Om de immuunrespons op hersenaandoeningen te onderzoeken, is een veelgebruikte benadering het analyseren van veranderingen in immuuncellen. Hier worden twee eenvoudige en effectieve protocollen gegeven voor het isoleren van immuuncellen uit muizen hersenweefsel en schedelbeenmerg.
Er zijn steeds meer aanwijzingen dat de immuunrespons die wordt veroorzaakt door hersenaandoeningen (bijv. Hersenischemie en auto-immuunencefalomyelitis) niet alleen in de hersenen voorkomt, maar ook in de schedel. Een belangrijke stap in de richting van het analyseren van veranderingen in immuuncelpopulaties in zowel de hersenen als het beenmerg van de schedel na hersenbeschadiging (bijv. beroerte) is het verkrijgen van voldoende aantallen hoogwaardige immuuncellen voor stroomafwaartse analyses. Hier worden twee geoptimaliseerde protocollen geboden voor het isoleren van immuuncellen uit de hersenen en het beenmerg van de schedel. De voordelen van beide protocollen worden weerspiegeld in hun eenvoud, snelheid en werkzaamheid bij het opleveren van een grote hoeveelheid levensvatbare immuuncellen. Deze cellen kunnen geschikt zijn voor een reeks stroomafwaartse toepassingen, zoals celsortering, flowcytometrie en transcriptomische analyse. Om de effectiviteit van de protocollen aan te tonen, werden immunofenotyperingsexperimenten uitgevoerd op beroerte-hersenen en normaal hersenschedelbeenmerg met behulp van flowcytometrie-analyse, en de resultaten kwamen overeen met bevindingen uit gepubliceerde studies.
De hersenen, de centrale spil van het zenuwstelsel, worden beschermd door de schedel. Onder de schedel bevinden zich drie lagen bindweefsel die bekend staan als de hersenvliezen – de dura mater, arachnoïdale mater en pia mater. Cerebrospinale vloeistof (CSF) circuleert in de subarachnoïdale ruimte tussen de arachnoïde mater en pia mater, waardoor de hersenen worden gedempt en ook afvalstoffen worden verwijderd via het glymfatisch systeem 1,2. Samen zorgt deze unieke architectuur voor een veilige en ondersteunende omgeving die de stabiliteit van de hersenen behoudt en deze beschermt tegen mogelijk letsel.
De hersenen worden al lang beschouwd als immuunbevoorrecht. Dit idee is echter gedeeltelijk verlaten omdat er steeds meer bewijs is dat aangeeft dat, naast residente microglia in het parenchym, de grenzen van de hersenen, inclusief de plexus choroideus en de hersenvliezen, een breed scala aan immuuncellen herbergen. Deze cellen spelen een cruciale rol bij het handhaven van de homeostase, het bewaken van de gezondheid van de hersenen en het initiëren van de immuunrespons op hersenletsel. Recente bevindingen geven met name aan dat de schedel betrokken is bij de immuniteit van hersenvliezen en kan bijdragen aan de immuunrespons in de hersenen na letsel. In 2018 deden Herisson et al. een baanbrekende ontdekking van directe vasculaire kanalen die het beenmerg van de schedel met de hersenvliezen verbinden, waardoor een anatomische route voor leukocytenmigratie wordt vastgesteld 4,5. Later toonden Cugurra et al. aan dat veel myeloïde cellen (bijv. monocyten en neutrofielen) en B-cellen in de hersenvliezen niet afkomstig zijn uit het bloed6. Met behulp van technieken zoals calvaria-botflaptransplantatie en selectieve bestralingsregimes, leverden de auteurs overtuigend bewijs dat het beenmerg van de schedel dient als een lokale bron voor myeloïde cellen in de hersenvliezen en als als CZS-parenchymna CZS-letsel. Verder stelde een andere studie voor dat meningeale B-cellen constant worden gevoed door het beenmergvan de schedel 7. Meer recentelijk is een nieuwe structuur, de arachnoïdale manchetuitgang (ACE) genoemd, geïdentificeerd als een directe toegangspoort tussen de dura mater en de hersenen voor het verkeer van immuuncellen.
