כאן אנו מציגים פרוטוקול להשתלת תאים ברזולוציה מרחבית וזמנית גבוהה בעוברים ובזחלים של דגי זברה בכל שלב בין יום אחד לשבעה ימים לפחות לאחר ההפריה.
התפתחות והתחדשות מתרחשות בתהליך של אינטראקציות תאיות מרחביות-זמניות דינמיות מקודדות גנטית. השימוש בהשתלת תאים בין בעלי חיים כדי לעקוב אחר גורל התא ולגרום לאי-התאמות בתכונות הגנטיות, המרחביות או הטמפורליות של תאי התורם והמאכסן הוא אמצעי רב עוצמה לבחון את טבען של אינטראקציות אלה. אורגניזמים כמו אפרוחים ודו-חיים תרמו תרומה מכרעת להבנתנו את ההתפתחות וההתחדשות, בהתאמה, במידה רבה בגלל יכולתם להשתלה. כוחם של מודלים אלה, עם זאת, הוגבל על ידי גמישות גנטית נמוכה. כמו כן, לאורגניזמי המודל הגנטי העיקריים יש יכולת נמוכה יותר להשתלה.
דג הזברה הוא מודל גנטי מרכזי להתפתחות והתחדשות, ובעוד שהשתלת תאים נפוצה בדגי זברה, היא מוגבלת בדרך כלל להעברת תאים לא ממוינים בשלבי ההתפתחות המוקדמים של הבלסטולה והגסטרולה. במאמר זה אנו מציגים שיטה פשוטה וחזקה המרחיבה את חלון ההשתלה של דגי זברה לכל שלב עוברי או זחל בין יום אחד לשבעה ימים לפחות לאחר ההפריה. הדיוק של גישה זו מאפשר השתלה של תא אחד בלבד ברזולוציה מרחבית וזמנית כמעט מושלמת הן בבעלי חיים תורמים והן במארחים. בעוד אנו מדגישים כאן את השתלת נוירונים עובריים וזחלים לחקר התפתחות עצבית והתחדשות, בהתאמה, גישה זו ישימה למגוון רחב של סוגי תאים אבותיים ומובחנים ושאלות מחקר.
להשתלת תאים יש היסטוריה ארוכה ורבת קומות כטכניקה בסיסית בביולוגיה התפתחותית. בסביבות תחילת המאהה-20, גישות המשתמשות במניפולציות פיזיות כדי להפריע לתהליך ההתפתחותי, כולל השתלות, הפכו את האמבריולוגיה ממדע תצפיתי למדע ניסיוני 1,2. בניסוי פורץ דרך אחד, הנס ספמן והילדה מנגולד השתילו באופן אקטופי את שפת הבלסטופור הגבי של עובר סלמנדרה בצד הנגדי של עובר פונדקאי, וגרמו לרקמה הסמוכה ליצור ציר גוף משני3. ניסוי זה הראה כי תאים יכולים לגרום לתאים אחרים לאמץ גורלות מסוימים, וכתוצאה מכך, ההשתלה התפתחה כשיטה רבת עוצמה לחקר שאלות קריטיות בביולוגיה התפתחותית לגבי כשירות וקביעת גורל התא, שושלת תאים, יכולת השראתית, פלסטיות ועוצמת תאי גזע 1,4,5.
התפתחויות מדעיות עדכניות יותר הרחיבו את כוחה של גישת ההשתלה. בשנת 1969, תגליתה של ניקול לה דוארין כי צביעת גרעין יכולה להבחין בין מינים של מוצא בכימרות שליו וגוזלים אפשרה מעקב אחר תאים מושתלים וצאצאיהם6. רעיון זה הועצם מאוחר יותר על ידי הופעתם של סמנים פלואורסצנטיים טרנסגניים וטכניקות הדמיה מתקדמות5, והוא מונף כדי לעקוב אחר גורל התא 6,7, לזהות תאי גזע ואת עוצמתם 8,9, ולעקוב אחר תנועות תאים במהלך התפתחות המוח10. בנוסף, עליית הגנטיקה המולקולרית אפשרה השתלות בין מארחים ותורמים של גנוטיפים שונים, ותמכה בדיסקציה מדויקת של פונקציות אוטונומיות ולא אוטונומיות של גורמים התפתחותיים11.
