Summary

Einzelzell-RNA-Sequenzierung von mutierten ganzen Mausembryonen: Vom Epiblasten bis zum Ende der Gastrulation

Published: June 14, 2024
doi:

Summary

In dieser Arbeit wird eine Pipeline für hochwertige Einzelzell- und Zellkernsuspensionen von gastrulierenden Mausembryonen für die Sequenzierung von Einzelzellen und Zellkernen etabliert.

Abstract

In den letzten zehn Jahren haben sich Einzelzellansätze zum Goldstandard für die Untersuchung der Genexpressionsdynamik, der Zellheterogenität und des Zellzustands in Proben entwickelt. Vor der Weiterentwicklung von Einzelzellen war die Machbarkeit, die dynamische zelluläre Landschaft und schnelle Zellübergänge während der frühen Entwicklung zu erfassen, begrenzt. In dieser Arbeit wurde eine robuste Pipeline entwickelt, um Einzelzell- und Zellkernanalysen an Mausembryonen vom Embryonaltag E6,5 bis E8 durchzuführen, was dem Beginn und Abschluss der Gastrulation entspricht. Die Gastrulation ist ein grundlegender Prozess während der Entwicklung, bei dem die drei Keimblätter Mesoderm, Ektoderm und Endoderm etabliert werden, die für die Organogenese unerlässlich sind. Es gibt umfangreiche Literatur über Einzelzell-Omics, die auf perigastrulierende Wildtyp-Embryonen angewendet werden. Die Einzelzellanalyse mutierter Embryonen ist jedoch noch selten und oft auf FACS-sortierte Populationen beschränkt. Dies ist zum Teil auf die technischen Einschränkungen zurückzuführen, die mit der Notwendigkeit einer Genotypisierung, zeitlich begrenzten Schwangerschaften, der Anzahl der Embryonen mit den gewünschten Genotypen pro Schwangerschaft und der Anzahl der Zellen pro Embryo in diesen Stadien verbunden sind. Hier wird eine Methodik vorgestellt, die darauf ausgelegt ist, diese Einschränkungen zu überwinden. Diese Methode legt Zucht- und zeitlich begrenzte Trächtigkeitsrichtlinien fest, um eine höhere Chance auf synchronisierte Schwangerschaften mit den gewünschten Genotypen zu erreichen. Optimierungsschritte bei der Isolierung des Embryos in Verbindung mit einem Genotypisierungsprotokoll am selben Tag (3 Stunden) ermöglichen die Durchführung von Mikrotröpfchen-basierten Einzelzellen am selben Tag, wodurch die hohe Lebensfähigkeit der Zellen und robuste Ergebnisse gewährleistet werden. Diese Methode enthält auch Richtlinien für optimale Zellkernisolierungen aus Embryonen. Somit erhöhen diese Ansätze die Machbarkeit von Einzelzellansätzen von mutierten Embryonen im Gastrulationsstadium. Wir gehen davon aus, dass diese Methode die Analyse erleichtern wird, wie Mutationen die zelluläre Landschaft der Gastrula prägen.

Introduction

Die Gastrulation ist ein grundlegender Prozess, der für die normale Entwicklung erforderlich ist. Dieser schnelle und dynamische Prozess tritt auf, wenn pluripotente Zellen in linienspezifische Vorläufer übergehen, die die Organbildung definieren. Jahrelang wurde Gastrulation lange Zeit als die Bildung von drei weitgehend homogenen Populationen definiert: Mesoderm, Ektoderm und Endoderm. Hochauflösende Technologien und eine neue Anzahl embryonaler Stammzellmodelle 1,2 offenbaren jedoch eine noch nie dagewesene Heterogenität unter den frühen Keimblättern 3,4. Dies deutet darauf hin, dass über die Mechanismen, die die unterschiedlichen Zellpopulationen der Gastrula regulieren, noch viel mehr geklärt werden muss. Die Embryonalentwicklung von Mäusen war eines der besten Modelle, um frühe Entscheidungen über das Schicksal von Zellen während der Gastrulationzu untersuchen 3,5. Die Gastrulation bei Mäusen ist schnell, da der gesamte Prozess der Gastrulation innerhalb von 48 Stunden vom Embryonaltag E6.5 bis E85 stattfindet.

