Summary

Büyük Damar Aracılı Serebrovasküler Disfonksiyonu Modellemek için Farelerde Dolichoectaziyi İndüklemek İçin Görsel Bir Yaklaşım

Published: May 17, 2024
doi:

Summary

Vasküler demans ve Alzheimer hastalığı modellemesi için kullanılabilecek serebrovasküler disfonksiyonu araştırmak için bir model olarak farelerde kimyasal olarak indüklenen büyük kan damarı dilatasyonunu gösteriyoruz. Ayrıca, silikon kauçuk bileşiği enjekte ederek ve kan damarı boyutundaki değişiklikleri ölçmek için net bir görsel rehberlik sağlayarak damar sistemini görselleştirmeyi de gösteriyoruz.

Abstract

Kan-beyin (BBB), örneğin çevre ile seçici beyin dolaşımını düzenleyen, gerekli besinlerin beyinden aşırı amino asitlere veya toksinlere girmesine ve dışarı atılmasına izin veren çok önemli bir sistemdir. Vasküler demans (VaD) veya Alzheimer hastalığı (AD) gibi hastalıklarda BBB’nin nasıl tehlikeye atılabileceğini modellemek için araştırmacılar, damar dilatasyonunu modellemek için yeni yöntemler geliştirdiler. Bu hastalık durumlarında tehlikeye atılmış bir BBB zararlı olabilir ve BBB’nin düzensizliğine neden olabilir ve bu da beyin fonksiyonunu etkileyen istenmeyen ve patolojik sonuçlara yol açabilir. Elastaz kullanarak kan damarlarının dilatasyonunu indüklemek ve BBB’nin sıkı bağlantılarını (TJ) bozmak için doğrudan Cisterna magna’ya (CM) enjekte etmemizi sağlayan mevcut bir tekniği değiştirebildik. Bu yöntemle, tutarlı kan damarı dilatasyonu, azaltılmış mortalite veya daha iyi iyileşme ve bir silikon kauçuk bileşiği olan dolgu / opaklaştırıcı ajanın iyileştirilmesi, dilatasyon analizi için kan damarlarını etiketlemek için teslimat dahil olmak üzere önceki tekniklere göre çeşitli başarı ölçütleri görebildik. Bu modifiye minimal invaziv yöntem, farelerde enjeksiyondan 2 hafta ila 3 ay sonra büyük kan damarlarının sürekli genişlemesinde %19-32’lik bir artışla umut verici sonuçlar vermiştir. Bu iyileşme, yalnızca 2 haftalık işarette artan dilatasyon gösteren önceki çalışmalarla çelişmektedir. Ek veriler, 9,5 ay sonra bile genişlemenin devam ettiğini gösteriyor. Bu artış, elastaz ve araç enjekte edilen grubun kan damarlarının çapı karşılaştırılarak doğrulandı. Genel olarak, bu teknik, hayvan modelleri kullanarak merkezi sinir sistemini (CNS) etkileyen patolojik bozuklukları incelemek için değerlidir.

Introduction

Serebral kılcal damarları kaplayan mikrovasküler endotel hücreleri, beyin dolaşımına çevre ile neyin girdiğini veya neyin çıktığını düzenlemede çok önemli bir rol oynayan kan-beyin bariyerini (BBB)1 oluşturmak için ana bileşenlerdir. Sinir dokusu için gerekli olan temel besin maddelerinin BBB’ye girmesine izin verilirken, glutamat gibi bazı esansiyel amino asitler beyinden atılır, çünkü yüksek konsantrasyonlar beyin dokusunda kalıcı nörouyarıcı hasara neden olabilir2. Normal fizyolojik koşullar altında, BBB, albümin 3,4 ve protrombin gibi plazma proteinlerinin beyne girmesini sınırlar, çünkü bunlar zararlı etkilere sahip olabilir 5,6,7. Son olarak, BBB beyni, gıda veya çevreden gelen ksenobiyotikler gibi periferde dolaşan nörotoksinlerden korur1. Genel olarak, beyin dokularına verilen hasar geri döndürülemez ve düşük nörojenezseviyeleri 8 ile ilişkili yaşlanma, BBB’nin nörodejeneratif süreci hızlandıran herhangi bir faktörün korunmasında ve önlenmesinde önemini vurgulamaktadır.

