Dieletroforese (DEP) é um método eficaz para manipular células. Placas de circuito impresso (PCB) pode fornecer eletrodos de baixo custo, reutilizáveis e eficaz para o contato livre de manipulação de células dentro de dispositivos microfluídicos. Ao combinar PDMS baseado canais microfluídicos com lamelas em PCBs, demonstramos a manipulação de contas e celular e separação dentro multicanal dispositivos microfluídicos.
Dispositivos microfluídicos têm avançado estudos de células, fornecendo um ambiente dinâmico fluídica na escala da célula para estudar, manipulação, classificação e contagem de células. No entanto, a manipulação da célula dentro do domínio fluídico continua sendo um desafio e requer protocolos de fabricação complicadas para as válvulas e eletrodos formando, ou exige equipamentos especiais, como pinças ópticas. Aqui, demonstramos que convencional placas de circuito impresso (PCB) pode ser usado para a manipulação sem contato de células, empregando dieletroforese (DEP) para manipulação de contas e de células em áreas de fluxo laminar para bioactuation, e para celular e talão de separação em microfluídicos multicanal dispositivos. Primeiro, apresentamos o protocolo para a montagem dos eletrodos DEP e dispositivos microfluídicos, e preparar as células para o DEP. Então, nós caracterizam a operação DEP com esferas de poliestireno. Por fim, mostramos resultados representativos de separação de contas e celular em um dispositivo de múltiplos canais microfluídicos. Em resumo, a DEP é um método eficaz para a manipulação de partículas (grânulos ou células) dentro de dispositivos microfluídicos.
Manipulação de células em dispositivos microfluídicos é desejável para a ordenação ou colocação seletiva de células individuais ou para estudos populacionais. 2 O fluxo laminar é usado em conjunto com válvulas e bombas para manipular células dentro de dispositivos microfluídicos. No entanto, estes métodos só são desafiadoras e requerem processos de fabricação detalhado e habilidades 3 Centrifugação pode simplificar as exigências para a colocação simultânea de imagens de células, mas é um desafio;. Além disso, a arquitetura de canal para a centrifugação deve ser cuidadosamente considerar ao projetar as manipulações desejadas e considerando efeitos de forças centrípetas. quatro pinças Laser pode ser usado para a colocação de celular, mas o método é caro e não passíveis de high-throughput separação de células. 5 No entanto, DEP tem sido demonstrada como um sistema eficaz de "pinça elétrica" para a colocação de células eficaz, caracterização e manipulação 6,7.
Especificamente, a DEP tem sido usado para capturar e classificar seletivamente células para on-chip de processamento de viver e de células mortas, 7-10 e para coleta de células em sensores de ressonância para a medição da massa celular. 11 Nós já demonstraram que, aumentando o DEP vigor em bactérias ou contas acima da força de arrasto fluídica, a concentração on-chip e aprisionamento de esferas de poliestireno e Listeria monocytogenes V7 pode ser realizado. 12 populações mistas de E. coli e L. monocytogenes bactérias também pode ser dirigida e liberado através de pulsos DEP. Além disso, as partículas maiores podem ser diferencialmente capturada e concentrada nos eletrodos com base no tamanho de partículas grandes, enquanto que partículas menores não são de captura, mas são removidos com o fluxo de fluidos 13. Quando as forças DEP não superar as forças fluídicas arrastando as partículas, o talão ou célula não é capturado, mas mudou-se dentro do fluxo de fluidos. Conforme mostrado na Figura 2C, contas pode ser focada na região central do fluxo de líquido suficiente para manter as contas no canal central. Isto pode ser devido ao efeito combinado de partícula para partícula influências dentro do campo elétrico, fluido velocidades superiores a DEP forças arrastando, a combinação destes, ou algum outro efeito indefinido.
Avanços mais recentes em contato DEP permitem maximizar a captura e manipulação de células com o campo mínimo exigido, protegendo assim os tipos de células, na maior medida, durante a manipulação do DEP. 1,9 Contactless DEP promessa oferece à comunidade microfluídica para classificação, coleta e posicionamento de células dentro de dispositivos microfluídicos. Nós antecipamos que, com o aumento da procura e implementação de, DEP para a manipulação dentro de dispositivos microfluídicos, novas descobertas e inovações irá expandir a compreensão e influência de forças DEP.
PCBs podem ser fabricados por meio de alto volume de processos a um preço acessível com um rápido tempo de resposta de fabricação, tornando-as plataformas de bom para comercialização. Além disso, os PCBs são fáceis de usar e acessível para os cientistas em uma série de disciplinas para manipulações on-chip celular e classificação.
Ao projetar o layout do PCB eletrodos, deve-se considerar para a desejada trajetória de partículas / células. Principais fatores a considerar incluem tamanho de partícula e tipo (cordão e / ou celular), tipo de célula, o tamanho de microcanais, velocidade de fluxo, espaçamento entre os eletrodos (que determina a intensidade do campo elétrico), espessura da lamela, ea condutividade do fluido. Esses fatores influenciam a força necessária e disponível para manipular a partícula ou célula, e, finalmente, a eficiência da separação. Nosso protocolo aqui apresentado demonstra uma configuração eficaz para iniciar DEP para micro e separação de células. Para aplicações potenciais, os usuários devem coincidir com a arquitetura do projeto do canal microfluídicos com os caminhos de fluxo desejado para as células e contas, bem como os padrões de eletrodo para otimizar a eficiência para cada aplicação. Espaçamento entre os eletrodos e espessura lamínula pode ser usado de acordo com as diretrizes anteriormente relatados ao projetar o layout de canais microfluídicos 1.