Jüngste Fortschritte in der Einzelzelltechnologie haben eine detaillierte Kartierung der Embryonalentwicklung von Wildtyp-Mäusen ermöglicht und einen umfassenden Überblick über die zellulären und molekularen Landschaften von Embryonen während der Gastrulation gegeben 3,4,6,7,8. Die Analyse mutierter Embryonen in diesen Stadien ist jedoch weniger verbreitet und oft auf FACS-sortierte Populationen beschränkt 9,10. Die spärliche Literatur spiegelt die technischen Herausforderungen wider, die mit der Manipulation und Einzelzellpräparation von gastrulierenden Embryonen verbunden sind, die eine Genotypisierung erfordern. Die Erfassung des dynamischen Prozesses der Gastrulation kann aufgrund seiner Schnelligkeit eine Herausforderung darstellen, insbesondere für das Verständnis mutierter Embryonen. Der Zeitpunkt und die Synchronisation von Schwangerschaften sind von entscheidender Bedeutung, da bereits geringe Unterschiede zwischen zeitlich begrenzten Schwangerschaften als Entwicklungsphänotyp fehlinterpretiert werden können, der aus dem mutierten Gen resultiert. Dies ist besonders wichtig, wenn das mutierte Gen den Prozess der Gastrulation beeinflusst13,14. In dieser Studie werden Richtlinien aufgestellt, um synchronisierte Schwangerschaften durch Visualisierung von Vaginalplugs (d.h. der Masse der geronnenen Samenflüssigkeit, die sich nach der Paarung in der Vagina des Weibchens bildet) zu erhalten. Darüber hinaus wird eine Strategie entwickelt, um robuste Einzelzelldaten von mutierten gastrulierenden Embryonen von E6.5 bis E8 zu erhalten. Diese Strategie wurde entwickelt, um die Einschränkungen zu überwinden, die mit der geringen Anzahl von Embryonen mit dem gewünschten Genotyp pro Schwangerschaft und der Abnahme der Lebensfähigkeit durch das Einfrieren und Auftauen von Embryonen oder Zellen verbunden sind.

In dieser Arbeit wird eine optimierte Methodik von der Etablierung zeitgesteuerter Schwangerschaften über Vaginalplugs bis hin zur abschließenden Sequenzierung einzelner Zellen/Zellkerne beschrieben. Diese Methode erklärt, wie die Anzahl der synchronisierten Schwangerschaften erhöht werden kann, um eine höhere Anzahl von Embryonen mit dem gewünschten Genotyp zu erhalten, Zell-/Zellkernisolierungen, um die Lebensfähigkeit der Zellen zu verbessern, und ein Genotypisierungsprotokoll am selben Tag. Dieses Manuskript beschreibt auch den Prozess der Embryoisolierung zu verschiedenen Gastrulationszeitpunkten. Die Methodik trägt dazu bei, die Anzahl der endgültigen lebensfähigen embryonalen Zellen/Zellkerne für die Sequenzierung zu erhöhen und so qualitativ hochwertige Sequenzierungsdaten zu gewährleisten. Daher wird diese Methode die Türen für Einzelzellstudien an gastrulierenden Embryonen öffnen, die eine Genotypisierung erfordern.

Protocol

Dieses Protokoll und alle beschriebenen Tierversuche wurden formell genehmigt und entsprechen den institutionellen Richtlinien, die vom Institutional Animal Care and Use Committee der Temple University festgelegt wurden, das den internationalen Richtlinien der Association for Assessment and Accreditation of Laboratory Animal Care folgt. Alle beschriebenen Mäuse befanden sich im Hintergrundstamm C57/BL6N. In diesen Studien wurden keine Bedenken hinsichtlich der Tiergesundheit festgestellt. <stro…

Representative Results

Die in dieser Arbeit entwickelte Methodik zielt speziell darauf ab, die Vorbereitung von Embryoproben für die Einzelzell-Omics von E6.5 bis E8 zu verbessern. Diese robuste Pipeline besteht aus fünf Hauptschritten: synchronisierte zeitgesteuerte Schwangerschaften, Embryoisolierung, Genotypisierung am selben Tag, Zelldissoziation und Beurteilung der Zellviabilität (Abbildung 1A). Während sich die vorgestellten Daten auf Zeitpunkte von E7 bis E7,5 konzentrieren, können sie auf Embryonen bi…

