Summary

Chirurgische lumbale sympathectomie bij muizen

Published: July 05, 2024
doi:

Summary

Dit manuscript presenteert een protocol voor het chirurgisch verwijderen van de postganglionische lumbale sympathische neuronen van een muis. Deze procedure zal een groot aantal onderzoeken mogelijk maken die gericht zijn op het onderzoeken van de rol van sympathische innervatie in distale weefseldoelen.

Abstract

Perifere zenuwletsels komen vaak voor en bij slechts 10% van de patiënten wordt volledig functioneel herstel na letsel bereikt. Het sympathische zenuwstelsel speelt veel cruciale rollen bij het handhaven van lichamelijke homeostase, maar het is zelden bestudeerd in de context van perifere zenuwbeschadiging. De omvang van postganglionische sympathische neuronale functies in distale doelen in de periferie is momenteel onduidelijk. Om de rol van sympathische innervatie van perifere doelen beter te onderzoeken, biedt een chirurgisch “knock-out”-model een alternatieve benadering. Hoewel dit chemisch kan worden bereikt, kan chemische vernietiging van postganglionische sympathische neuronen niet-specifiek en dosisafhankelijk zijn. Het gebruik van een chirurgische lumbale sympathectomie bij muizen, waarvan ooit werd gedacht dat het “vrijwel niet uitvoerbaar” was bij kleine dieren, maakt het mogelijk om specifiek gericht te zijn op postganglionische sympathische neuronen die de achterpoten innerveren. Dit manuscript beschrijft hoe de L2-L5 lumbale sympathische ganglia van een muis operatief kunnen worden verwijderd als een overlevingsoperatie, die de zweetreactie van de achterpoten en het aantal sympathische axonen in de heupzenuw op betrouwbare wijze vermindert.

Introduction

Perifere zenuwletsels (PNI’s) kunnen leiden tot motorische, sensorische en sympathische tekorten in distale weefseldoelen die zelden volledig functioneel herstellen1. PNI-onderzoek heeft zich vaak gericht op de motorische en sensorische regeneratie; Bijna een kwart van de heupzenuw van de rat bestaat echter uit niet-gemyeliniseerde sympathische axonen2. De rol van sympathische innervatie in de perifere weefsels wordt echter niet volledig begrepen3. Het sympathische zenuwstelsel speelt een belangrijke rol bij het handhaven van lichamelijke homeostase en neemt deel aan immuunregulatie, thermoregulatie, vasculaire tonus, mitochondriale biogenese en meer 4,5,6,7,8,9,10,11 . Wanneer sympathische innervatie bij de neuromusculaire junctie verloren gaat, worden aanhoudende spierzwakte en synaptische instabiliteit waargenomen ondanks het behoud van motorneuroninnervatie12. Het is aangetoond dat deze sympathische regulatie van synaptische transmissie op de neuromusculaire overgang afneemt met veroudering13,14, wat bijdraagt aan sarcopenie, gedefinieerd als de leeftijdsafhankelijke vermindering van spiermassa, kracht en kracht15. Een beter begrip van de rol van sympathische innervatie van perifere weefsels is noodzakelijk voor de ontwikkeling van therapieën die de functionele resultaten voor patiënten met PNI’s en andere vormen van sympathische disfunctie zullen optimaliseren.

Een sympathectomie is een krachtig experimenteel hulpmiddel dat onderzoek mogelijk maakt naar de rol van sympathische innervatie in distale doelweefsels. In het bijzonder verwijdert verwijdering van de sympathische ganglia op L2-L5-niveau een meerderheid van de sympathische innervatie naar de onderste ledematen, wat vooral nuttig is voor onderzoekers die geïnteresseerd zijn in de heupzenuw.