A condutividade e permissividade da célula / partícula e da mídia em torno deve ser diferente o suficiente para facilitar DEP positiva ou negativa, mantendo as células intactas. A polaridade do DEP para uma partícula esférica pode ser determinada a partir da parte real de um valor complexo do fator de Clausius-Mosotti seguinte no ω freqüência de tensão DEP.
Equação 1
Neste ε equação, é a permissividade, σ é a condutividade, e ε * é a permissividade complexa. Os índices p e mdenotam a partícula e mídia, respectivamente. Quando uma célula tem uma maior permissividade do que a mídia, ou a parte real do fator de Clausius-Mosotti torna-se positiva, a partícula se torna mais polarizada do que a mídia ao redor. Devido a um campo não-uniforme, a polarização da partícula se torna não-uniforme e isso cria uma DEP positiva (+ DEP) a força que atrai a célula para a região com maior intensidade de campo elétrico. Se uma célula tem uma menor permissividade do que a mídia em torno, ou a parte real do fator de Clausius-Mosotti torna-se negativo, ele será submetido a DEP negativo (-DEP), ea célula é forçado para a região de campo mínima. Se a célula e mídia têm aproximadamente a mesma permissividade complexa, nenhuma força pode ser gerada para manipular a célula. Por esta razão, a água pura é uma mídia preferida para a manipulação de partículas DEP. No entanto, para evitar o estresse osmótico sobre a célula de água pura, media baixa condutividade foi formulado para manter inalterada a condutividade, mas para aumentar a osmolaridade para diminuir o estresse osmótico para as células. Mídia celular convencional cultura ou buffers fisiológicas, tais como DMEM ou PBS, tem alta condutividade, o que não é adequado para a manipulação DEP.
Nós também já demonstraram que as células podem ser capturados em sensores com DEP usando meios de baixa condutividade. Após um breve período para adesão celular, a mídia de baixa condutividade pode ser substituído para o meio de cultura de células necessárias para suportar o crescimento de células para dia 11.
Pela nossa experiência, partículas fluorescentes são muito brilhantes no que diz respeito à fluorescência de células vivas, portanto, pode ser um desafio para coincidir com a intensidade do grânulo com a intensidade de uma célula viva e fluorescentes. Para melhorar a visualização de ambas as células e as contas, nós usamos a microscopia DIC em um microscópio vertical para geração de imagens de ambos. Para exibir as células e os grânulos, apresentamos os dados em uma escala de intensidade de brilho de imagem, que mantém os dados em um vasto leque de cores para facilitar a visualização. Assim, ao projetar o estudo de interesse, os parâmetros de imagem e recursos devem ser considerados.
Em resumo, demonstramos a capacidade de atuar seletivamente grânulos e células em canais separados usando DEP. Com o utilitário crescente de canais microfluídicos para biologia celular, bioquímica e aplicações de bioengenharia, DEP é uma opção desejável para a coleta de células, de colocação e classificação. O PCB fabricação de eletrodos é barato e conveniente, os eletrodos são fáceis de usar, e os tempos de fabricação rápida são ideais para a implementação da DEP.
The authors have nothing to disclose.
Expressamos agradecimento a Woo-Jin Chang para fornecer os canais trifurcating para DEP atuação e Mitchell Collens por sua ajuda na configuração do equipamento. O trabalho tem sido apoiado pelos EUA através da NSF Grant OISE-0951647 e por Taiwan NSC através Grant 99-2911-1-002-007.
Material Name | Tip | Company | Catalogue Number | Comment |
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Sylgard 184 kit (PDMS) | Elsworth Adhesives | 184 SIL ELAST KIT 0.5KG | Dow Corning Sylgard | |
16 awg hook-up wire | Belden | 8521 | (Type MW) Mil-W-76C-PVC | |
Gold seal Cover Glass | Ted Pella | 260320 | No. 0 thick, 24 x 60 mm | |
Miltex Biopsy Punch | VWR Scientific | 95039-104 | Miltex, assorted sizes | |
Custom PCB electrodes | Bay Area Circuits | Custom parts | ||
Mineral oil | Fisher Scientific | O121-1 | ||
Deionized water | House DI water supply | None | Use filtered DI water | |
D-Glucose Anhydrous Granular AR | Mallinckrodt Chemicals | 4912-06 | ||
Sucrose, Crystal | Mallinckrodt Chemicals | 8360-06 | ||
Fluorescent polymer microspheres | Bangs Laboratories | FS07F/9277 | 15μm Dragon green microspheres | |
HT-29 cell line | ATCC | HTB-38D | Human colon adenocarcinoma | |
Typsin 0.05% EDTA | Invitrogen | 25300054 | ||
Eclipse E600FN upright microscope | Nikon | Eclipse E600FN | ||
Phantom V310 High-speed imaging camera | Phantom | V310 | ||
BX51 upright research microscope | Olympus | BX51 | ||
SpotFlex high resolution color camera | Diagnostic Instruments | FX1520 | ||
Function generator | Agilent | 3325A | ||
RF Power amplifier | EIN | 2100L |