在这篇文章中,我们描述了一个简单的方法从大鼠原代神经元的文化和随后的转录组学分析使用ARNA扩增单细胞的收获。这种方法推广到任何类型的细胞。
许多基因表达分析技术,依赖于从组织匀浆或细胞培养细胞的异质种群隔离材料 。1,2,3大脑的情况下,如海马区包含一个复杂的安排不同类型的细胞,每个不同的mRNA的概况。收获的单细胞的能力,可以在进入细胞群之间和国家内部的分子差异的深入调查。我们描述了一个简单,快速的方法收获细胞作进一步处理。中电经常使用的移液器利用隔离(使用共同愿望)的利益的一个单元格,并方便地存入一个Eppendorf管中,它与任意数量的分子生物学技术的进一步处理。我们的协议可以被修改为树突细胞培养或急性片甚至单个细胞的收获。
我们还描述了作为一个主要的下游应用单细胞隔离ARNA扩增法。这种方法是开发以前,我们的实验室作为替代其他基因的表达分析技术,如逆转录或实时聚合酶链反应(PCR)。4,5,6,7,8这种技术提供的线性放大聚腺苷酸化的RNA开始只有毫微微克的物质,并造成微克的反义RNA。线性放大的材料,提供了一个比PCR分离细胞转录的组成部分的相对丰度指数扩增更准确的估计。基本程序包括两轮扩增。简单地说,一个T7 RNA聚合酶启动子网站纳入双链从mRNA转录的cDNA。一夜之间在体外转录(IVT),反应,然后执行其中T7 RNA聚合酶产生许多从双双链cDNA反义转录。第二轮重复这一过程,但自起始原料,一些技术上的差异,是反义RNA。它是标准的重复第二轮,三轮扩增。通常情况下,第三轮在体外转录反应是用生物素标记的核苷三磷酸,使反义RNA可以杂交和检测到一个芯片上。 7,8
注意事项和故障排除
分子生物学技术的一般技巧
ARNA程序的一般纲要
图4A说明ARNA程序的第一轮。在第一链反应的T7以oligo(dT)引物聚- T的部分选择绑定的多聚腺苷酸尾巴mRNA的物种(长的白色矩形)。一些小分子RNA是聚腺苷酸化和将捕获此过程。然而,更重要的是,在细胞中最丰富的RNA,核糖体RNA,不会。这寡核苷酸逆转录引物的行为,使用的mRNA为模板合成的基因的互补链(长的灰色矩形)。 T7的T7以oligo(dT)引物部分采用T7 RNA聚合酶启动子,开始mRNA的反义序列帧。这是用于在体外转录反应。
接下来,在前面的步骤中创建的mRNA / DNA杂交的mRNA部分是由核糖核酸酶制造的RNA“引物”(白色的小矩形)冈崎片段,在滞后链DNA的合成中创建类似H水解。 DNA聚合酶I总理DNA合成的DNA互补的mRNA作为模板使用的RNA片段。当它到达下一个RNA片段,其5'到3'核酸酶活性,消除了核苷酸和替换脱氧核糖核酸。 DNA连接酶添加到结扎任何股的龙头股的更换是不完整的的。 T4 DNA聚合酶是填加所在地区的RNA片段作为最初的引物为我创造的DNA聚合酶担任双重之前执行IVT的反应,然后将其纯化的双链cDNA钝端。
在IVT反应,T7 RNA聚合酶结合并入的双重链cDNA合成的反义RNA分子的正义链为模板(长的黑色矩形)的T7启动子。这可作为扩增步骤中,数以千计的反义RNA分子是从每一个双链cDNA的分子(图4A)生产。
与逆转录反应以来的起始RNA的第一轮稍有不同,如图4B所示,第二轮开始反义(固体黑色矩形),缺乏聚腺苷酸化尾,由T7 -寡核苷酸的目标(dT)引物,在第一轮。因此,这种反应是引物与随机引物(小的灰色矩形)和核糖核酸(RNA)随后变性。第二链反应的T7以oligo(dT)引物,这在前面的逆转录反应创造了义RNA的3'端结合聚一个序列,然后催芽。另一个IVT反应是在第一轮以同样的方式进行。第二轮通常至少重复一次,实现了从一个单细胞的三轮放大。
应用
可以转化为大量的应用,我们已经在本文介绍的技术。单细胞分离协议可以修改用于急性切片14虽然在技术上更具挑战性,同样的原则适用于在这个交替的准备。此外,如果吸管的大小略有调整,细胞生理学的录音可以收获前允许的生理输出背后的分子机制以及控制调查。另一个稍微修改是从细胞胞体分离的过程。对于这个应用程序 15个,收集细胞机构之一吸管,然后返回与一个新鲜的吸管,收集100-300确定dendritES或轴突每收集管16。
一旦细胞已被收割,mRNA的丰度和化学成分的比较可以之间的不同,即使在相同的细胞群。纳入第三轮ARNA生物素化的双绞线,允许芯片的分析,以确定这些相对表达丰度。原mRNA的人口的构成也可以ARNA使用下一代测序的过程后才能确定。放大ARNA也可以用来确定细胞表型转化研究,在其中一种细胞类型的mRNA的全套是转成不同的细胞类型,以促使前者,后者的细胞类型的表型的转变, TIPeR已知的实验室开发的一个过程 [17]这些研究为研究疾病状态和细胞表型等研究特别有用,目前在实验室进行。可以进行RT – PCR或定量PCR扩增材料,以确认细胞特异性基因的表达。此外,转染或转导效率的评价,可在单细胞水平上。
优点和局限性
抽象表示,隔离消除了单细胞分析分析异质细胞群的平均作用。这些平均影响歪曲过较丰富的成绩单和平均和预防许多低丰度的转录检测单个细胞内mRNA的丰度。流式细胞仪可用于单个细胞进行排序,但这种方法需要了解细胞的特异性标志物和昂贵的设备 。18激光捕获显微切割使用紫外线或红外线激光捕获显微切割系统,使单细胞甚至亚细胞捕获,但需要利益的细胞坐落在非常薄的部分表面。19类似的流式细胞仪,激光捕获显微切割也需要昂贵的设备。
上文所述的电极收集技术的主要好处之一是,宝贵的电生理数据,可从细胞收获前的兴趣,允许在同一细胞进行功能和转录分析20的缺点是我们的技术它需要使用micromanipulators的经验。熟悉调查与micromanipulators会发现这个技术非常直观的,然而,没有这样的经验,个人需要成为舒适与所需的精细动作。
在任何扩增技术所固有的某些成绩单优惠放大,根据大小和核苷酸组成。4,6,7聚合酶链反应(PCR)为基础的技术,如逆转录聚合酶链反应(RT – PCR检测)和cDNA快速扩增结束(赛)的结果成绩单指数扩增,而ARNA放大线性放大过程的结果。因此,ARNA程序的主要优点之一在于在其能力,更好地维护只能由线性放大反对成倍放大,在放大过程中发生的任何错误或偏见的相对丰度的mRNA转录错误和偏见。
ARNA过程,再加上微阵列分析,可以比较相似或不同的形态,处理或未经处理的单细胞之间的mRNA的丰度。此外,扩增材料可以提交给下一代测序5,8然而,护理应在这样的分析以来,相反的程序使用的随机引物,寡DT催芽过程描述上述偏见的放大3'端的mRNA和一般结果在随后扩增每轮材料略有缩短。应谨慎分析芯片的结果与标准方法,为一些虚假的缺席的电话,可能会出现从略有缩短放大材料。此外,同时测序结果的确会提供完整的5'最原始的mRNA序列,可能会错过一些基因的5'序列。基于这些原因,轮扩增的数量应该是有限的。