Dit protocol beschrijft de verwijdering van postganglionische sympathische neuronen op L2-L5-niveau uit een muis als een overlevingsoperatie. Deze procedure vereist microchirurgische vaardigheden van knaagdieren en vertrouwdheid met de anatomie van muizen, en veroorzaakt, wanneer effectief uitgevoerd, geen zichtbare fenotypische verschillen. Een chirurgische lumbale sympathectomie is gebruikt in onderzoek bij knaagdieren, meer bij ratten dan bij muizen 16,17,18,19,20,21; Er bestaat momenteel echter geen gedetailleerd protocol waarin het protocol wordt beschreven. Eerdere studies die gebruik maakten van de lumbale sympathectomie hebben zich voornamelijk gericht op de rol van sympathische innervatie in de pijnrespons, die over het algemeen wordt verzwakt door sympathectomie in verschillende modellen voor zenuwbeschadiging. Minder studies hebben deze techniek gebruikt bij muizen22, waarschijnlijk vanwege de kleinere omvang van anatomische oriëntatiepunten, omdat het gebruik van chirurgische sympathectomie werd aangenomen als “vrijwel niet uitvoerbaar” bij kleine dieren23,24. Gelokaliseerde sympathectomieën in de vorm van microsympathectomieën zijn ook gebruikt in knaagdiermodellen, ook meestal in de context van pijngedrag 25,26,27. De microsympathectomie maakt, in tegenstelling tot de totale lumbale sympathectomie, gebruik van een dorsale benadering waarbij een segment van de grijze ramus naar een specifieke ruggenmergzenuw wordt losgekoppeld en verwijderd, waardoor een zeer gerichte sympathectomie mogelijk is die wijdverspreide bijwerkingen zal voorkomen.

Omdat muismodellen van cruciaal belang zijn voor veel onderzoeken die genetische manipulatie vereisen, zal deze procedure ook veelzijdige toepassingen hebben die verder gaan dan de breedte van perifere zenuwbeschadigingen. Met behulp van een transabdominale benadering kunnen de lumbale sympathische ganglia betrouwbaar worden gevisualiseerd en verwijderd van de muis zonder duidelijke nadelige effecten. Hoewel er protocollen beschikbaar zijn voor de chemische vernietiging van postganglionische sympathische neuronen, zoals het gebruik van 6-hydroxydopamine (6-OHDA)23,24, maakt deze chirurgische ingreep anatomisch specifieke targeting van de postganglionische lumbale sympathische ganglia mogelijk. Het gebruik van een chirurgische sympathectomie vermijdt ook de niet-specifieke en dosisafhankelijke zorgen die verband houden met farmacologische methoden28,29.

Het gebruik van chemische sympathectomieën via toediening van 6-OHDA werd in 1967 beschreven als een eenvoudige manier om selectieve vernietiging van adrenerge zenuwuiteinden te bereiken, aangezien chirurgische sympathectomieën bij kleine dieren niet de voorkeur hadden23,24. 6-OHDA is een catecholaminerge neurotoxine dat endogeen wordt gevormd bij patiënten met de ziekte van Parkinson, en de toxiciteit ervan is afgeleid van het vermogen om vrije radicalen te vormen en de elektronentransportketen in mitochondriën te remmen30,31. Door transportmechanismen voor de opname van noradrenaline-1 kan 6-OHDA zich ophopen in noradrenerge neuronen, zoals postganglionische sympathische neuronen28. Uiteindelijk wordt het neuron vernietigd door 6-OHDA; Terminals in het perifere zenuwstelsel regenereren echter wel, met het herstel van de functionele activiteit, zelfs wanneer de aminespiegels nog steeds verlaagd zijn. Er zijn ook verschillende doseringsdrempels aanwezig voor verschillende organen als reactie op 6-OHDA, en van hogere doses 6-OHDA is aangetoond dat ze meer niet-specifieke effecten vertonen, waardoor de neurotoxische gevolgen worden uitgebreid tot niet-catecholamine-bevattende neuronen en zelfs niet-neuronale cellen. Afgezien van noradrenerge neuronen, worden dopaminerge neuronen ook beïnvloed door 6-OHDA29, waardoor de chemische sympathectomie uiteindelijk minder specifiek is voor postganglionische sympathische neuronen dan de chirurgische sympathectomie.

Daarom maakt een chirurgische lumbale sympathectomie de gerichte ablatie van de sympathische innervatie naar de onderste ledematen mogelijk, die kan worden gecombineerd met een verscheidenheid aan experimentele technieken en genetische manipulaties bij de muis om te bestuderen hoe het sympathische zenuwstelsel bijdraagt aan verschillende letsel- en ziektetoestanden.

