Summary

変異体全マウス胚のシングルセルRNAシーケンシング:胚盤葉上から胃腸終末まで

Published: June 14, 2024
doi:

Summary

この論文は、原腸陥入マウス胚の単一細胞および核のシーケンシングのための高品質の単一細胞および核懸濁液のパイプラインを確立します。

Abstract

過去10年間で、シングルセルアプローチは、遺伝子発現ダイナミクス、細胞の不均一性、およびサンプル内の細胞状態を研究するためのゴールドスタンダードになりました。シングルセルが進歩する前は、発生初期に動的な細胞状況と急速な細胞遷移を捉える可能性は限られていました。この論文では、原腸陥入の開始と完了に対応する、胚のE6.5日目からE8までのマウス胚の単一細胞および核分析を実行するための堅牢なパイプラインを設計しました。胃腸形成は、器官形成に不可欠な中胚葉、外胚葉、内胚葉の3つの胚葉を確立する発達中の基本的なプロセスです。野生型の腹陥陥胚に適用されたシングルセルオミクスに関する広範な文献が入手可能です。しかし、変異胚のシングルセル解析はまだ少なく、多くの場合、FACSで選別された集団に限定されています。これは、ジェノタイピングの必要性、時限妊娠、妊娠ごとに目的の遺伝子型を持つ胚の数、およびこれらの段階での胚あたりの細胞数に関連する技術的な制約に一部起因しています。ここでは、これらの制限を克服するために設計された方法論を示します。この方法は、望ましい遺伝子型との同期妊娠の可能性を高めるために、繁殖と時限妊娠のガイドラインを確立します。胚単離プロセスの最適化ステップと同日ジェノタイピングプロトコル(3時間)を組み合わせることで、微小液滴ベースのシングルセルを同日に実施することができ、細胞の高い生存率と堅牢な結果が保証されます。この方法には、胚からの最適な核単離のためのガイドラインがさらに含まれています。したがって、これらのアプローチは、原腸陥入期における変異胚のシングルセルアプローチの実現可能性を高めます。この方法により、突然変異が原腸の細胞ランドスケープをどのように形成するかの解析が容易になると期待しています。

Introduction

生殖は、正常な発達に必要な基本的なプロセスです。この急速でダイナミックなプロセスは、多能性細胞が臓器の形成方法を定義する系統特異的な前駆体に移行するときに発生します。長年にわたり、原腸陥入は、中胚葉、外胚葉、内胚葉の3つの大部分が均質な集団の形成と定義されてきました。しかし、高解像度技術と新たな数の胚性幹細胞モデル1,2により、初期の胚細胞層3,4の間に前例のない不均一性が明らかになりました。このことは、原腸の異なる細胞集団を調節するメカニズムについては、まだ解明されていないことがたくさんあることを示唆しています。マウスの胚発生は、原腸陥入中の初期の細胞運命決定を研究するための最良のモデルの1つです3,5。マウスの胃腸陥入は急速で、原腸陥入の全過程は胚の日E6.5からE85までの48時間以内に起こります。

近年のシングルセル技術の進歩により、野生型マウスの胚発生の詳細なマッピングが可能になり、原腸陥入中の胚の細胞および分子ランドスケープの包括的な概観が得られました3,4,6,7,8。しかし、これらの段階での変異胚の解析はあまり一般的ではなく、しばしばFACSで選別された集団に限定されている9,10。この希少な文献は、ジェノタイピングを必要とする原腸陥入胚の操作と単一細胞調製に関連する技術的な課題を反映しています。原腸陥入のダイナミックな過程を捉えることは、特に変異胚を理解するために、その急速な性質のために課題を引き起こす可能性があります。妊娠のタイミングと同期は不可欠であり、妊娠のタイミング間のわずかな違いでさえ、突然変異遺伝子に起因する発生表現型と誤解される可能性があります。これは、突然変異遺伝子が原腸陥入のプロセスに影響を与える場合に特に重要になります13,14この研究では、膣栓(つまり、交尾後に女性の膣内に形成される凝固した精液の塊)の視覚化を通じて同期妊娠を取得するためのガイドラインが確立されています。さらに、E6.5からE8までの突然変異原腸陥入胚から堅牢な単一細胞データを取得する戦略が設計されています。この戦略は、妊娠ごとに目的の遺伝子型を持つ胚の数が少ないこと、および凍結融解する胚または細胞によって引き起こされる生存率の低下に関連する制約を克服するために考案されています。

この論文では、膣プラグによる時限妊娠の確立から、単一細胞/核の最終的なシーケンシングまで、最適化された方法論について説明します。この方法は、所望の遺伝子型を持つ胚の数を増やすために同期妊娠の数を増やす方法、細胞の生存率を改善するための細胞/核の単離、および同日のジェノタイピングプロトコルを説明する。この原稿では、さまざまな原腸陥入の時点での胚分離のプロセスについても説明しています。この方法論は、シーケンシングのための最終生存胚細胞/核の数を増やすのに役立ち、高品質のシーケンシングデータを確保します。したがって、この方法は、ジェノタイピングを必要とする原腸陥入胚の単一細胞研究への扉を開くことになります。

Protocol

このプロトコルおよび記載されているすべての動物実験は、正式に承認され、テンプル大学施設動物管理・使用委員会によって確立された施設ガイドラインに従っており、これはAssociation for Assessment and Accreditation of Laboratory Animal Careの国際ガイドラインに従っています。記載されているすべてのマウスは、C57/BL6Nバックグラウンド系統を使用していました。これらの研究では、動物の健康に関?…

