Summary

Uma abordagem visual para induzir dolicoectasia em camundongos para modelar disfunção cerebrovascular mediada por grandes vasos

Published: May 17, 2024
doi:

Summary

Demonstramos a indução química da dilatação de grandes vasos sanguíneos em camundongos como um modelo para investigar a disfunção cerebrovascular, que pode ser usada para modelagem de demência vascular e doença de Alzheimer. Também demonstramos a visualização da vasculatura injetando composto de borracha de silicone e fornecendo orientação visual clara para medir as mudanças no tamanho dos vasos sanguíneos.

Abstract

O sangue-cérebro (BBB) é um sistema crucial que regula a circulação cerebral seletiva com a periferia, por exemplo, permitindo que os nutrientes necessários entrem e expulsem aminoácidos ou toxinas em excesso do cérebro. Para modelar como a BHE pode ser comprometida em doenças como demência vascular (DV) ou doença de Alzheimer (DA), os pesquisadores desenvolveram novos métodos para modelar a dilatação dos vasos. Uma BHE comprometida nesses estados de doença pode ser prejudicial e resultar na desregulação da BHE, levando a consequências adversas e patológicas que afetam a função cerebral. Conseguimos modificar uma técnica existente que nos permitiu injetar diretamente na Cisterna magna (CM) para induzir a dilatação dos vasos sanguíneos usando elastase e interromper as junções apertadas (TJ) da BHE. Com esse método, pudemos ver várias métricas de sucesso em relação às técnicas anteriores, incluindo dilatação consistente dos vasos sanguíneos, redução da mortalidade ou recuperação aprimorada e melhoria do agente de enchimento/opacificação, um composto de borracha de silicone, entrega para rotulagem de vasos sanguíneos para análise de dilatação. Este método minimamente invasivo modificado teve resultados promissores, com um aumento de 19% a 32% na dilatação sustentada de grandes vasos sanguíneos em camundongos de 2 semanas a 3 meses após a injeção. Essa melhora contrasta com estudos anteriores, que mostraram aumento da dilatação apenas na marca de 2 semanas. Dados adicionais sugerem expansão sustentada mesmo após 9,5 meses. Esse aumento foi confirmado comparando o diâmetro dos vasos sanguíneos da elastase e do grupo injetado no veículo. No geral, essa técnica é valiosa para estudar distúrbios patológicos que afetam o sistema nervoso central (SNC) usando modelos animais.

Introduction

As células endoteliais microvasculares que revestem os capilares cerebrais são os principais componentes para a formação da barreira hematoencefálica (BHE)1, que desempenha um papel crucial na regulação do que entra ou sai da circulação cerebral com a periferia. Os nutrientes essenciais necessários para o tecido nervoso podem entrar na BHE, enquanto alguns aminoácidos essenciais, como o glutamato, são expelidos do cérebro, pois altas concentrações podem causar danos neuroexcitatórios permanentesao tecido cerebral. Em condições fisiológicas normais, a BHE limita a entrada no cérebro de proteínas plasmáticas como albumina 3,4 e protrombina, uma vez que podem ter efeitos prejudiciais 5,6,7. Finalmente, o BBB protege o cérebro de neurotoxinas que circulam na periferia, como xenobióticos de alimentos ou do meio ambiente1. No geral, os danos aos tecidos cerebrais são irreversíveis, e o envelhecimento que se correlaciona com baixos níveis de neurogênese8 destaca a importância da BHE na proteção e prevenção de quaisquer fatores que acelerem o processo neurodegenerativo.

Na dolicoectasia (ou dilatação dos grandes vasos sanguíneos), observa-se uma diminuição na elasticidade dos vasos, o que resulta em alterações morfológicas nos vasos, tornando-os disfuncionais9 e levando à redução do fluxo sanguíneo no cérebro. Essa redução no fluxo sanguíneo subsequentemente diminui o suprimento de oxigênio e glicose, desencadeando danos à BHE por meio da ativação de astrócitos reativos10. Quando a lâmina de elastina interna dos vasos é danificada por dolicoectasia11, a estimulação repetida do fator de crescimento endotelial vascular (VEGF) é necessária para a angiogênese. Isso pode levar à formação de vasos permeáveis e, em última instância, resultar em angiogênese patológica, caracterizada pelo desenvolvimento de vasos defeituosos12. Durante a angiogênese patológica, quando os vasos sanguíneos se tornam defeituosos, um mecanismo compensatório parece restaurar a integridade do vaso regulando positivamente as proteínas da junção apertada. No entanto, esse processo pode inadvertidamente interromper a BHE quando a integridade estrutural de um vaso sanguíneo é perdida13. Isso pode ocorrer por meio de uma maior interrupção da BHE e da promoção da produção de placa amilóide14. Além disso, o vazamento da periferia pode causar neuroinflamação15, o que resulta em degeneração neuronal e subsequente perda de memória.