Protocol

Alle experimenten werden goedgekeurd door het Institutional Animal Care and Use Committee (IACUC) van Emory University (onder het IACUC-protocolnummer PROTO201700371). In dit onderzoek werden vier volwassen vrouwelijke wildtype C57BL/6J-muizen gebruikt, 14 weken oud en met een gewicht tussen 16-21 g. De details van de reagentia en apparatuur die hier worden gebruikt, staan vermeld in de Tabel met materialen. 1. Preoperatieve voorbereiding Autoclaaf d…

Representative Results

Dit protocol beschrijft de chirurgische verwijdering van postganglionische lumbale sympathische neuronen uit een muis. Twee muizen kregen lumbale sympathectomieën en twee muizen dienden als controles. Om een succesvolle chirurgische lumbale sympathectomie te bereiken, moet een adequate visualisatie van ten minste de bilaterale lumbale sympathische ganglia L2 en L3 worden bereikt, zoals te zien is in figuur 1. Verwijdering van de ganglia L4 en L5 zou volledige sympathische denervatie van het…

Discussion

De lumbale sympathische ganglia zijn zeer kleine structuren die zich achter veel kritieke buikorganen en grote bloedvaten bevinden. Daarom vereist deze procedure aanzienlijke precisie en nauwkeurigheid. Een groot deel van de moeilijkheid ligt in het intraoperatief identificeren van de sympathische ganglia. Er wordt gesuggereerd dat de leerling eerst in staat is om de ganglia in een muiskadaver te identificeren voordat hij deze procedure in een levende muis probeert. Het oplossen van problemen zal vaak moeten plaatsvinden…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Dit werk werd ondersteund door het NIH National Institute of Neurological Disorders and Stroke onder toekenningsnummer K01NS124912 en gedeeltelijk door een ontwikkelingssubsidie van het door de NIH gefinancierde Emory Specialized Center of Research Excellence in Sex Differences U54AG062334 en het Medical Scientist Training Program van Emory University School of Medicine. Dank aan David Kim, postbaccalaureaat, voor het doorsnijden van heupzenuwen en aan HaoMin SiMa, onderzoeksspecialist, voor het 3D-printen van een telefoonhouder voor onze stereomicroscoop waarmee de video kon worden gefilmd.

Materials

5-0 absorable suture CP Medical 421A
5-0 nylon suture Med-Vet International MV-661
70% ethanol Sigma-Aldrich E7023-4L
Anesthesia Induction Chamber Kent Scientific VetFlo VetFlo-0530XS
Anesthesia Vaporizer Kent Scientific VetFlo 13-005-202
Betadine HealthyPets BET16OZ
C57BL/6J mice Jackson Laboratory #000664
Chicken anti-neurofilament-heavy Abcam ab72996
Cryostat Leica CM1850
Data Analysis Software Prism
Eye lubricant Refresh Refresh P.M.
Fine-tipped tweezers World Precision Instruments 500233
Fluorescent microscope Nikon Ti-E
Goat anti-chicken 488 Invitrogen A32931
Goat anti-rabbit 647 Invitrogen A21245
Heating pad Braintree Scientific 39DP
Image Analysis Software Fiji
Imaging Software Nikon NIS-Elements
Isoflurane Med-Vet International RXISO-250
Meloxicam Med-Vet International RXMELOXIDYL32
Needle driver Roboz Surgical Store RS-7894
Normal Goat Serum Abcam ab7481
Phox2bCre:tdTomato mutant mice Jackson Laboratory  #016223, #007914
Pilocarpine hydrochloride Sigma-Aldrich P6503
Rabbit anti-tyrosine hydroxylase Abcam ab112
Small straight scissors  Fine Science Tools 14084-09
Sterile cotton swabs 2×2 Dynarex 3252
Sterile cotton tipped applicators Dynarex 4301
Sterile drape Med-Vet International DR4042
Sterile saline solution Med-Vet International 1070988-BX
ThCre:mTmG mutant mice Mutant Mouse Resource and Research Centers strain #017262-UCD Jackson Laboratory, strain #007576
ThCre:tdTomato mutant mice European Mouse Mutant Archive strain #00254 Jackson Laboratory, strain #007914

