Summary

Gebruik makend van thermische verschuivingstest om substraatbinding aan selenoproteïne O te sonden

Published: August 09, 2024
doi:

Summary

Hier presenteren we de thermische verschuivingstest, een op fluorescentie gebaseerde techniek met hoge doorvoer die wordt gebruikt om de binding van kleine moleculen aan interessante eiwitten te onderzoeken.

Abstract

Het definiëren van het biologische belang van eiwitten met onbekende functies vormt een belangrijk obstakel bij het begrijpen van cellulaire processen. Hoewel bio-informatica en structurele voorspellingen hebben bijgedragen aan de studie van onbekende eiwitten, worden in vitro experimentele validaties vaak belemmerd door de optimale omstandigheden en cofactoren die nodig zijn voor biochemische activiteit. Cofactorbinding is niet alleen essentieel voor de activiteit van sommige enzymen, maar kan ook de thermische stabiliteit van het eiwit verbeteren. Een praktische toepassing van dit fenomeen ligt in het gebruik van de verandering in thermische stabiliteit, zoals gemeten door veranderingen in de smelttemperatuur van het eiwit, om ligandbinding te onderzoeken.

Thermische verschuivingstest (TSA) kan worden gebruikt om de binding van verschillende liganden aan het eiwit van belang te analyseren of om een stabiliserende toestand te vinden om experimenten uit te voeren, zoals röntgenkristallografie. Hier zullen we een protocol voor TSA beschrijven met behulp van het pseudokinase, Selenoproteïne O (SelO), voor een eenvoudige en high-throughput methode voor het testen van metaal- en nucleotidebinding. In tegenstelling tot canonieke kinasen bindt SelO ATP in een omgekeerde oriëntatie om de overdracht van AMP naar de hydroxylzijketens van eiwitten te katalyseren in een posttranslationele modificatie die bekend staat als eiwit-AMPylering. Door gebruik te maken van de verschuiving in de smelttemperaturen, bieden we cruciale inzichten in de moleculaire interacties die ten grondslag liggen aan de SelO-functie.

Introduction

Een groot deel van het menselijke proteoom blijft slecht gekarakteriseerd. Het door Dunham en Kustatscher et al. beschreven “straatlantaarneffect” verwijst naar het fenomeen waarbij uitgebreid onderzochte eiwitten meer aandacht krijgen, waardoor onderbelichte eiwitten over het hoofd worden gezien 1,2. Factoren die bijdragen aan dit effect zijn onder meer het biologische belang en de relevantie voor de ziekte van bepaalde eiwitten. Bovendien stimuleert eerder onderzoek dat fundamentele kennis biedt, evenals de beschikbaarheid van instrumenten voor functionele analyse, het onderzoek naar hoogbestudeerde eiwitten verder 1,2. Projecten zoals het Understudy Proteins Initiative, het Structural Genomics Consortium en het Enzyme Function Initiative hebben tot doel onderbestudeerde eiwitten te karakteriseren met behulp van structurele en functionele proteomics 2,3,4. Een aanvullende benadering voor het identificeren van de moleculaire functies van onderbelichte eiwitten is het onderzoeken van de interacties van deze eiwitten met kleine moleculen om waardevolle inzichten te verkrijgen in de regulatie en substraatspecificiteit.

De binding van kleine moleculen kan de thermische stabiliteit van een eiwit verhogen5. Dit fenomeen, bekend als ligand-geïnduceerde conformatiestabilisatie, resulteert vaak in een verhoging van de smelttemperatuur van een eiwit, wat een meetbare indicatie geeft van ligandbinding6. De thermische stabiliteit van een eiwit kan worden gemeten met behulp van Differential Scanning Fluorimetry (DSF), ook bekend als Thermofluor, of Thermal Shift Assay (TSA)7,8,9,10. Bij TSA wordt een eiwitmonster blootgesteld aan stijgende temperaturen in aanwezigheid van een milieugevoelige kleurstof6. Terwijl het eiwit zich ontvouwt en denatureert, bindt de kleurstof zich aan de blootgestelde hydrofobe gebieden van het eiwit en zendt fluorescentie uit. Extrinsieke fluorescerende kleurstoffen, of milieugevoelige kleurstoffen, missen intrinsieke fluorescentie en fluoresceren in plaats daarvan bij interactie met hun doelmolecuul 9,11,12. De meest gebruikte kleurstof, SYPRO Orange, biedt verschillende voordelen zoals verbeterde stabiliteit en minimale achtergrondfluorescentie 8,9,12. SYPRO Orange is met name compatibel met Real-Time Polymerase Chain Reaction (RT-PCR)-systemen, gezien de excitatie- en emissiegolflengten rond respectievelijk 470 nm en 570 nm. Deze unieke functie maakt nauwkeurige en gevoelige metingen met een hoge doorvoer mogelijk die compatibel zijn met fluorescentiedetectiesystemen die vaak worden gebruikt in RT-PCR-systemen8.

