscita [corecettore] sono rappresentate in fig. 6. Figura. 1. La replicazione del virus HIV schematica. Il virione deve legarsi ai recettori cellulari come CD4 e sia al CCR5 o CXCR4 come co-recettore. Il co-recettore CCR5 può essere bloccato con antagonisti CCR5 come il Maraviroc (MVC, Celsentri, Selzentry). Dopo la fusione delle membrane virali e cellulari, il nucleocapside virale viene rilasciato nel citoplasma. Nucleocapside smonta e il complesso RNA virale è liberata nel citoplasma. La trascrittasi inversa virale (RT) trascrive l'RNA genomico in DNA provirale, che viene poi trasportato nel nucleo e integrato nel genoma dell'ospite dal HIV integrasi. Cellular RNA polimerasi tradinscribe genomico virale e RNA messaggeri dal genoma provirale. Le proteine ​​virali sono prodotte nel citoplasma e trasportati alla superficie cellulare. La gemma virus particelle immature, non infettive virioni dalle cellule. La proteasi dell'HIV scinde le proteine ​​produttrici di particelle infettive. Inibizione di una delle fasi porta ad una interruzione del ciclo di replicazione. I farmaci antiretrovirali e la fase di replica che inibiscono sono contrassegnati in rosso. Le RNA virale e DNA provirale (materiale utilizzato per l'analisi del tropismo o resistenza) sono contrassegnati in verde. Figura 2. Genoma dell'HIV provirale. La particella dell'HIV è costruito con diverse proteine ​​strutturali e case di vari enzimi e proteine ​​sia di origine virale e cellulare. La figura mostras la posizione dei geni nel genoma virale. La superficie proteine ​​gp120 e gp41 costituiscono picchi sulla superficie del virione e contattare la cellula umana per effettuare la fusione della membrana. Nella parte inferiore della figura, i prodotti di amplificazione PCR e primer utilizzati nel nostro protocollo sono mostrati. Figura 3. Percentuale di pazienti con bassa carica virale (VL) misure analizzate per farmaco-resistenza o la determinazione tropismo presso l'Istituto di Virologia, Università di Colonia (Germania). Figura 4. Schema generale della sperimentazione .. Si prega di cliccare qui per vedere una versione più grande di questa figura. Figura 5. Sequenza di montaggio con Lasergene. L'amplicone V3 è sequenziato con almeno un avanti e un innesco inverso. Lasergene alignés i ". Abi" i file ottenuti dal sequencer con la sequenza di riferimento "V3-Consensus B" e env. Lasergene crea una sequenza consenso utilizzando tutti i dati di riga disponibili. Le sequenze di riferimento può essere marcato (e vengono quindi visualizzate in grigio) in modo che non contribuiscono alla sequenza consensus campione. Figura 6. Rapporti di previsione tropismo generati dal geno2pheno [corecettore] Servizi tool.The vengono generati in formato pdf che possono essere salvati e completato nel computer. Altri dati quali nome paziente ci, la data di estrazione del sangue, ecc, può essere inclusa manualmente utilizzando un programma pdf scrittore. Osservazioni specifiche possono essere aggiunte. Thesdati elettronici sono esclusivamente sul computer dell'utente e non sul ​​server geno2pheno [corecettore]. Si prega di cliccare qui per vedere una versione più grande di questa figura.