Summary

זיהוי תאי T נדירים ספציפיים לאנטיגן מריאות עכבר באמצעות פפטיד:טטרמרים מורכבים עיקריים של היסטותאימות

Published: July 19, 2024
doi:

Summary

אנו מספקים פרוטוקול מפורט לבידוד וזיהוי אוכלוסיות נדירות של תאי T ספציפיים לאנטיגן בריאות עכברים באמצעות העשרת תאי T מבוססי חרוזים מגנטיים וטטרמרים מסוג peptide:major histocompatibility complex (MHC).

Abstract

הזיהוי והאפיון של תאי T ספציפיים לאנטיגן במהלך בריאות ומחלות נותר מפתח לשיפור הבנתנו את הפתופיזיולוגיה החיסונית. האתגרים הטכניים של מעקב אחר אוכלוסיות תאי T ספציפיים לאנטיגן ברפרטואר תאי T אנדוגניים התקדמו מאוד על ידי פיתוח ריאגנטים פפטידים:MHC טטראמרים. מולטימרים מסיסים אלה המסומנים באופן פלואורסצנטי של מולקולות MHC Class I או Class II המורכבות לאפיטופים פפטידים אנטיגניים נקשרים ישירות לתאי T בעלי ספציפיות מקבילה של קולטן תאי T (TCR) ולכן יכולים, לפיכך, לזהות אוכלוסיות תאי T ספציפיות לאנטיגן במצבן הטבעי ללא צורך בתגובה פונקציונלית המושרה על ידי ex vivo גירוי. עבור אוכלוסיות נדירות ביותר, תאי T הקשורים לטטרמר יכולים להיות מועשרים מגנטית כדי להגביר את הרגישות והאמינות של זיהוי.

ככל שהחקירה של חסינות תאי T שוכני רקמות מעמיקה, יש צורך דחוף לזהות תאי T ספציפיים לאנטיגן שעוברים אל רקמות שאינן לימפואידיות ושוכנות בהן. בפרוטוקול זה, אנו מציגים סדרה מפורטת של הוראות לבידוד ואפיון של תאי T ספציפיים לאנטיגן הנמצאים בריאות עכבר. זה כרוך בבידוד של תאי T מרקמת ריאה מעוכלת ואחריו שלב העשרה מגנטי כללי של תאי T וצביעת טטרמר לצורך ניתוח ומיון ציטומטריית זרימה. השלבים המודגשים בפרוטוקול זה משתמשים בטכניקות נפוצות ובריאגנטים זמינים, מה שהופך אותו לנגיש כמעט לכל חוקר העוסק באימונולוגיה של תאי T בעכברים, והם ניתנים להתאמה רבה למגוון ניתוחים במורד הזרם של כל אוכלוסיית תאי T ספציפיים לאנטיגן בתדר נמוך המתגוררת בריאות.

Introduction

בלב מערכת החיסון הנרכשת נמצאת היכולת של תא T לזהות אנטיגן מסוים ולהגיב לו. מתי והיכן תא T מגיב לאנטיגן הקוגנטי שלו קובע את מאזן הזיהום והאוטואימוניות, הומאוסטזיס וסרטן, בריאות ומחלות1. מכאן נובע כי המחקר של תאי T בהקשר ספציפי של חסינות צריך להתמקד בתאים עם ספציפיות עבור אנטיגן רלוונטי של עניין. בין הפיתוחים הטכנולוגיים ששיפרו מאוד את היכולת לאפיין אוכלוסיות תאי T ספציפיים לאנטיגן ניתן למנות מולטימרים מסיסים (בדרך כלל טטרמרים) של מולקולות מסוג I או מדרגה II של קומפלקס היסטותאימות ראשוני (MHC) המורכבות לאפיטופים של פפטידים, הידועים יותר בשם “פפטיד MHC”2,3,4,5 . על ידי ייצוג הליגנדות הטבעיות של קולטני אנטיגן של תאי T (TCRs), פפטידים:MHC Class I ו- Class II טטרמרים מספקים אמצעי לזיהוי ישיר של תאי T ספציפיים לאנטיגן CD8+ ו- CD4+, בהתאמה, בתוך הרפרטואר האנדוגני של תאי T במערכת החיסון ללא דרישה לתגובה לגירוי אנטיגן בבדיקה. טטרמרים מייצגים גישה אלגנטית יותר לחקר תאי T ספציפיים לאנטיגן מאשר מודלים להעברת תאי T טרנסגנייםTCR 6, ונעשה בהם שימוש הולך וגובר לזיהוי אוכלוסיות תאי T זרים וספציפיים לאנטיגן עצמי הן במודלים ניסיוניים של עכברים והן במחלות אנושיות 4,5.