TSA is een veelzijdig hulpmiddel voor het onderzoeken van eiwitinteracties met potentiële cofactoren of geneesmiddelen en voor het identificeren van stabiliserende omstandigheden voor kristallografie. Enkele van de voordelen ten opzichte van andere zeefmethoden zijn de relatieve eenvoud van installatie en de hoge doorvoer met platen met 96 of 384 putjes 13,14,15. De ontwikkeling van deze techniek is transformerend geweest voor studies naar het ontdekken van geneesmiddelen, biedt gemak en maakt de studie van diverse additieven zoals ionen, liganden en geneesmiddelen mogelijk 6,16. Bovendien heeft het aanpassingsvermogen van TSA wetenschappers aangemoedigd om het nut ervan uit te breiden, waardoor het meten van bindingsaffiniteiten naast de screeningstests17,18 wordt vergemakkelijkt. TSA is een effectief hulpmiddel in structurele biologiestudies om omstandigheden te identificeren die de stabilisatie van het eiwit dat van belang is voor kristallisatie bevorderen19. De flexibiliteit en het relatieve gemak hebben TSA dus gepositioneerd als een hoeksteentechniek bij het karakteriseren van eiwitten. Hier zullen we TSA gebruiken om de binding van metalen en nucleotide aan het onderbestudeerde pseudokinase, Selenoproteïne O (SelO), als voorbeeld te analyseren.

Kinasen zijn een van de meest gerichte eiwitfamilies bij de ontdekking van geneesmiddelen20. Er wordt voorspeld dat ongeveer 10% van de menselijke kinasen inactief is en pseudokinasen wordt genoemd omdat ze belangrijke katalytische residuen missen die nodig zijn voor katalyse21,22. Selenoproteïne O (SelO) is een evolutionair geconserveerd pseudokinase dat het geconserveerde aspartaat mist in het katalytische HRD-motief23. In eukaryoten lokaliseert SelO zich in de mitochondriën en beschermt het cellen tegen oxidatieve stress 24,25. Structurele en biochemische analyses tonen aan dat SelO adenosinemonofosfaat (AMP) overbrengt van ATP naar eiwitsubstraten in een posttranslationele modificatie die bekend staat als AMPylatie25. Recente studies geven aan dat enzymen die AMPylatie katalyseren, alternatieve nucleotiden zoals UTP in vitro kunnen binden 26,27. Studies hebben met name aangetoond dat de SelO-homoloog van Salmonella typhimurium eiwit-UMPylatie, of de overdracht van UMP, op een mangaanafhankelijke manier katalyseert28. Gezien deze intrigerende waarnemingen testen we de binding van SelO aan ATP en UTP in aanwezigheid van magnesium en mangaan, en dienen we als een representatief voorbeeld van de toepassingen van TSA. Het volgende protocol kan gemakkelijk worden aangepast om de interacties van andere eiwitten en interessante additieven te optimaliseren en te onderzoeken.

Protocol

1. Experimentele opzet Gebruik een thermische cycler die fluorescentie kan detecteren, zoals een RT-PCR-instrument, om het beschreven protocol uit te voeren. Als u SYPRO Orange gebruikt, zoals beschreven in dit protocol, gebruik dan een scanmodus die excitatie rond 470 nm en emissiedetectie rond 570 nm mogelijk maakt. Programmeer de thermocycler om het monster gedurende 2 minuten op 20 °C te houden, gevolgd door een temperatuurverhoging van 0,5 °C/1 minuut to…

Representative Results

Eukaryotisch SelO bestaat uit een N-terminale mitochondriale targetingsequentie, een kinase-achtig domein en een sterk geconserveerd selenocysteïne aan de C-terminus van het eiwit23. Dit mitochondriaal-residente enzym codeert voor een pseudokinasedomein dat geconserveerd is van bacteriën tot mensen23. Structurele analyse van de SelO-homoloog van Pseudomonas syringae onthulde aminozuurveranderingen in de actieve plaats die de bind…

