Dit manuscript presenteert een protocol voor het chirurgisch verwijderen van de postganglionische lumbale sympathische neuronen van een muis. Deze procedure zal een groot aantal onderzoeken mogelijk maken die gericht zijn op het onderzoeken van de rol van sympathische innervatie in distale weefseldoelen.
Perifere zenuwletsels komen vaak voor en bij slechts 10% van de patiënten wordt volledig functioneel herstel na letsel bereikt. Het sympathische zenuwstelsel speelt veel cruciale rollen bij het handhaven van lichamelijke homeostase, maar het is zelden bestudeerd in de context van perifere zenuwbeschadiging. De omvang van postganglionische sympathische neuronale functies in distale doelen in de periferie is momenteel onduidelijk. Om de rol van sympathische innervatie van perifere doelen beter te onderzoeken, biedt een chirurgisch “knock-out”-model een alternatieve benadering. Hoewel dit chemisch kan worden bereikt, kan chemische vernietiging van postganglionische sympathische neuronen niet-specifiek en dosisafhankelijk zijn. Het gebruik van een chirurgische lumbale sympathectomie bij muizen, waarvan ooit werd gedacht dat het “vrijwel niet uitvoerbaar” was bij kleine dieren, maakt het mogelijk om specifiek gericht te zijn op postganglionische sympathische neuronen die de achterpoten innerveren. Dit manuscript beschrijft hoe de L2-L5 lumbale sympathische ganglia van een muis operatief kunnen worden verwijderd als een overlevingsoperatie, die de zweetreactie van de achterpoten en het aantal sympathische axonen in de heupzenuw op betrouwbare wijze vermindert.
Perifere zenuwletsels (PNI’s) kunnen leiden tot motorische, sensorische en sympathische tekorten in distale weefseldoelen die zelden volledig functioneel herstellen1. PNI-onderzoek heeft zich vaak gericht op de motorische en sensorische regeneratie; Bijna een kwart van de heupzenuw van de rat bestaat echter uit niet-gemyeliniseerde sympathische axonen2. De rol van sympathische innervatie in de perifere weefsels wordt echter niet volledig begrepen3. Het sympathische zenuwstelsel speelt een belangrijke rol bij het handhaven van lichamelijke homeostase en neemt deel aan immuunregulatie, thermoregulatie, vasculaire tonus, mitochondriale biogenese en meer 4,5,6,7,8,9,10,11 . Wanneer sympathische innervatie bij de neuromusculaire junctie verloren gaat, worden aanhoudende spierzwakte en synaptische instabiliteit waargenomen ondanks het behoud van motorneuroninnervatie12. Het is aangetoond dat deze sympathische regulatie van synaptische transmissie op de neuromusculaire overgang afneemt met veroudering13,14, wat bijdraagt aan sarcopenie, gedefinieerd als de leeftijdsafhankelijke vermindering van spiermassa, kracht en kracht15. Een beter begrip van de rol van sympathische innervatie van perifere weefsels is noodzakelijk voor de ontwikkeling van therapieën die de functionele resultaten voor patiënten met PNI’s en andere vormen van sympathische disfunctie zullen optimaliseren.
Een sympathectomie is een krachtig experimenteel hulpmiddel dat onderzoek mogelijk maakt naar de rol van sympathische innervatie in distale doelweefsels. In het bijzonder verwijdert verwijdering van de sympathische ganglia op L2-L5-niveau een meerderheid van de sympathische innervatie naar de onderste ledematen, wat vooral nuttig is voor onderzoekers die geïnteresseerd zijn in de heupzenuw.