Deze opwindende bevindingen hebben belangrijke implicaties voor de oorsprong van infiltrerende immuuncellen in de gewonde hersenen (bijvoorbeeld na ischemische beroerte). Een grote hoeveelheid bewijs heeft aangetoond dat na een beroerte veel immuuncellen de hersenen infiltreren, wat bijdraagt aan zowel acute hersenbeschadiging als chronisch hersenherstel. Het conventionele idee is dat deze cellen circulerende leukocyten in het bloed zijn die de hersenen infiltreren, wat grotendeels wordt vergemakkelijkt door door een beroerte veroorzaakte schade aan de bloed-hersenbarrière. Dit idee is echter aangevochten. In één onderzoek werden immuuncellen in de schedel en het scheenbeen van muizen anders gelabeld, en 6 uur na een beroerte werd een significant grotere afname van neutrofielen en monocyten gevonden in de schedel vs. het scheenbeen en meer van de schedel afgeleide neutrofielen waren aanwezig in de ischemische hersenen. Deze gegevens suggereren dat in de acute beroertefase neutrofielen in de ischemische hersenen voornamelijk afkomstig zijn uit het beenmerg van de schedel4. Interessant is dat CSF deze migratie kan begeleiden. Inderdaad, twee recente rapporten toonden aan dat CSF signaalsignalen van de hersenen rechtstreeks via schedelkanalen naar het beenmerg van de schedel kan doorgeven en celmigratie en hematopoëse in het beenmerg van de schedel kan instrueren na CZS-letsel 9,10.
In het licht van deze recente bevindingen is het belangrijk geworden om veranderingen in immuuncellen in zowel de hersenen als het beenmerg van de schedel te analyseren bij het bestuderen van de immuunrespons op hersenaandoeningen. Bij dergelijke onderzoeken zijn voldoende aantallen hoogwaardige immuuncellen nodig voor stroomafwaartse analyses zoals celsortering, flowcytometrie-analyse en single-cell RNA-sequencing (scRNA-seq). Hier is het algemene doel om twee geoptimaliseerde procedures te presenteren voor het bereiden van eencellige suspensies uit hersenweefsel en schedelbeenmerg. Het is belangrijk op te merken dat de calvaria (voorhoofdsbeen, achterhoofdsbeen en pariëtale botten) van de schedel meestal worden gebruikt om beenmerg te extraheren, en dit beenmerg wordt in dit onderzoek specifiek schedelbeenmerg genoemd.
Hier worden twee eenvoudige maar effectieve protocollen gepresenteerd voor het isoleren van immuuncellen uit de hersenen en het beenmerg van de schedel. Deze protocollen kunnen op betrouwbare wijze een grote hoeveelheid levensvatbare immuuncellen opleveren die geschikt kunnen zijn voor diverse stroomafwaartse toepassingen, met name voor flowcytometrie.
Om neuro-inflammatie bij verschillende hersenaandoeningen te bestuderen, zijn er veel protocollen voor immuuncelpreparaten uit de hersenen opge…
The authors have nothing to disclose.
We danken Kathy Gage voor haar uitstekende redactionele bijdrage. De illustratiefiguren zijn gemaakt met BioRender.com. Deze studie werd ondersteund door fondsen van de afdeling Anesthesiologie (Duke University Medical Center) en NIH-beurzen NS099590, HL157354 en NS127163.
0.5 mL microcentrifuge tubes | VWR | 76332-066 | |
1.5 mL microcentrifuge tubes | VWR | 76332-068 | |
15 mL conical tubes | Thermo Fisher Scientific | 339651 | |
18 G x 1 in BD PrecisionGlide Needle | BD Biosciences | 305195 | |
1x HBSS | Gibco | 14175-095 | |
50 mL conical tubes | Thermo Fisher Scientific | 339653 | |
96-well V-bottom microplate | SARSTEDT | 82.1583 | |
AURORA flow cytometer | Cytek bioscience | ||
BSA | Fisher | BP9706-100 | |
CD11b-AF594 | BioLegend | 101254 | 1:500 dilution |
CD19-BV785 | BioLegend | 115543 | 1:500 dilution |
CD19-FITC | BioLegend | 115506 | 1:500 dilution |
CD3-APC | BioLegend | 100312 | 1:500 dilution |
CD3-PE | BioLegend | 100206 | 1:500 dilution |
CD45-Alex 700 | BioLegend | 103128 | 1:500 dilution |
CD45-BV421 | Biolegend | 103133 | 1:500 dilution |
Cell Strainer 70 um | Avantor | 732-2758 | |
Dressing Forceps | V. Mueller | NL1410 | |
EDTA | Invitrogen | 15575-038 | |
Fc Block | Biolegend | 101320 | 1:100 dilution |
Forceps | Roboz | RS-5047 | |
LIVE/DEAD Fixable Blue Dead Cell Stain Kit | Thermo Fisher Scientific | N7167 | 1:500 dilution |
Ly6G-BV421 | BioLegend | 127628 | 1:500 dilution |
Ly6G-PerCp-cy5.5 | BioLegend | 127615 | 1:500 dilution |
NK1.1-APC-cy7 | BioLegend | 108723 | 1:500 dilution |
Percoll (density gradient medium) | Cytiva | 17089101 | |
Phosphate buffer saline (10x) | Gibco | 70011-044 | |
RBC Lysis Buffer (10x) | BioLegend | 420302 | |
Scissors | SKLAR | 64-1250 | |
WHEATON Dounce Tissue, 15 mL Size | DWK Life Sciences | 357544 |