References

  1. Scholz, T., et al. Peripheral nerve injuries: An international survey of current treatments and future perspectives. J Reconstr Microsurg. 25 (06), 339-344 (2009).
  2. Schmalbruch, H. Fiber composition of the rat sciatic nerve. Anat Rec. 215 (1), 71-81 (1986).
  3. Tian, T., Moore, A. M., Ghareeb, P. A., Boulis, N. M., Ward, P. J. A perspective on electrical stimulation and sympathetic regeneration in peripheral nerve injuries. Neurotrauma Rep. 5 (1), 172-180 (2024).
  4. Gagnon, D., Crandall, C. G. Sweating as a heat loss thermoeffector. Hand Clin Neurol. 156, 211-232 (2018).
  5. Grassi, G. Role of the sympathetic nervous system in human hypertension. J Hypertens. 16 (12), 1979-1987 (1998).
  6. Dibona, G. F. Sympathetic nervous system and the kidney in hypertension. Curr Opin Nephrol Hypertens. 11 (2), 197-200 (2002).
  7. Elenkov, I. J., Wilder, R. L., Chrousos, G. P., Vizi, E. S. The sympathetic nerve-An integrative interface between two supersystems: The brain and the immune system. Pharmacol Rev. 52 (4), 595-638 (2000).
  8. Besedovsky, H. O., Del Rey, A., Sorkin, E., Da Prada, M., Keller, H. Immunoregulation mediated by the sympathetic nervous system. Cell Immunol. 48 (2), 346-355 (1979).
  9. Straka, T., et al. Postnatal development and distribution of sympathetic innervation in mouse skeletal muscle. Int J Mol Sci. 19 (7), 1935 (2018).
  10. Geng, T., et al. Pgc-1α plays a functional role in exercise-induced mitochondrial biogenesis and angiogenesis but not fiber-type transformation in mouse skeletal muscle. Am J Physiol Cell Physiol. 298 (3), C572-C579 (2010).
  11. Lin, J., Handschin, C., Spiegelman, B. M. Metabolic control through the pgc-1 family of transcription coactivators. Cell Metab. 1 (6), 361-370 (2005).
  12. Khan, M. M., et al. Sympathetic innervation controls homeostasis of neuromuscular junctions in health and disease. Proc Natl Acad Sci. 113 (3), 746-750 (2016).
  13. Delbono, O., Rodrigues, A. C. Z., Bonilla, H. J., Messi, M. L. The emerging role of the sympathetic nervous system in skeletal muscle motor innervation and sarcopenia. Ageing Res Rev. 67, 101305 (2021).
  14. Rodrigues, A. C. Z., et al. Heart and neural crest derivative 2-induced preservation of sympathetic neurons attenuates sarcopenia with aging. J Cachexia Sarcopenia Muscle. 12 (1), 91-108 (2021).
  15. Rosenberg, I. H. Summary comments. Am J Clin Nutr. 50 (5), 1231-1233 (1989).
  16. Murata, Y., Olmarker, K., Takahashi, I., Takahashi, K., Rydevik, B. Effects of lumbar sympathectomy on pain behavioral changes caused by nucleus pulposus-induced spinal nerve damage in rats. Eur Spine J. 15, 634-640 (2006).
  17. Xie, J., Park, S. K., Chung, K., Chung, J. M. The effect of lumbar sympathectomy in the spinal nerve ligation model of neuropathic pain. J Pain. 2 (5), 270-278 (2001).
  18. Lee, D. H., Katner, J., Iyengar, S., Lodge, D. The effect of lumbar sympathectomy on increased tactile sensitivity in spinal nerve ligated rats. Neurosci Lett. 298 (2), 99-102 (2001).
  19. Ringkamp, M., et al. Lumbar sympathectomy failed to reverse mechanical allodynia-and hyperalgesia-like behavior in rats with l5 spinal nerve injury. Pain. 79 (2-3), 143-153 (1999).
  20. Zhao, C., et al. Lumbar sympathectomy attenuates cold allodynia but not mechanical allodynia and hyperalgesia in rats with spared nerve injury. J Pain. 8 (12), 931-937 (2007).
  21. Zheng, Z. -. F., et al. Recovery of sympathetic nerve function after lumbar sympathectomy is slower in the hind limbs than in the torso. Neural Regen Res. 12 (7), 1177 (2017).
  22. Holmberg, K., Shi, T. -. J. S., Albers, K. M., Davis, B. M., Hökfelt, T. Effect of peripheral nerve lesion and lumbar sympathectomy on peptide regulation in dorsal root ganglia in the ngf-overexpressing mouse. Exp Neurol. 167 (2), 290-303 (2001).