בעוד טטרמרים יכולים לזהות בקלות אוכלוסיות בתדר גבוה של תאי T שהתרחבו בתגובה לגירוי אנטיגן, השימוש בהם עבור תאי T נאיביים, ספציפיים לאנטיגן עצמי או זיכרון מוגבל על ידי התדרים הנמוכים מאוד של אוכלוסיות אלה7. הקבוצה שלנו ואחרים פיתחו והפיצו אסטרטגיות העשרה מגנטית מבוססות טטרמר המגבירות את רגישות הזיהוי כדי לאפשר מחקרים של אוכלוסיות תאים אלה ברקמות הלימפה של עכברים 8,9,10,11.

הופעתם של תאי T שוכנים ברקמה בתחום שמה דגש מוגבר על פיתוח דרכים חדשות לחקור תאי T במרחב הלא-לימפואידי. כמו משטחים ריריים רבים אחרים, תאי T בריאות נתקלים במגוון אנטיגנים עצמיים וזרים שמקורם באפיתל של המאכסן, חיידקים קומנסליים וזיהומיים, וישויות סביבתיות, כולל אלרגנים. ניתוח שעתוק של תאי T שנקצרו מרקמה לא לימפואידית (NLT) מדגים פנוטיפ דמוי זיכרון הנושא גורל ותפקוד ייחודיים לרקמה, המכוונים לעתים קרובות לסחר ולהומאוסטזיס רקמות12. יתר על כן, תאי זיכרון T (Trms) שוכנים ברקמה נוטים להיות מוגבלים יותר מבחינה קלונית מאשר אלה במחזור13. קביעה כיצד ומדוע אנטיגנים מניעים את מיקום תאי T ב-NLT היא קריטית להבנת האופן שבו מערכת החיסון מתגוננת מפני זיהום, שומרת על הומאוסטזיס רקמות, ולפעמים מתדרדרת לאוטואימוניות. עם זאת, נראה שיש שחיקה גדולה יותר בקרב תאי T שוכני רקמות מהריאות בהשוואה לתאי NLT14 אחרים. בהתאם לכך, היכולת לזהות ולאפיין תאי T אנדוגניים של הריאה עם ספציפיות אנטיגן נתונה מוגבלת על ידי הנדירות הטבועה בהם.