Discussion

De Thermal Shift Assay (TSA) dient als een efficiënte methode voor het screenen van eiwit-ligandinteracties, inclusief die met cofactoren en remmers. In dit protocol gebruikten we TSA om de binding van het pseudokinase SelO aan nucleotiden en tweewaardige kationen te meten. Onze bevindingen tonen aan dat SelO een verhoogde thermische stabiliteit vertoont in aanwezigheid van ATP en Mg2+/Mn2+. Deze observatie komt overeen met eerdere rapporten die aangeven dat SelO-h…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

A.S. is een W.W. Caruth, Jr. Scholar in Biomedical Research, Cancer Prevention and Research Institute of Texas (CPRIT) Scholar, en Charles en Jane Pak Center for Mineral Metabolism and Clinical Research Faculty Scholar. Dit werk werd ondersteund door NIH Grant K01DK123194 (A.S.), CPRIT Grant RR190106 (A.S.), Welch (I-2046-20200401) en Welch (I-2046-20230405).

Materials

Adenosine 5′-triphosphate disodium salt hydrate Sigma Aldrich A2383-10G used for representative results but not required to perfom TSA
Avanti J-15R with microplate carrier assembly Beckman Coulter C19416
CFX Opus 384 Real-time PCR system Bio-Rad 12011452
Hard-Shell 384-Well PCR Plates, thin wall, skirted, clear/white Bio-Rad HSP3805
Magnesium Chloride Sigma Aldrich M8266-100G used for representative results but not required to perfom TSA
Manganese (II) chloride tetrahydrate Sigma Aldrich M3634-500G used for representative results but not required to perfom TSA
Microseal 'B' PCR Plate Sealing Film, adhesive, optical Bio-Rad MSB1001
SYPRO Orange Protein Gel stain Sigma Aldrich S5692-500UL
Uridine 5′-triphosphate trisodium salt hydrate Sigma Aldrich U6625-100MG used for representative results but not required to perfom TSA