Estruturalmente, a proteção que o BBB fornece é através das junções apertadas que impedem que os agentes xenobióticos entrem no sangue no cérebro. Ao permitir que certas substâncias entrem no cérebro, o BBB o faz principalmente por meio de dois processos principais, difusão passiva ou canais específicos (como canais iônicos e transportadores)1. Na DA, a pesquisa demonstrou que um sistema vascular disfuncional desempenha um papel significativo na progressão da condição12,13. A formação de placas beta-amiloide (Aβ) e a neurodegeneração podem resultar da quebra da BHE12,13 e de distúrbios no fluxo sanguíneo cerebral16. A redução do fluxo sanguíneo cerebral pode ser observada em idosos com diagnóstico de demência vascular e DA17,18. Danos à barreira hematoencefálica (BHE), juntamente com um fluxo sanguíneo cerebral disfuncional (FSC), podem contribuir para o aumento da produção da concentração de Aβ no cérebro, acompanhada pela infiltração de materiais estranhos da circulação periférica19.

Para investigar a patogênese de doenças neurológicas como DA e demência vascular (DV), modelos são desenvolvidos para replicar a doença. Os modelos in vitro são amplamente utilizados, mas carecem do ambiente biológico para modelagem extensiva de doenças, como a população de células mistas, necessitando assim da importância dos modelos in vivo. Os camundongos são comumente usados devido à sua facilidade de manipulação genética na geração de propriedades semelhantes às humanas (por exemplo, patologia) na doença. Com a progressão que foi feita até agora, ainda há uma necessidade contínua de modelos aprimorados para emular fenótipos de doenças, como dilatação de grandes vasos e seu papel na DA. Para tanto, vimos uma oportunidade e modificamos uma técnica que envolvia a injeção de elastase na Cisterna magna de camundongos20,21. A elastase é uma enzima que demonstrou quebrar a elastina no tecido conjuntivo22 e nas junções apertadas circundantes23. A Cisterna magna foi escolhida como ponto de injeção por estar localizada diretamente acima do círculo de Willis, o maior vaso sanguíneo do cérebro. Ao injetar elastase na Cisterna magna, podemos comprometer a BHE e os vasos sanguíneos, rompendo as junções apertadas e induzindo a dilatação dos vasos sanguíneos (círculo de Willis)24,25. A combinação dessa técnica com o uso de um modelo de patologia de camundongo com DA, para melhorar a compreensão da patogênese do componente vascular da DA, pode fornecer informações valiosas sobre as complexas interações e influências entre essas duas patologias distintas.

Estudos anteriores demonstraram casos em que os pacientes apresentam características patológicas de DA e DV, uma condição tipicamente referida como demência mista26,27. Assim, entender os mecanismos interconectados entre as duas condições pode oferecer uma perspectiva mais abrangente sobre a progressão e manifestação desses distúrbios neurodegenerativos, aumenta nossa compreensão dos mecanismos subjacentes e das possíveis estratégias terapêuticas. Para isso, demonstramos a aplicação da elastase em um modelo de camundongo com patologia da DA (APPNL-F) para identificar alterações vasculares.

Protocol

Camundongos AppNL-F(3 meses de idade) que expressam placa amilóide humana em nível fisiológico foram usados para este estudo, embora este sistema possa ser usado com qualquer modelo de roedor. Todos os procedimentos em animais foram aprovados pelo Comitê de Cuidados com Animais do CAMH (Protocolo # 843) e estavam de acordo com os padrões éticos das diretrizes do Conselho Canadense de Cuidados com Animais. Os camundongos foram criados internamente e mantidos em um ciclo claro-escuro de 12 horas com acesso…

Representative Results

Conseguimos localizar a Cisterna magna abaixo da região occipital do crânio depois de posicionar cuidadosamente o camundongo na estrutura estereotáxica e dissecar os músculos. Essa estrutura anatômica, semelhante a um triângulo invertido e destacada em amarelo, está situada abaixo da base do crânio (Figura 1). Para garantir a precisão e evitar qualquer dano ao tecido cerebral, 1-2 mm do bisel da seringa Hamilton foram inseridos suavemente na Cisterna magna. <p class="jove_conten…

Discussion

Este artigo demonstra um protocolo aprimorado para dilatação cerebrovascular, fornecendo uma abordagem precisa e direta para injeção de elastase na Cisterna magna de camundongos. Este ponto anatômico serve como uma porta de entrada direta para o líquido cefalorraquidiano, oferecendo um caminho valioso para a investigação de diferentes doenças neurológicas. Uma das principais vantagens desta técnica modificada é que a injeção de uma dose única de elastase na Cisterna magna de camundongos foi capaz de causar…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Este estudo foi possível graças às contribuições inestimáveis de Stephanie Tam, que forneceu suporte no auxílio nas cirurgias. Estendemos nossa sincera gratidão por sua ajuda. Os Institutos Nacionais de Saúde (AG066162) pelo apoio a esta pesquisa.