Representative Results

この論文で設計された方法論は、E6.5からE8までのシングルセルオミクス用の胚サンプルの調製を強化することを特に意図しています。この堅牢なパイプラインは、同期した妊娠、胚の分離、即日ジェノタイピング、細胞解離、細胞生存率の評価という5つの主要なステップで構成されています(図1A)。提示されたデータはE7からE7.5までの時点に焦点を当てていますが、手?…

Discussion

この論文では、原腸陥入マウス胚から高品質の単一細胞および核懸濁液を得るための堅牢なパイプラインが紹介されており、特に初期発生における細胞運命の特異性メカニズムの研究を促進するために設計されています。この方法は、性別や体細胞遺伝子などの遺伝子型を必要とする胚の解析を最適化することにより、原腸陥入の分野における重大なギャップに対処します。このパイプライ?…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Fox Chase Cancer CenterのGenomics Coreと、Dr. Johnathan Whetstineの研究室メンバーであるZach Gray氏、Madison Honer氏、Benjamin Ferman氏には、シーケンシング実験の技術サポートに感謝いたします。私たちは、Estaras博士と、シングルセル研究の初期分析に貢献したローテーション大学院生のAlex Morrisの研究室メンバーに感謝します。この研究は、NIHの助成金R01HD106969およびConchi EstarasへのR56HL163146によって資金提供されています。さらに、エリザベス・エイブラハムは、T32トレーニング助成金5T32HL091804-12の支援を受けました。

Materials

10 cm Petri dish Genesee Scientific 25-202
1000 µL Reach Barrier Tip Genesee Scientific 23-430
20 µL Reach Barrier Tip Genesee Scientific 24-404
300 µL Reach Barrier Tip Genesee Scientific 24-415
37 µm Reversible Strainer, small Stem Cell 27215
6 cm Petri dish Genesee Scientific 25-260
8-strip PCR tubes Genesee Scientific 27-125U
Agarose Apex Bioresearch Product 20-102
Benchmark Scientific BSH300 MyBlock Mini Dry Bath Genesee 31-437
Benchmark Scientific Z216-MK Z216MK Hermle Refrigerated Microcentrifuge Genesee 33-759R
Bovine Serum Albumin (BSA) Sigma-Aldrich A2153
Chromium Controller 10X PN-1000127
Chromium Next GEM Single Cell 3' Reagent Kits v3.1 10X PN-1000269
Countess 3 Automated Cell Counter Invitrogen AMQAX2000
Countess Cell Couning Chamber Slides Invitrogen C10283
D1000 Reagents Agilent 5067-5583
D1000 ScreenTape Agilent 5067-5582
Digitonin ThermoFisher Scientific BN2006
DirectPCR yolk sac Viagen 201-Y
Dithiothreitol (DTT) ThermoFisher Scientific R0861
DNA LoBind Tube 1.5 mL Eppendorf 22431021
Dubecco's Modificiation of Eagle's Medium (DMEM, 1x) CORNING 10-013-CV
Dulbecco's PBS GenClone 25-508
Dumont #5 Fine Forceps Fine Science Tools 11254-20
Dumont #5SF Forceps Fine Science Tools 11252-00
Ethanol Koptec V1401
EVOS M7000 Imaging System Invitrogen AMF7000
Fine Scissors – Sharp Fine Science Tools 14060-11
GoTaq G2 Green Master Mix Promega M7823
Graefe Forceps Fine Science Tools 11049-10
MgCl2 ThermoFisher Scientific AC223211000
MiniAmp Thermal Cycler Applied Biosystems A37834
NaCl Fisher Chemical S271-500
NextSeq 1000/2000 P2 Reagents (100 Cycles) v3 Illumina 20046811
NextSeq2000 Illumina
Nikon SMZ 1000 Stereo Microscope Nikon
Nondiedt P40 Sigma-Aldrich 74385
Nuclease-free Water GenClone 25-511
Optical Tube 8x Strip (401428) Agilent 401428
Optical Tube Cap 8x Strip (401425) Agilent 401425
Poseidon 31-511, HS24 Microcentrifuge, with 24 x 1.5/2.0 mL rotor, 1 Centrifuge/Unit Genesee 31-511
Proteinase K Sigma-Aldrich P6556
Qubit dsDNA Quantification Assay Kits Invitrogen Q32851
Qubit Flex 3 Invitrogen
RNase inhibitor Fisher Scientific 12-141-368
Standard Pattern Forceps Fine Science Tools 11000-12
Tape Station Loading tips Agilent 5067-5598
Tapestation 4150 Agilent G2992AA
Tris-HCL (Ph7) Quality Biological 351-007-101
Trypan Blue Stain 0.4% Theromo Fisher Scientific T10282
Tryple Express Gibco 12604-021
Tween-20 Bio-Rad 1662404
Vortex mixer IKA MS3 with 96-well sample plate adapter IKA 3617000

References

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Abraham, E., Zubillaga, M., Roule, T., Stronati, E., Akizu, N., Estaras, C. Single-Cell RNA Sequencing of Mutant Whole Mouse Embryos: From the Epiblast to the End of Gastrulation. J. Vis. Exp. (208), e66866, doi:10.3791/66866 (2024).

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