השתלות תרמו גם תרומות חשובות לחקר ההתחדשות, במיוחד באורגניזמים בעלי יכולות התחדשות חזקות כגון פלנרים ואקסולוטלים, על ידי הבהרת הזהויות התאיות והאינטראקציות המווסתות את הצמיחה והדפוס של רקמות מתחדשות. מחקרי השתלות גילו עקרונות של עוצמה12, תבניות מרחביות 13,14, תרומות של רקמות ספציפיות 15,16, ותפקידים לזיכרון תאי 12,17 בהתחדשות.
דגי זברה הם מודל חולייתי מוביל לחקר התפתחות והתחדשות, כולל במערכת העצבים, בשל התוכניות הגנטיות השמורות שלהם, יכולת גנטית גבוהה, הפריה חיצונית, גודל מצמד גדול ובהירות אופטית 18,19,20. דגי זברה גם נוחים מאוד להשתלה בשלבים התפתחותיים מוקדמים. הגישה הבולטת ביותר היא השתלת תאים מעובר תורם מסומן לעובר פונדקאי בשלב הבלסטולה או הגסטרולה ליצירת חיות פסיפס. תאים שהושתלו בשלב הבלסטולה יתפזרו ויתפזרו עם תחילת האפיבולי, וייצרו פסיפס של תאים ורקמות מסומנים על פני העובר21. השתלות גסטרולה מאפשרות מיקוד מסוים של תאים מושתלים על פי מפת גורל גסה כאשר המגן נוצר וניתן לקבוע את צירי A-P ו- D-V21. הפסיפסים שנוצרו היו בעלי ערך בקביעה אם גנים פועלים באופן אוטונומי של התא, בבדיקת מחויבות התא ובמיפוי תנועת רקמות ונדידת תאים במהלך ההתפתחות 5,11. דגי זברה פסיפס יכולים להיווצר במספר דרכים, כולל אלקטרופורציה22, רקומבינציה23, טרנסגנזה F024 ומוטגנזה25, אך השתלה מספקת את המניפולציה והדיוק הגדולים ביותר במרחב, בזמן ובמספר וסוגי התאים. המצב הנוכחי של השתלת דגי זברה מוגבל במידה רבה לתאי אב בשלבים מוקדמים, עם כמה יוצאים מן הכלל, כולל השתלת נוירונים מוטוריים בעמוד השדרה26,27, תאי גנגליון רשתית28,29, ותאי פסגה עצבית ב-10-30 השעות הראשונות לאחר ההפריה (HPF)30, ושל תאים המטופויטיים וגידוליים בדגי זברה בוגרים 5,31. הרחבת שיטות ההשתלה לטווח רחב של גילאים, שלבי התמיינות וסוגי תאים תשפר מאוד את כוחה של גישה זו לספק תובנות לגבי תהליכים התפתחותיים ומתחדשים.
כאן, אנו מדגימים טכניקה גמישה וחזקה להשתלת תאים ברזולוציה גבוהה יעילה בעוברים וזחלים של דגי זברה עד לפחות 7 ימים לאחר ההפריה. ניתן להשתמש בדגים פונדקאים ותורמים טרנסגניים המבטאים חלבונים פלואורסצנטיים ברקמות המטרה כדי לחלץ תאים בודדים ולהשתיל אותם ברזולוציה מרחבית וזמנית כמעט מושלמת. הבהירות האופטית של עוברים וזחלים של דגי זברה מאפשרת לצלם את התאים המושתלים בשידור חי בזמן שהחיה המארחת מתפתחת או מתחדשת. גישה זו שימשה בעבר כדי לבחון כיצד דינמיקת איתות מרחבית-זמנית משפיעה על הזהות העצבית ועל הנחיית האקסון בעובר32, ולבחון את ההיגיון שבאמצעותו גורמים פנימיים וחיצוניים מקדמים הנחיית אקסונים במהלך התחדשות בדגי זחל33. בעוד אנו מתמקדים כאן בהשתלת נוירונים ממוינים, השיטה שלנו ישימה באופן נרחב הן לסוגי תאים לא ממוינים והן לסוגי תאים ממוינים על פני שלבים ורקמות רבים כדי לענות על שאלות בהתפתחות והתחדשות.