על ידי שילוב של שימוש בטכניקות העשרת תאים מבוססות חרוזים מגנטיים וצביעת טטרמר פפטיד MHC, הצלחנו לאתר תאי T ספציפיים לאנטיגן עצמי מורחבים אך נדירים בריאות עכבר15,16. כאן, אנו מציגים תיאור מפורט של פרוטוקול שביצענו אופטימיזציה כדי לבודד ולאפיין באופן אמין כל אוכלוסיית תאי T נדירה ספציפית לאנטיגן שנמצאת בריאות עכברים (איור 1). פרוטוקול זה משלב שלב צביעת נוגדנים in vivo כדי להבדיל בין תאי T שוכנים לתאי T וסקולריים17 ואחריו שתי שיטות שונות לעיבוד רקמת ריאה כדי להתאים לזמינות משאבים. לאחר מכן מתבצע שלב העשרה מגנטי כללי של תאי T, צביעת טטרמר וניתוח לפי ציטומטריית זרימה. כדאיות התא וצביעת טטרמר משופרת עוד יותר בפרוטוקול זה על ידי תוספת של אמינוגואנידין, אשר חוסם אפופטוזיס18 בתיווך תחמוצת החנקן המושרה על ידי סינתאז חנקן (iNOS) בתיווך תאי T המושרה על ידי הפעלת תאי T וDasatinib המגביל את הפחתת הרגולציה של TCR19. השלבים המודגשים בפרוטוקול זה משתמשים בטכניקות נפוצות ובריאגנטים זמינים, מה שהופך אותו לנגיש כמעט לכל חוקר העוסק באימונולוגיה של תאי T בעכבר והוא ניתן להתאמה גבוהה למגוון ניתוחים במורד הזרם. למרות שתאי T נאיביים אינם צפויים להימצא בריאות, אנו מאמינים שפרוטוקול זה יהיה מועיל במיוחד לחקר תאי T ספציפיים לאנטיגן עצמי ו- Trms בריאות.

Figure 1
איור 1: סקירה כללית של זרימת עבודה של פרוטוקול. ריאות נקצרות מעכברים ומנותקות לתאים בודדים. הדגימות מועשרות לאחר מכן עבור תאי T לפני צביעה עם פפטיד טטרמרים MHC ונוגדנים מסומנים פלואורסצנטית לניתוח ציטומטרי זרימה. אנא לחץ כאן כדי להציג גרסה גדולה יותר של איור זה.

Protocol

הנהלים המתוארים בפרוטוקול זה מאושרים ומפותחים בהתאם להנחיות שנקבעו על ידי הוועדה המוסדית לטיפול ושימוש בבעלי חיים (IACUC) של בית החולים הכללי של מסצ’וסטס, תוכנית מוסמכת לניהול בעלי חיים של האגודה האמריקאית להסמכת טיפול בחיות מעבדה (AAALAC). ניסויים בוצעו על עכברים ונקבות זכרים ונקבות בני 8-12 שבו…

Representative Results

איור 2 מתאר את אסטרטגיית ה-gating המייצגת המשמשת לזיהוי תאי CD4+ T נדירים ספציפיים לאנטיגן בריאות עם טטרמרים מסוג PEPTIDE:MHC Class II. ניתן ליישם את אותו תהליך עבור תאי T CD8+ ספציפיים לאנטיגן עם טטרמרים מסוג פפטיד MHC Class I (הנתונים אינם מוצגים). בשל המספר הגבוה של ת…

Discussion

אפיונים קודמים של תאי T ספציפיים לאנטיגן מהריאות נהנו מהמספרים החזקים של תאי T ספציפיים לאנטיגן המתרחבים לאחר אירוע ראשוני חריף כגון חיסון תוך אפי או זיהום 20,21,22. עם זאת, אוכלוסיות נדירות יותר של תאי T בריאות, כגון תאי T ספציפיים לאנטיגן עצמ?…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

אנו מודים ל- L. Kuhn על הסיוע הטכני בעיבוד רקמות וייצור טטרמר. עבודה זו מומנה על ידי המכונים הלאומיים לבריאות (R01 AI107020 ו-P01 AI165072 ל-J.J.M., T32 AI007512 ל-D.S.S.), קונסורציום מסצ’וסטס למוכנות לפתוגנים (J.J.M) והוועד המנהל של בית החולים הכללי של מסצ’וסטס למחקר (J.J.M).