Dolichoectasia’da (veya büyük kan damarı dilatasyonunda), damar elastikiyetinde bir azalma gözlenir, bu da damarların morfolojik değişikliklere uğramasına neden olur, böylece onları işlevsiz hale getirir9 ve beyindeki kan akışının azalmasına neden olur. Kan akışındaki bu azalma daha sonra oksijen ve glikoz kaynağını azaltır ve sonuçta reaktif astrositlerin10 aktivasyonu yoluyla BBB’ye zarar verir. Damarların iç elastin laminası dolikoektazi11’den hasar gördüğünde, anjiyogenez için vasküler endotelyal büyüme faktörünün (VEGF) tekrar tekrar uyarılması gereklidir. Bu, sızdıran damarların oluşumuna yol açabilir ve sonuçta kusurlu damarların gelişimi ile karakterize edilen patolojik anjiyogenez ile sonuçlanabilir12. Patolojik anjiyogenez sırasında, kan damarları kusurlu hale geldiğinde, sıkı bağlantı proteinlerini yukarı regüle ederek damar bütünlüğünü yeniden sağlamak için telafi edici bir mekanizma ortaya çıkar. Bununla birlikte, bu işlem, bir kan damarının yapısal bütünlüğü kaybolduğunda yanlışlıkla BBB’yi bozabilir13. Bu, BBB’yi daha da bozarak ve amiloid plak14 üretimini teşvik ederek ortaya çıkabilir. Ek olarak, çevreden sızıntı nöroinflamasyona15 neden olabilir, bu da nöronal dejenerasyon ve ardından hafıza kaybı ile sonuçlanır.

Yapısal olarak BBB’nin sağladığı koruma, ksenobiyotik ajanların kandan beyne girmesini önleyen sıkı bağlantılardan geçer. Belirli maddelerin beyne girmesine izin verirken, BBB bunu esas olarak iki ana süreç, pasif difüzyon veya belirli kanallar (iyon kanalları ve taşıyıcılar gibi) yoluyla yapar1. AD’de araştırmalar, işlevsiz bir vasküler sistemin durumun ilerlemesinde önemli bir rol oynadığını göstermiştir12,13. Amiloid-beta (Aβ) plaklarının oluşumu ve nörodejenerasyon, BBB’nin12,13 parçalanmasından ve serebral kan akışındaki16 bozukluklardan kaynaklanabilir. Vasküler demans tanısı alan ve AD17,18 tanısı alan yaşlı bireylerde serebral kan akımında azalma görülebilir. Disfonksiyonel bir serebral kan akışı (CBF) ile birlikte kan-beyin bariyerinin (BBB) hasar görmesi, periferik dolaşımdan yabancı maddelerin sızması ile birlikte beyinde Aβ konsantrasyonunun artmasına katkıda bulunabilir19.

AH ve vasküler demans (VaD) gibi nörolojik hastalıkların patogenezini araştırmak için, hastalığı tekrarlamak için modeller geliştirilmiştir. İn vitro modeller yaygın olarak kullanılmaktadır, ancak karışık hücre popülasyonu gibi kapsamlı hastalık modellemesi için biyolojik ortamdan yoksundur, bu nedenle in vivo modellerin önemini gerektirir. Fareler, hastalıkta insan benzeri özellikler (örneğin patoloji) oluşturmada genetik manipülasyon kolaylığı nedeniyle yaygın olarak kullanılmaktadır. Şimdiye kadar kaydedilen ilerlemeyle birlikte, büyük damar dilatasyonu ve bunların AH’deki rolü gibi hastalık fenotiplerini taklit etmek için geliştirilmiş modellere hala ihtiyaç duyulmaktadır. Bu amaçla, bir fırsat gördük ve farelerin Cisterna magna’sına elastaz enjeksiyonunu içeren bir tekniği değiştirdik20,21. Elastaz, bağ dokusunda22 ve çevredeki sıkı bağlantılarda23 elastini parçaladığı gösterilen bir enzimdir. Cisterna magna, beyindeki en büyük kan damarı olan Willis çemberinin hemen üzerinde yer alması nedeniyle enjeksiyon noktası olarak seçildi. Cisterna magna’ya elastaz enjekte ederek, sıkı bağlantıları parçalayarak ve kan damarlarının genişlemesini indükleyerek (Willis çemberi) BBB ve kan damarlarını tehlikeye atabiliriz24,25. AD’nin vasküler bileşeninin patogenezinin daha iyi anlaşılması için bu tekniğin bir AD fare patoloji modelinin kullanımıyla birleştirilmesi, bu iki farklı patoloji arasındaki karmaşık etkileşimler ve etkiler hakkında değerli bilgiler sağlayabilir.