References

  1. Dunham, I. Human genes: Time to follow the roads less traveled. PLoS Biol. 16 (9), e3000034 (2018).
  2. Kustatscher, G., et al. An open invitation to the understudied proteins initiative. Nat Biotechnol. 40 (6), 815-817 (2022).
  3. Jones, M. M., et al. The structural genomics consortium: A knowledge platform for drug discovery: A summary. Rand Health Q. 4 (3), 19 (2014).
  4. Oberg, N., Zallot, R., Gerlt, J. A. Efi-est, efi-gnt, and efi-cgfp: Enzyme function initiative (efi) web resource for genomic enzymology tools. J Mol Biol. 435 (14), 168018 (2023).
  5. Pace, C. N., Mcgrath, T. Substrate stabilization of lysozyme to thermal and guanidine hydrochloride denaturation. J Biol Chem. 255 (9), 3862-3865 (1980).
  6. Pantoliano, M. W., et al. High-density miniaturized thermal shift assays as a general strategy for drug discovery. J Biomol Screen. 6 (6), 429-440 (2001).
  7. Huynh, K., Partch, C. L. Analysis of protein stability and ligand interactions by thermal shift assay. Curr Protoc Protein Sci. 79, 21-29 (2015).
  8. Niesen, F. H., Berglund, H., Vedadi, M. The use of differential scanning fluorimetry to detect ligand interactions that promote protein stability. Nat Protoc. 2 (9), 2212-2221 (2007).
  9. Wu, T., et al. Conformationally responsive dyes enable protein-adaptive differential scanning fluorimetry. bioRxiv. , (2023).
  10. Wu, T., et al. Protocol for performing and optimizing differential scanning fluorimetry experiments. STAR Protoc. 4 (4), 102688 (2023).
  11. Gao, K., Oerlemans, R., Groves, M. R. Theory and applications of differential scanning fluorimetry in early-stage drug discovery. Biophys Rev. 12 (1), 85-104 (2020).
  12. Hawe, A., Sutter, M., Jiskoot, W. Extrinsic fluorescent dyes as tools for protein characterization. Pharm Res. 25 (7), 1487-1499 (2008).
  13. Lucet, I. S., Murphy, J. M. Characterization of ligand binding to pseudokinases using a thermal shift assay. Methods Mol Biol. 1636, 91-104 (2017).
  14. Murphy, J. M., et al. A robust methodology to subclassify pseudokinases based on their nucleotide-binding properties. Biochem J. 457 (2), 323-334 (2014).
  15. Senisterra, G., Chau, I., Vedadi, M. Thermal denaturation assays in chemical biology. Assay Drug Dev Technol. 10 (2), 128-136 (2012).
  16. Lo, M. C., et al. Evaluation of fluorescence-based thermal shift assays for hit identification in drug discovery. Anal Biochem. 332 (1), 153-159 (2004).
  17. Bai, N., Roder, H., Dickson, A., Karanicolas, J. Isothermal analysis of thermofluor data can readily provide quantitative binding affinities. Sci Rep. 9 (1), 2650 (2019).
  18. Vivoli, M., Novak, H. R., Littlechild, J. A., Harmer, N. J. Determination of protein-ligand interactions using differential scanning fluorimetry. J Vis Exp. (91), 51809 (2014).
  19. Vedadi, M., et al. Chemical screening methods to identify ligands that promote protein stability, protein crystallization, and structure determination. Proc Natl Acad Sci U S A. 103 (43), 15835-15840 (2006).
  20. Taujale, R., et al. Informatic challenges and advances in illuminating the druggable proteome. Drug Discov Today. 29 (3), 103894 (2024).
  21. Bailey, F. P., Byrne, D. P., Mcskimming, D., Kannan, N., Eyers, P. A. Going for broke: Targeting the human cancer pseudokinome. Biochem J. 465 (2), 195-211 (2015).
  22. Kung, J. E., Jura, N. Prospects for pharmacological targeting of pseudokinases. Nat Rev Drug Discov. 18 (7), 501-526 (2019).
  23. Dudkiewicz, M., Szczepinska, T., Grynberg, M., Pawlowski, K. A novel protein kinase-like domain in a selenoprotein, widespread in the tree of life. PLoS One. 7 (2), e32138 (2012).
  24. Han, S. J., Lee, B. C., Yim, S. H., Gladyshev, V. N., Lee, S. R. Characterization of mammalian selenoprotein o: A redox-active mitochondrial protein. PLoS One. 9 (4), e95518 (2014).
  25. Sreelatha, A., et al. Protein ampylation by an evolutionarily conserved pseudokinase. Cell. 175 (3), 809-821.e19 (2018).
  26. Frese, M., et al. The alarmone diadenosine tetraphosphate as a cosubstrate for protein ampylation. Angew Chem Int Ed Engl. 62 (8), e202213279 (2023).
  27. Mostert, D., et al. Pronucleotide probes reveal a diverging specificity for ampylation vs umpylation of human and bacterial nucleotide transferases. Biochemistry. 63 (5), 651-659 (2024).
  28. Yang, Y., et al. The ydiu domain modulates bacterial stress signaling through Mn2+-dependent umpylation. Cell Rep. 32 (12), 108161 (2020).
  29. Mukherjee, M., Sreelatha, A. Identification of selenoprotein o substrates using a biotinylated atp analog. Methods Enzymol. 662, 275-296 (2022).
  30. Kroeger, T., et al. Edta aggregates induce sypro orange-based fluorescence in thermal shift assay. PLoS One. 12 (5), e0177024 (2017).
  31. Kotov, V., et al. In-depth interrogation of protein thermal unfolding data with moltenprot. Protein Sci. 30 (1), 201-217 (2021).
  32. Wu, T., Gale-Day, Z. J., Gestwicki, J. E. Dsfworld: A flexible and precise tool to analyze differential scanning fluorimetry data. Protein Sci. 33 (6), e5022 (2024).
  33. Reinhard, L., Mayerhofer, H., Geerlof, A., Mueller-Dieckmann, J., Weiss, M. S. Optimization of protein buffer cocktails using thermofluor. Acta Crystallogr Sect F Struct Biol Cryst Commun. 69 (Pt 2), 209-214 (2013).
  34. Ribeiro, A. J. M., et al. Emerging concepts in pseudoenzyme classification, evolution, and signaling. Sci Signal. 12 (594), eaat9797 (2019).
  35. Goldberg, T., Sreelatha, A. Emerging functions of pseudoenzymes. Biochem J. 480 (10), 715-728 (2023).
  36. Pon, A., Osinski, A., Sreelatha, A. Redefining pseudokinases: A look at the untapped enzymatic potential of pseudokinases. IUBMB Life. 75 (4), 370-376 (2023).
  37. Murphy, J. M., Mace, P. D., Eyers, P. A. Live and let die: Insights into pseudoenzyme mechanisms from structure. Curr Opin Struct Biol. 47, 95-104 (2017).

Play Video

Cite This Article
Gonzalez, A., Sreelatha, A. Utilizing Thermal Shift Assay to Probe Substrate Binding to Selenoprotein O. J. Vis. Exp. (210), e67139, doi:10.3791/67139 (2024).

View Video