Materials

100 mm cell strainer Fisher Scientific 22-363-549
10x PBS without Ca++ or Mg++ Corning 46-013-CM
1x PBS without Ca++ or Mg++ Corning 21-031-CV
AccuCheck Counting Beads Invitrogen PCB100
Aminoguanidine Hemisulfate Salt Sigma-Aldrich A7009
CD90.2 microbeads, mouse Miltenyi 130-121-278
Cell separation magnet (MidiMACS Separator) Miltenyi 130-042-302 Holds single LS column
Cell separation magnet (QuadroMACS Separator) Miltenyi 130-090-976 Holds 4 LS columns
Dasatinib Sigma-Aldrich CDS023389
DNase I Roche 10104159001
Eagle’s Ham’s Amino Acids medium Sigma-Aldrich C5572
gentleMACS Miltenyi 130-093-235 Automated tissue dissociator
gentleMACS C Tubes Miltenyi 130-093-237 Automated tissue dissociator tubes
Hank's Balanced Salt Solution with Ca++ or Mg++ Corning 21-020-CM
HEPES Gibco 15630080
Ketamine Vedco NDC 50989-996-06
Liberase TM Roche 5401119001
Pacific Blue anti-mouse CD45 antibody (Clone: 30-F11) Biolegend 103126
Paramagnetic cell separation columns (LS Columns) Miltenyi 130-042-401 Comes with plunger
Purified anti mouse CD16/32 antibody (Clone: 93) Biolegend 101302
RPMI 1640 medium without L-glutamine Corning 15-040-CM
Sodium Chloride 0.9% (Normal Saline) Cytiva Z1376
Xylazine Pivetal NDC 466066-750-02