The authors have nothing to disclose.
谢谢凯文Miyashiro特丽Schochet博士,电镀和维护细胞培养,细胞培养提供本文档中所包含的图片。此外,谢谢凯文Miyashiro,彼得巴克利博士,Tiina Pertiz ARNA程序的输入。这项工作的经费是由国家老龄问题研究所,国立精神卫生和人力资源实际上从宾夕法尼亚州联邦查找资金。
Material Name | Tip | Company | Catalogue Number | Comment |
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Spiegelgas coverslips | Carolina Biological | 63-3029 | ||
Nunc 35×10 mm culture dishes | Fisher | 12-565-90 | ||
Water for cell culture | Lonza | 17-724Q | For making solutions used for cell culture and rinsing coverslips | |
Poly-D-Lysine MW70-150K | Sigma | 6407 | ||
Laminin, ultrapure | BD Bioscience | 354239 | ||
Boric acid | Sigma | B0252 | ||
MEM with Earle’s salts and glutamax | Invitrogen | 41090-101 | For plating cells | |
D-glucose | Sigma | G8769 | ||
Penicillin-streptomycin | Invitrogen | 15140-122 | ||
Horse serum | Invitrogen | 16050 | ||
Cytosine beta-D-arabinofuranoside | Sigma | C1768 | ||
MEM with Earle’s salts and L-glutamine | Invitrogen | 11095-098 | For growing cells | |
Sodium pyruvate | Sigma | P2256 | ||
B27 serum-free supplement | Invitrogen | 17504-044 | ||
Borosilicate glass capillary tubes (1.5mm O.D, 100mm length) | Kimble Chase | 34500 99 | Any borosilicate glass pipette will work as long as the proper bore size is attained. | |
HBSS | Invitrogen | 14175 | Any solution will work as long as the components won’t interfere with any future processing (i.e. no Ca2+ or Mg2+) | |
1ml syringe | BD | 309628 | ||
Needle | BD | Gauge depends on the diameter of the pipettes | ||
dNTP mix | Amersham | 28-4065-51 | ||
dt-T7 oligo | Custom | Midland Certified | ||
Second strand buffer (5x) | Invitrogen | Y01129 | ||
DTT | Supplied with second strand buffer | |||
E.coli DNA Ligase | Invitrogen | 100002324 | ||
DNA polymerase I | Invitrogen | 100004926 | ||
Rnase H | Invitrogen | 18021-071 | ||
Megascript T7 kit | Ambion | AM1334 | ||
Random primers | BMB | 11034731001 | ||
Superscript III Reverse Transcriptase | Invitrogen | 56575 | in kit (18080-044) comes with first strand buffer (Y02321) and DTT | |
MEGAclear Kit | Ambion | 1908 | ||
MinElute Reaction Cleanup Kit | Qiagen | 28206 | ||
T4 DNA polymerase | Invitrogen | 100004994 | ||
Rnasin | Promega | N251B | ||
Illumina TotalPrep RNA Amplification Kit | Ambion | AMIL1791 | ||
Flaming/Brown micropipette puller | Sutter Instruments | P-87 | Sutter has many other models, many are discussed in the cookbook | |
Micromanipulator | Olympus | Many other micromanipulators will work such as the newer Eppendorf models | ||
Pipette Holder | Warner Instruments | MP-S15A | Will vary with micromanipulator and pipette O.D. | |
Bioanalyzer RNA 6000 Nano Kit | Agilent | 5067-1511 |