Önceki çalışmalar, hastaların tipik olarak karışık demans olarak adlandırılan bir durum olan AD ve VaD’nin hem patolojik özelliklerini sergilediği durumları göstermiştir26,27. Bu nedenle, her iki durum arasındaki birbirine bağlı mekanizmaları anlamak, bu nörodejeneratif bozuklukların ilerlemesi ve tezahürü hakkında daha kapsamlı bir bakış açısı sunabilir, altta yatan mekanizmaları ve potansiyel terapötik stratejileri anlamamızı geliştirir. Bu amaçla, vasküler değişiklikleri tanımlamak için bir AD patoloji fare modelinde (AppNL-F) elastaz uygulamasını gösteriyoruz.

Protocol

Bu çalışma için insan amiloid plağını fizyolojik düzeyde eksprese eden AppNL-Ffareleri (3 aylık) kullanıldı, ancak bu sistem herhangi bir kemirgen modelinde kullanılabilir. Tüm hayvan prosedürleri, CAMH Hayvan Bakım Komitesi (Protokol # 843) tarafından onaylandı ve Kanada Hayvan Bakımı Konseyi yönergelerinin etik standartlarına uygun oldu. Fareler şirket içinde yetiştirildi ve yem ve suya ad libitum erişimi ile 12 saatlik bir aydınlık-karanlık döngüsünde tutuldu. <p …

Representative Results

Fareyi stereotaksik çerçeveye dikkatlice yerleştirdikten ve kasları diseksiyon ettikten sonra Cisterna magna’yı kafatasının oksipital bölgesinin altına yerleştirmede başarılı olduk. Ters üçgeni andıran ve sarı renkle vurgulanan bu anatomik yapı, kafatasının tabanının altında yer almaktadır (Şekil 1). Hassasiyeti sağlamak ve beyin dokusuna herhangi bir zarar gelmesini önlemek için, Hamilton şırınga eğiminin 1-2 mm’si Cisterna magna’ya nazikçe yerleştirildi.</…

Discussion

Bu makale, farelerin Cisterna magna’sına elastaz enjeksiyonu için kesin ve basit bir yaklaşım sağlayan serebrovasküler dilatasyon için geliştirilmiş bir protokolü göstermektedir. Bu anatomik nokta, beyin omurilik sıvısına doğrudan bir geçit görevi görür ve farklı nörolojik hastalıkların araştırılması için değerli bir yol sunar. Bu modifiye tekniğin ana avantajlarından biri, farelerin Cisterna magna’sına tek bir doz elastaz enjekte edilmesinin, tekrarlanabilir enjeksiyona veya bir kanül im…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Bu çalışma, ameliyatlara yardımcı olma konusunda destek sağlayan Stephanie Tam’ın paha biçilmez katkılarıyla mümkün olmuştur. Kendisine yardımları için en içten şükranlarımızı sunarız. Bu araştırmayı desteklemek için Ulusal Sağlık Enstitüleri (AG066162).