Dit protocol beschrijft de verwijdering van postganglionische sympathische neuronen op L2-L5-niveau uit een muis als een overlevingsoperatie. Deze procedure vereist microchirurgische vaardigheden van knaagdieren en vertrouwdheid met de anatomie van muizen, en veroorzaakt, wanneer effectief uitgevoerd, geen zichtbare fenotypische verschillen. Een chirurgische lumbale sympathectomie is gebruikt in onderzoek bij knaagdieren, meer bij ratten dan bij muizen 16,17,18,19,20,21; Er bestaat momenteel echter geen gedetailleerd protocol waarin het protocol wordt beschreven. Eerdere studies die gebruik maakten van de lumbale sympathectomie hebben zich voornamelijk gericht op de rol van sympathische innervatie in de pijnrespons, die over het algemeen wordt verzwakt door sympathectomie in verschillende modellen voor zenuwbeschadiging. Minder studies hebben deze techniek gebruikt bij muizen22, waarschijnlijk vanwege de kleinere omvang van anatomische oriëntatiepunten, omdat het gebruik van chirurgische sympathectomie werd aangenomen als “vrijwel niet uitvoerbaar” bij kleine dieren23,24. Gelokaliseerde sympathectomieën in de vorm van microsympathectomieën zijn ook gebruikt in knaagdiermodellen, ook meestal in de context van pijngedrag 25,26,27. De microsympathectomie maakt, in tegenstelling tot de totale lumbale sympathectomie, gebruik van een dorsale benadering waarbij een segment van de grijze ramus naar een specifieke ruggenmergzenuw wordt losgekoppeld en verwijderd, waardoor een zeer gerichte sympathectomie mogelijk is die wijdverspreide bijwerkingen zal voorkomen.
Omdat muismodellen van cruciaal belang zijn voor veel onderzoeken die genetische manipulatie vereisen, zal deze procedure ook veelzijdige toepassingen hebben die verder gaan dan de breedte van perifere zenuwbeschadigingen. Met behulp van een transabdominale benadering kunnen de lumbale sympathische ganglia betrouwbaar worden gevisualiseerd en verwijderd van de muis zonder duidelijke nadelige effecten. Hoewel er protocollen beschikbaar zijn voor de chemische vernietiging van postganglionische sympathische neuronen, zoals het gebruik van 6-hydroxydopamine (6-OHDA)23,24, maakt deze chirurgische ingreep anatomisch specifieke targeting van de postganglionische lumbale sympathische ganglia mogelijk. Het gebruik van een chirurgische sympathectomie vermijdt ook de niet-specifieke en dosisafhankelijke zorgen die verband houden met farmacologische methoden28,29.
Het gebruik van chemische sympathectomieën via toediening van 6-OHDA werd in 1967 beschreven als een eenvoudige manier om selectieve vernietiging van adrenerge zenuwuiteinden te bereiken, aangezien chirurgische sympathectomieën bij kleine dieren niet de voorkeur hadden23,24. 6-OHDA is een catecholaminerge neurotoxine dat endogeen wordt gevormd bij patiënten met de ziekte van Parkinson, en de toxiciteit ervan is afgeleid van het vermogen om vrije radicalen te vormen en de elektronentransportketen in mitochondriën te remmen30,31. Door transportmechanismen voor de opname van noradrenaline-1 kan 6-OHDA zich ophopen in noradrenerge neuronen, zoals postganglionische sympathische neuronen28. Uiteindelijk wordt het neuron vernietigd door 6-OHDA; Terminals in het perifere zenuwstelsel regenereren echter wel, met het herstel van de functionele activiteit, zelfs wanneer de aminespiegels nog steeds verlaagd zijn. Er zijn ook verschillende doseringsdrempels aanwezig voor verschillende organen als reactie op 6-OHDA, en van hogere doses 6-OHDA is aangetoond dat ze meer niet-specifieke effecten vertonen, waardoor de neurotoxische gevolgen worden uitgebreid tot niet-catecholamine-bevattende neuronen en zelfs niet-neuronale cellen. Afgezien van noradrenerge neuronen, worden dopaminerge neuronen ook beïnvloed door 6-OHDA29, waardoor de chemische sympathectomie uiteindelijk minder specifiek is voor postganglionische sympathische neuronen dan de chirurgische sympathectomie.