ביולוגיה התפתחותית ורגנרטיבית מסתמכת כבר למעלה ממאה שנה על ניסויי השתלות כדי לבחון עקרונות של איתות תאי וקביעת גורל התא. מודל דג הזברה כבר מייצג מיזוג רב עוצמה של גישות גנטיות והשתלות. השתלה בשלבי בלסטולה וגסטרולה ליצירת חיות פסיפס היא נפוצה אך מוגבלת באילו סוגי שאלות ה…
The authors have nothing to disclose.
אנו מודים לססיליה מואנס על הכשרתה בהשתלת דגי זברה; מארק טיי לטיפול מעולה בדגים; ואמה קרלסון על משוב על כתב היד. עבודה זו נתמכה על ידי NS121595 המענקים של ה-NIH ל-A.J.I.
10 mL "reservoir syringe" | Fisher Scientific | 14-955-459 | |
150 mL disposable vacuum filter, .2 µm, PES | Corning | 431153 | |
20 x 12 mm heating block | Corning | 480122 | |
3-way stopcock | Braun Medical Inc. | 455991 | |
3 x 1 Frosted glass slide | VWR | 48312-004 | |
40x water dipping objective | Nikon | MRD07420 | |
Calcium chloride dihydrate | Sigma-Aldrich | C3306 | |
Coarse Manipulator | Narishige | MN-4 | |
Custom microsyringe pump | University of Oregon | N/A | Manufactured by University of Oregon machine shop (tsa.uoregon@gmail.com). A commercially available alternative is listed below. |
Dumont #5 Forceps | Fine Science Tools | 1129500 | |
Eclipse FN1 "Transplant Microscope" | Nikon | N/A | |
electrode handle | World Precision Instruments | 5444 | |
Feather Sterile Surgical Blade, #11 | VWR | 21899-530 | |
Fine micromanipulator, Three-axis Oil hydraulic | Narishige | MMO-203 | |
HEPES pH 7.2 | Sigma-Aldrich | H3375-100G | |
High Precision #3 Style Scalpel Handle | Fisher Scientific | 12-000-163 | |
Kimble Disposable Borosilicate Pasteur Pipette, Wide Tip, 5.75 in | DWK Life Sciences | 63A53WT | |
KIMBLE Chromatography Adapter | DWK Life Sciences | 420408-0000 | |
Kimwipes | Kimberly-Clark Professional | 34120 | |
Light Mineral Oil | Sigma-Aldrich | M3516-1L | |
LSE digital dry bath heater, 1 block, 120 V | Corning | 6875SB | |
Manual microsyringe pump | World Precision Instruments | MMP | Commercial alternative to custom microsyringe pump |
Microelectrode Holder | World Precision Instruments | MPH310 | |
MicroFil Pipette Filler | World Precision Instruments | MF28G67-5 | |
Nail Polish | Electron MIcroscopy Sciences | 72180 | |
Nuclease-free water | VWR | 82007-334 | |
P-97 Flaming/Brown Type Micropipette Puller | Sutter Instruments | P-97 | |
Penicillin-streptomycin | Sigma-Aldrich | p4458-100ML | 5,000 units penicillin and 5 mg streptomycin/mL |
pipette pump 10 mL | Bel-Art | 37898-0000 | |
Potassium chloride | Sigma-Aldrich | P3911 | |
Professional Super Glue | Loctite | LOC1365882 | |
Round-Bottom Polystyrene Test Tubes | Falcon | 352054 | |
Sodium chloride | Sigma-Aldrich | S9888 | |
Stage micrometer | Meiji Techno America | MA285 | |
Syringes without Needle, 50 mL | BD Medical | 309635 | |
Tricaine Methanosulfonate | Syndel USA | SYNCMGAUS03 | |
Trilene XL smooth casting Fishing line | Berkley | XLFS6-15 | |
Tubing, polyethylene No. 205 | BD Medical | 427445 | |
UltraPure Low Melting Point Agarose | Invitrogen | 16520050 | |
Wiretrol II calibrated micropipettes | Drummond | 50002010 |
.