Materials

23 G catheter University Medstore 2546-CABD305145 Needed for perfusion  (https://www.uoftmedstore.com/index.sz)
Absolute ethanol University Medstore https://www.uoftmedstore.com/index.sz For removing the microfil
Betadine scrub # https://www.pittsborofeed.com/products/betadine-surgical-scrub Sterilization
Betadine solution Amazon https://www.amazon.ca/Povidone-Iodine-10-Topical-Solution-100ml/dp/B09DTKJGHW Sterilization
Bupivacaine Provided by animal facility N/A Analgesic
Clippers BrainTree Scientific Inc CLP-41590 Shave fur
Cotton Q-tip University Medstore 1962 For surgery (https://www.uoftmedstore.com/index.sz)
Elastase Sigma-aldrich  E7885 Used for the dilatation of blood vessel
Ethanol University Medstore 39752-P016-EAAN Sterilization (https://www.uoftmedstore.com/index.sz)
Goat anti-mouse 568 Invitrogen A11004 For staining mature neurons
Graphpad prism 10 Graphpad prism 10 https://www.graphpad.com/ Statistical analysis software
Hamilton syringe Sigma-aldrich 28614-U Injection elastase
Heat pad Amazon https://www.amazon.ca/iPower-Temperature-Controller-Terrarium-Amphibians/dp/B08L4DBFFZ Maintain body temperature
ImageJ software Fiji Imagej software imagej.net (USA) Image analysis software
Induction chamber Provided by animal facility N/A Anesthesia induction
Metacam Provided by animal facility N/A Analgesic
Methyl salicylate Sigma-aldrich M6752 For removing the microfil
Microfil Flow Tech, Carver, Massachusetts https://www.flowtech-inc.com/order/  Dye (yellow)
Mouse monoclonal anti-NeuN Millipore Sigma MAB377 For staining mature neurons
Olympus VS200 slide scanner and VSI software. Olympus Life Science https://www.olympus-lifescience.com/en/downloads/detail-iframe/?0[downloads][id]=847254104 Imaging software
Paraformaldehyde University Medstore PAR070.1 For protein fixation  (https://www.uoftmedstore.com/index.sz)
Perfusion pump VWR International https://pr.vwr.com/store/product/4787969/vwr-variable-speed-peristaltic-pumps Needed for perfusion
Scalpel University Medstore 2580-M90-10 For surgery (https://www.uoftmedstore.com/index.sz)
Stereotaxic Provided by animal facility N/A So secure the animal for surgery
Surgical scissor University Medstore 22751-A9-240 For surgery (https://www.uoftmedstore.com/index.sz)
Surgical tape University Medstore https://www.amazon.ca/3M-Micropore-Tape-1530-2-Rolls/dp/B0082A9GS2 Secure the animal on the diaper
Sutures University Medstore 2297-VS881 For surgery (https://www.uoftmedstore.com/index.sz)
X2 tweezers University Medstore 7731-A10-612 For surgery (https://www.uoftmedstore.com/index.sz)