Daarom maakt een chirurgische lumbale sympathectomie de gerichte ablatie van de sympathische innervatie naar de onderste ledematen mogelijk, die kan worden gecombineerd met een verscheidenheid aan experimentele technieken en genetische manipulaties bij de muis om te bestuderen hoe het sympathische zenuwstelsel bijdraagt aan verschillende letsel- en ziektetoestanden.
De lumbale sympathische ganglia zijn zeer kleine structuren die zich achter veel kritieke buikorganen en grote bloedvaten bevinden. Daarom vereist deze procedure aanzienlijke precisie en nauwkeurigheid. Een groot deel van de moeilijkheid ligt in het intraoperatief identificeren van de sympathische ganglia. Er wordt gesuggereerd dat de leerling eerst in staat is om de ganglia in een muiskadaver te identificeren voordat hij deze procedure in een levende muis probeert. Het oplossen van problemen zal vaak moeten plaatsvinden…
The authors have nothing to disclose.
Dit werk werd ondersteund door het NIH National Institute of Neurological Disorders and Stroke onder toekenningsnummer K01NS124912 en gedeeltelijk door een ontwikkelingssubsidie van het door de NIH gefinancierde Emory Specialized Center of Research Excellence in Sex Differences U54AG062334 en het Medical Scientist Training Program van Emory University School of Medicine. Dank aan David Kim, postbaccalaureaat, voor het doorsnijden van heupzenuwen en aan HaoMin SiMa, onderzoeksspecialist, voor het 3D-printen van een telefoonhouder voor onze stereomicroscoop waarmee de video kon worden gefilmd.
5-0 absorable suture | CP Medical | 421A | |
5-0 nylon suture | Med-Vet International | MV-661 | |
70% ethanol | Sigma-Aldrich | E7023-4L | |
Anesthesia Induction Chamber | Kent Scientific VetFlo | VetFlo-0530XS | |
Anesthesia Vaporizer | Kent Scientific VetFlo | 13-005-202 | |
Betadine | HealthyPets | BET16OZ | |
C57BL/6J mice | Jackson Laboratory | #000664 | |
Chicken anti-neurofilament-heavy | Abcam | ab72996 | |
Cryostat | Leica | CM1850 | |
Data Analysis Software | Prism | ||
Eye lubricant | Refresh | Refresh P.M. | |
Fine-tipped tweezers | World Precision Instruments | 500233 | |
Fluorescent microscope | Nikon | Ti-E | |
Goat anti-chicken 488 | Invitrogen | A32931 | |
Goat anti-rabbit 647 | Invitrogen | A21245 | |
Heating pad | Braintree Scientific | 39DP | |
Image Analysis Software | Fiji | ||
Imaging Software | Nikon | NIS-Elements | |
Isoflurane | Med-Vet International | RXISO-250 | |
Meloxicam | Med-Vet International | RXMELOXIDYL32 | |
Needle driver | Roboz Surgical Store | RS-7894 | |
Normal Goat Serum | Abcam | ab7481 | |
Phox2bCre:tdTomato mutant mice | Jackson Laboratory | #016223, #007914 | |
Pilocarpine hydrochloride | Sigma-Aldrich | P6503 | |
Rabbit anti-tyrosine hydroxylase | Abcam | ab112 | |
Small straight scissors | Fine Science Tools | 14084-09 | |
Sterile cotton swabs 2×2 | Dynarex | 3252 | |
Sterile cotton tipped applicators | Dynarex | 4301 | |
Sterile drape | Med-Vet International | DR4042 | |
Sterile saline solution | Med-Vet International | 1070988-BX | |
ThCre:mTmG mutant mice | Mutant Mouse Resource and Research Centers | strain #017262-UCD | Jackson Laboratory, strain #007576 |
ThCre:tdTomato mutant mice | European Mouse Mutant Archive | strain #00254 | Jackson Laboratory, strain #007914 |
.