  23. Thoenen, H., Tranzer, J. Chemical sympathectomy by selective destruction of adrenergic nerve endings with 6-hydroxydopamine. Naunyn Schmiedebergs Arch. Exp. Pathol. Pharmakol. 261, 271-288 (1968).
  24. Thoenen, H., Tranzer, J. P., Häusler, G. Chemical sympathectomy with 6-hydroxydopamine. New Aspects of Storage and Release Mechanisms of Catecholamines. , 130-143 (1970).
  25. Xie, W., et al. Localized sympathectomy reduces mechanical hypersensitivity by restoring normal immune homeostasis in rat models of inflammatory pain. J Neuroscience. 36 (33), 8712-8725 (2016).
  26. Zhu, X., Xie, W., Zhang, J., Strong, J. A., Zhang, J. -. M. Sympathectomy decreases pain behaviors and nerve regeneration by downregulating monocyte chemokine ccl2 in dorsal root ganglia in the rat tibial nerve crush model. Pain. 163 (1), e106-e120 (2022).
  27. Tonello, R., et al. Local sympathectomy promotes anti-inflammatory responses and relief of paclitaxel-induced mechanical and cold allodynia in mice. Anesthesiology. 132 (6), 1540-1553 (2020).
  28. Kostrzewa, R. M., Jacobowitz, D. M. Pharmacological actions of 6-hydroxydopamine. Pharmacol Rev. 26 (3), 199-288 (1974).
  29. Michel, P., Hefti, F. Toxicity of 6-hydroxydopamine and dopamine for dopaminergic neurons in culture. J Neuroscience Res. 26 (4), 428-435 (1990).
  30. Andrew, R., et al. The determination of hydroxydopamines and other trace amines in the urine of parkinsonian patients and normal controls. Neurochemical Res. 18, 1175-1177 (1993).
  31. Glinka, Y., Gassen, M., Youdim, M. Mechanism of 6-hydroxydopamine neurotoxicity. J Neural Transm Suppl. 5, 55-66 (1997).
  32. Treuting, P. M., Dintzis, S. M., Montine, K. S. . Comparative anatomy and histology: A mouse, rat, and human atlas. , (2017).
  33. Hweidi, S. A., Lee, S., Wolf, P. Effect of sympathectomy on microvascular anastomosis in the rat. Microsurgery. 6 (2), 9-96 (1985).
  34. Navarro, X., Kennedy, W. R. Sweat gland reinnervation by sudomotor regeneration after different types of lesions and graft repairs. Exp Neurol. 104 (3), 229-234 (1989).
  35. Gaudet, A. D., Popovich, P. G., Ramer, M. S. Wallerian degeneration: Gaining perspective on inflammatory events after peripheral nerve injury. J Neuroinflammation. 8 (1), 1-13 (2011).
  36. Babetto, E., et al. Targeting nmnat1 to axons and synapses transforms its neuroprotective potency in vivo. J Neuroscience. 30 (40), 13291-13304 (2010).
  37. Brumovsky, P. R. Dorsal root ganglion neurons and tyrosine hydroxylase-an intriguing association with implications for sensation and pain. Pain. 157 (2), 314 (2016).
  38. Tian, T., Harris, A., Owyoung, J., Sima, H., Ward, P. J. Conditioning electrical stimulation fails to enhance sympathetic axon regeneration. bioRxiv. , (2023).
  39. Tian, T., Ward, P. J. The ThCre: Mtmg mouse has sparse expression in the sympathetic nervous system. bioRxiv. , (2023).
  40. Ohman-Gault, L., Huang, T., Krimm, R. The transcription factor Phox2b distinguishes between oral and non-oral sensory neurons in the geniculate ganglion. J Comparative Neurol. 525 (18), 3935-3950 (2017).
  41. Pattyn, A., Morin, X., Cremer, H., Goridis, C., Brunet, J. -. F. The homeobox gene phox2b is essential for the development of autonomic neural crest derivatives. Nature. 399 (6734), 366-370 (1999).
  42. François, M., et al. Sympathetic innervation of the interscapular brown adipose tissue in mouse. Ann N Y Acad Sci. 1454 (1), 3-13 (2019).
This article has been published
Video Coming Soon
Keep me updated:

.

Cite This Article
Tian, T., Ward, P. J. Surgical Lumbar Sympathectomy in Mice. J. Vis. Exp. (209), e66821, doi:10.3791/66821 (2024).

View Video