References

  1. Kadry, H., Noorani, B., Cucullo, L. A blood-brain barrier overview on structure, function, impairment, and biomarkers of integrity. Fluids Barriers CNS. 17 (1), 69 (2020).
  2. Sethi, B., Kumar, V., Mahato, K., Coulter, D. W., Mahato, R. I. Recent advances in drug delivery and targeting to the brain. J Control Release. 350, 668-687 (2022).
  3. Vagnucci, A. H., Li, W. W. Alzheimer’s disease and angiogenesis. Lancet. 361 (9357), 605-608 (2003).
  4. Banks, W. A., et al. Lipopolysaccharide-induced blood-brain barrier disruption: roles of cyclooxygenase, oxidative stress, neuroinflammation, and elements of the neurovascular unit. J Neuroinflamm. 12, 223 (2015).
  5. Archie, S. R., Shoyaib, A. A., Cucullo, L. Blood-brain barrier dysfunction in CNS disorders and putative therapeutic targets: an overview. Pharmaceutics. 13 (11), 1779 (2021).
  6. Jefferies, W. A., Price, K. A., Biron, K. E., Fenninger, F., Pfeifer, C. G., Dickstein, D. L. Adjusting the compass: new insights into the role of angiogenesis in Alzheimer’s disease. Alzheimers Res Ther. 5 (6), 64 (2013).
  7. Kook, S. Y., Seok-Hong, H., Moon, M., Mook-Jung, I. Disruption of blood-brain barrier in Alzheimer disease pathogenesis. Tissue Barriers. 1 (2), e23993 (2013).
  8. Kempermann, G. Activity dependency and aging in the regulation of adult neurogenesis. Cold Spring Harb Perspect Biol. 7 (11), a018929 (2015).
  9. Del Brutto, V. J., Ortiz, J. G., Biller, J. Intracranial arterial dolichoectasia. Front Neurol. 8, 344 (2017).
  10. de la Torre, J. C., Mussivand, T. Can disturbed brain microcirculation cause Alzheimer’s disease. Neurol Res. 15 (3), 146-153 (1993).
  11. Gutierrez, J., Sacco, R. L., Wright, C. B. Dolichoectasia-an evolving arterial disease. Nat Rev Neurol. 7 (1), 41-50 (2011).
  12. Desai, B. S., Schneider, J. A., Li, J. L., Carvey, P. M., Hendey, B. Evidence of angiogenic vessels in Alzheimer’s disease. J Neural Transm. 116 (5), 587-597 (2009).
  13. Biron, K. E., Dickstein, D. L., Gopaul, R., Jefferies, W. A. Amyloid triggers extensive cerebral angiogenesis causing blood brain barrier permeability and hypervascularity in Alzheimer’s disease. PLoS One. 6 (8), e23789 (2011).
  14. Zenaro, E., Piacentino, G., Constantin, G. The blood-brain barrier in Alzheimer’s disease. Neurobiol Dis. 107, 41-56 (2017).
  15. Brandl, S., Reindl, M. Blood-Brain barrier breakdown in neuroinflammation: current in vitro models. Int J Mol Sci. 24 (16), 12699 (2023).
  16. Austin, B. P., et al. Effects of hypoperfusion in Alzheimer’s disease. J Alzheimers Dis. 26, 123-133 (2011).
  17. Jagust, W. J., Budinger, T. F., Reed, B. R. The diagnosis of dementia with single photon emission computed tomography. Arch Neurol. 44 (3), 258-262 (1987).
  18. Schuff, N., et al. Cerebral blood flow in ischemic vascular dementia and Alzheimer’s disease, measured by arterial spin-labeling magnetic resonance imaging. Alzheimers Dement. 5 (6), 454-462 (2009).
  19. Singh, C., Pfeifer, C. G., Jefferies, W. A. Pathogenic Angiogenic Mechanisms in Alzheimer’s Disease. Physiologic and Pathologic Angiogenesis – Signaling Mechanisms and Targeted Therapy. , (2017).
  20. Dai, D., Kadirvel, R., Rezek, I., Ding, Y. H., Lingineni, R., Kallmes, D. Elastase-induced intracranial dolichoectasia model in mice. Neurosurgery. 76 (3), 337-343 (2015).
  21. Liu, F. X., et al. Modified protocol for establishment of intracranial arterial Dolichoectasia model by injection of elastase into cerebellomedullary cistern in mice. Front Neurol. 13, 860541 (2022).
  22. Lee, A. Y., Han, B., Lamm, S. D., Fierro, C. A., Han, H. Effects of elastin degradation and surrounding matrix support on artery stability. Am J Physiol Heart Circ Physiol. 302 (4), H873-H884 (2012).
  23. Li, Y., et al. The role of elastase in corneal epithelial barrier dysfunction caused by Pseudomonas aeruginosa exoproteins. Invest Ophthalmol Vis Sci. 62 (9), 7 (2021).
  24. Temesvári, P., Ábrahám, C. S., Gellén, J., Speer, C. P., Kovács, J., Megyeri, P. Elastase given intracisternally opens blood-brain barrier in newborn piglets. Biol Neonatol. 67 (1), 59-63 (1995).
  25. Takata, F., et al. Elevated permeability of the blood-brain barrier in mice intratracheally administered porcine pancreatic elastase. J Pharmacol Sci. 129 (1), 78-81 (2015).
  26. Hanyu, H. Diagnosis and treatment of mixed dementia. Brain Nerve. 64 (9), 1047-1055 (2012).
  27. Chui, H. C., Ramirez-Gomez, L. Clinical and imaging features of mixed alzheimer and vascular pathologies. Alzheimers Res Ther. 7 (1), 21 (2015).
  28. Saito, T., et al. Single app knock-in mouse models of alzheimer’s disease. Nat Neurosci. 17 (5), 661-663 (2014).
  29. Dobrin, P. B., Canfield, T. R. Elastase, collagenase, and the biaxial elastic properties of dog carotid artery. Am J Physiol. 247, H124-H131 (1984).
  30. Wagenseil, J. E., Ciliberto, C. H., Knutsen, R. H., Levy, M. A., Kovacs, A., Mecham, R. P. Reduced vessel elasticity alters cardiovascular structure and function in newborn mice. Circ Res. 104 (10), 1217-1224 (2009).
This article has been published
Video Coming Soon
Keep me updated:

.

Cite This Article
Simpson, D., Morrone, C. D., Wear, D., Gutierrez, J., Yu, W. H. A Visual Approach for Inducing Dolichoectasia in Mice to Model Large Vessel-Mediated Cerebrovascular Dysfunction. J. Vis. Exp. (207), e66792, doi:10.3791/66792 (2024).

View Video