Discussion

In dieser Arbeit wird eine robuste Pipeline zur Gewinnung hochwertiger Einzelzell- und Zellkernsuspensionen aus gastrulierenden Mausembryonen vorgestellt, die speziell entwickelt wurde, um Studien zu den Mechanismen der Zellschicksalsspezifikation in der frühen Entwicklung zu erleichtern. Diese Methode schließt eine entscheidende Lücke im Bereich der Gastrulation, indem sie die Analyse von Embryonen optimiert, die Genotypen wie Geschlecht oder somatische Gene erfordern. Durch die Verwendung genetischer Mutations-Mausm…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Wir danken dem Genomics Core am Fox Chase Cancer Center und den Labormitgliedern von Dr. Johnathan Whetstine, Zach Gray, Madison Honer und Benjamin Ferman, für die technische Unterstützung der Sequenzierungsexperimente. Wir danken den Labormitgliedern von Dr. Estaras und Alex Morris, einem Rotationsdoktoranden, der zur ersten Analyse der Einzelzellstudien beigetragen hat. Diese Arbeit wird durch die NIH-Zuschüsse R01HD106969 und R56HL163146 an Conchi Estaras finanziert. Darüber hinaus wurde Elizabeth Abraham durch das T32-Ausbildungsstipendium 5T32HL091804-12 unterstützt.

Materials

10 cm Petri dish Genesee Scientific 25-202
1000 µL Reach Barrier Tip Genesee Scientific 23-430
20 µL Reach Barrier Tip Genesee Scientific 24-404
300 µL Reach Barrier Tip Genesee Scientific 24-415
37 µm Reversible Strainer, small Stem Cell 27215
6 cm Petri dish Genesee Scientific 25-260
8-strip PCR tubes Genesee Scientific 27-125U
Agarose Apex Bioresearch Product 20-102
Benchmark Scientific BSH300 MyBlock Mini Dry Bath Genesee 31-437
Benchmark Scientific Z216-MK Z216MK Hermle Refrigerated Microcentrifuge Genesee 33-759R
Bovine Serum Albumin (BSA) Sigma-Aldrich A2153
Chromium Controller 10X PN-1000127
Chromium Next GEM Single Cell 3' Reagent Kits v3.1 10X PN-1000269
Countess 3 Automated Cell Counter Invitrogen AMQAX2000
Countess Cell Couning Chamber Slides Invitrogen C10283
D1000 Reagents Agilent 5067-5583
D1000 ScreenTape Agilent 5067-5582
Digitonin ThermoFisher Scientific BN2006
DirectPCR yolk sac Viagen 201-Y
Dithiothreitol (DTT) ThermoFisher Scientific R0861
DNA LoBind Tube 1.5 mL Eppendorf 22431021
Dubecco's Modificiation of Eagle's Medium (DMEM, 1x) CORNING 10-013-CV
Dulbecco's PBS GenClone 25-508
Dumont #5 Fine Forceps Fine Science Tools 11254-20
Dumont #5SF Forceps Fine Science Tools 11252-00
Ethanol Koptec V1401
EVOS M7000 Imaging System Invitrogen AMF7000
Fine Scissors – Sharp Fine Science Tools 14060-11
GoTaq G2 Green Master Mix Promega M7823
Graefe Forceps Fine Science Tools 11049-10
MgCl2 ThermoFisher Scientific AC223211000
MiniAmp Thermal Cycler Applied Biosystems A37834
NaCl Fisher Chemical S271-500
NextSeq 1000/2000 P2 Reagents (100 Cycles) v3 Illumina 20046811
NextSeq2000 Illumina
Nikon SMZ 1000 Stereo Microscope Nikon
Nondiedt P40 Sigma-Aldrich 74385
Nuclease-free Water GenClone 25-511
Optical Tube 8x Strip (401428) Agilent 401428
Optical Tube Cap 8x Strip (401425) Agilent 401425
Poseidon 31-511, HS24 Microcentrifuge, with 24 x 1.5/2.0 mL rotor, 1 Centrifuge/Unit Genesee 31-511
Proteinase K Sigma-Aldrich P6556
Qubit dsDNA Quantification Assay Kits Invitrogen Q32851
Qubit Flex 3 Invitrogen
RNase inhibitor Fisher Scientific 12-141-368
Standard Pattern Forceps Fine Science Tools 11000-12
Tape Station Loading tips Agilent 5067-5598
Tapestation 4150 Agilent G2992AA
Tris-HCL (Ph7) Quality Biological 351-007-101
Trypan Blue Stain 0.4% Theromo Fisher Scientific T10282
Tryple Express Gibco 12604-021
Tween-20 Bio-Rad 1662404
Vortex mixer IKA MS3 with 96-well sample plate adapter IKA 3617000

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Abraham, E., Zubillaga, M., Roule, T., Stronati, E., Akizu, N., Estaras, C. Single-Cell RNA Sequencing of Mutant Whole Mouse Embryos: From the Epiblast to the End of Gastrulation. J. Vis. Exp. (208), e66866, doi:10.3791/66866 (2024).

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