References

  1. Sun, L., Su, Y., Jiao, A., Wang, X., Zhang, B. T cells in health and disease. Signal Transduct Target Ther. 8 (1), 235 (2023).
  2. Altman, J. D., et al. Phenotypic analysis of antigen-specific T lymphocytes. Science. 274 (5284), 94-96 (1996).
  3. Crawford, F., Kozono, H., White, J., Marrack, P., Kappler, J. Detection of antigen-specific T cells with multivalent soluble class II MHC covalent peptide complexes. Immunity. 8 (6), 675-682 (1998).
  4. Nepom, G. T., et al. HLA class II tetramers: tools for direct analysis of antigen-specific CD4 + T cells. Arthritis Rheum. 46 (1), 5-12 (2002).
  5. Davis, M. M., Altman, J. D., Newell, E. W. Interrogating the repertoire: broadening the scope of peptide-MHC multimer analysis. Nat Rev Immunol. 11 (8), 551-558 (2011).
  6. Moon, J. J., et al. Tracking epitope-specific T cells. Nat Protoc. 4 (4), 565-581 (2009).
  7. Jenkins, M. K., Moon, J. J. The role of naive T cell precursor frequency and recruitment in dictating immune response magnitude. J Immunol. 188 (9), 4135-4140 (2012).
  8. Moon, J. J., et al. Naive CD4(+) T cell frequency varies for different epitopes and predicts repertoire diversity and response magnitude. Immunity. 27 (2), 203-213 (2007).
  9. Obar, J. J., Khanna, K. M., Lefrancois, L. Endogenous naive CD8+ T cell precursor frequency regulates primary and memory responses to infection. Immunity. 28 (6), 859-869 (2008).
  10. Kotturi, M. F., et al. Naive precursor frequencies and MHC binding rather than the degree of epitope diversity shape CD8+ T cell immunodominance. J Immunol. 181 (3), 2124-2133 (2008).
  11. Legoux, F. P., Moon, J. J. Peptide:MHC tetramer-based enrichment of epitope-specific T cells. J Vis Exp. 68, 4420 (2012).
  12. Szabo, P. A., Miron, M., Farber, D. L. Location, location, location: Tissue resident memory T cells in mice and humans. Sci Immunol. 4 (34), eaas9673 (2019).
  13. Poon, M. M. L., et al. Tissue adaptation and clonal segregation of human memory T cells in barrier sites. Nat Immunol. 24 (2), 309-319 (2023).
  14. Wakim, M. Z. M., Zheng, L. M. Tissue resident memory T cells in the respiratory tract. Mucosal Immunol. 15 (3), 379-388 (2022).
  15. Legoux, F. P., et al. CD4+ T cell tolerance to tissue-restricted self antigens is mediated by antigen-specific regulatory T Cells rather than deletion. Immunity. 43 (5), 896-908 (2015).
  16. Shin, D. S., et al. Lung injury induces a polarized immune response by self-antigen-specific CD4(+) Foxp3(+) regulatory T cells. Cell Rep. 42 (8), 112839 (2023).
  17. Anderson, K. G., et al. Intravascular staining for discrimination of vascular and tissue leukocytes. Nat Protoc. 9 (1), 209-222 (2014).
  18. Vig, M., et al. Inducible nitric oxide synthase in T cells regulates T cell death and immune memory. J Clin Invest. 113 (12), 1734-1742 (2004).
  19. Lissina, A., et al. Protein kinase inhibitors substantially improve the physical detection of T-cells with peptide-MHC tetramers. J Immunol Methods. 340 (1), 11-24 (2009).
  20. Hogan, R. J., et al. Protection from respiratory virus infections can be mediated by antigen-specific CD4(+) T cells that persist in the lungs. J Exp Med. 193 (8), 981-986 (2001).
  21. Hogan, R. J., et al. Activated antigen-specific CD8+ T cells persist in the lungs following recovery from respiratory virus infections. J Immunol. 166 (3), 1813-1822 (2001).
  22. Zhao, J., et al. Airway memory CD4(+) T cells mediate protective immunity against emerging respiratory coronaviruses. Immunity. 44 (6), 1379-1391 (2016).
  23. Hondowicz, B. D., et al. Interleukin-2-dependent allergen-specific tissue-resident memory cells drive asthma. Immunity. 44 (1), 155-166 (2016).
  24. Jungblut, M., Oeltze, K., Zehnter, I., Hasselmann, D., Bosio, A. Standardized preparation of single-cell suspensions from mouse lung tissue using the gentleMACS Dissociator. J Vis Exp. 29, 1266 (2009).
  25. Faustino, L. D., et al. Interleukin-33 activates regulatory T cells to suppress innate gammadelta T cell responses in the lung. Nat Immunol. 21 (11), 1371-1383 (2020).
  26. Atif, S. M., Gibbings, S. L., Jakubzick, C. V. Isolation and identification of interstitial macrophages from the lungs using different digestion enzymes and staining strategies. Methods Mol Biol. 1784, 69-76 (2018).
  27. Pape, K. A., Taylor, J. J., Maul, R. W., Gearhart, P. J., Jenkins, M. K. Different B cell populations mediate early and late memory during an endogenous immune response. Science. 331 (6021), 1203-1207 (2011).
  28. Naeher, D., et al. A constant affinity threshold for T cell tolerance. J Exp Med. 204 (11), 2553-2559 (2007).
  29. Moon, J. J., et al. Quantitative impact of thymic selection on Foxp3+ and Foxp3- subsets of self-peptide/MHC class II-specific CD4+ T cells. Proc Natl Acad Sci U S A. 108 (35), 14602-14607 (2011).
  30. Koehli, S., Naeher, D., Galati-Fournier, V., Zehn, D., Palmer, E. Optimal T-cell receptor affinity for inducing autoimmunity. Proc Natl Acad Sci U S A. 111 (48), 17248-17253 (2014).
  31. Zhang, Z., Legoux, F. P., Vaughan, S. W., Moon, J. J. Opposing peripheral fates of tissue-restricted self antigen-specific conventional and regulatory CD4(+) T cells. Eur J Immunol. 50 (1), 63-72 (2020).

Play Video

Cite This Article
Shin, D. S., Barreto de Albuquerque, J., Moon, J. J. Identification of Rare Antigen-Specific T Cells from Mouse Lungs with Peptide:Major Histocompatibility Complex Tetramers. J. Vis. Exp. (209), e66939, doi:10.3791/66939 (2024).

View Video