Materials

23 G catheter University Medstore 2546-CABD305145 Needed for perfusion  (https://www.uoftmedstore.com/index.sz)
Absolute ethanol University Medstore https://www.uoftmedstore.com/index.sz For removing the microfil
Betadine scrub # https://www.pittsborofeed.com/products/betadine-surgical-scrub Sterilization
Betadine solution Amazon https://www.amazon.ca/Povidone-Iodine-10-Topical-Solution-100ml/dp/B09DTKJGHW Sterilization
Bupivacaine Provided by animal facility N/A Analgesic
Clippers BrainTree Scientific Inc CLP-41590 Shave fur
Cotton Q-tip University Medstore 1962 For surgery (https://www.uoftmedstore.com/index.sz)
Elastase Sigma-aldrich  E7885 Used for the dilatation of blood vessel
Ethanol University Medstore 39752-P016-EAAN Sterilization (https://www.uoftmedstore.com/index.sz)
Goat anti-mouse 568 Invitrogen A11004 For staining mature neurons
Graphpad prism 10 Graphpad prism 10 https://www.graphpad.com/ Statistical analysis software
Hamilton syringe Sigma-aldrich 28614-U Injection elastase
Heat pad Amazon https://www.amazon.ca/iPower-Temperature-Controller-Terrarium-Amphibians/dp/B08L4DBFFZ Maintain body temperature
ImageJ software Fiji Imagej software imagej.net (USA) Image analysis software
Induction chamber Provided by animal facility N/A Anesthesia induction
Metacam Provided by animal facility N/A Analgesic
Methyl salicylate Sigma-aldrich M6752 For removing the microfil
Microfil Flow Tech, Carver, Massachusetts https://www.flowtech-inc.com/order/  Dye (yellow)
Mouse monoclonal anti-NeuN Millipore Sigma MAB377 For staining mature neurons
Olympus VS200 slide scanner and VSI software. Olympus Life Science https://www.olympus-lifescience.com/en/downloads/detail-iframe/?0[downloads][id]=847254104 Imaging software
Paraformaldehyde University Medstore PAR070.1 For protein fixation  (https://www.uoftmedstore.com/index.sz)
Perfusion pump VWR International https://pr.vwr.com/store/product/4787969/vwr-variable-speed-peristaltic-pumps Needed for perfusion
Scalpel University Medstore 2580-M90-10 For surgery (https://www.uoftmedstore.com/index.sz)
Stereotaxic Provided by animal facility N/A So secure the animal for surgery
Surgical scissor University Medstore 22751-A9-240 For surgery (https://www.uoftmedstore.com/index.sz)
Surgical tape University Medstore https://www.amazon.ca/3M-Micropore-Tape-1530-2-Rolls/dp/B0082A9GS2 Secure the animal on the diaper
Sutures University Medstore 2297-VS881 For surgery (https://www.uoftmedstore.com/index.sz)
X2 tweezers University Medstore 7731-A10-612 For surgery (https://www.uoftmedstore.com/index.sz)

References

  1. Kadry, H., Noorani, B., Cucullo, L. A blood-brain barrier overview on structure, function, impairment, and biomarkers of integrity. Fluids Barriers CNS. 17 (1), 69 (2020).
  2. Sethi, B., Kumar, V., Mahato, K., Coulter, D. W., Mahato, R. I. Recent advances in drug delivery and targeting to the brain. J Control Release. 350, 668-687 (2022).
  3. Vagnucci, A. H., Li, W. W. Alzheimer’s disease and angiogenesis. Lancet. 361 (9357), 605-608 (2003).
  4. Banks, W. A., et al. Lipopolysaccharide-induced blood-brain barrier disruption: roles of cyclooxygenase, oxidative stress, neuroinflammation, and elements of the neurovascular unit. J Neuroinflamm. 12, 223 (2015).
  5. Archie, S. R., Shoyaib, A. A., Cucullo, L. Blood-brain barrier dysfunction in CNS disorders and putative therapeutic targets: an overview. Pharmaceutics. 13 (11), 1779 (2021).
  6. Jefferies, W. A., Price, K. A., Biron, K. E., Fenninger, F., Pfeifer, C. G., Dickstein, D. L. Adjusting the compass: new insights into the role of angiogenesis in Alzheimer’s disease. Alzheimers Res Ther. 5 (6), 64 (2013).
  7. Kook, S. Y., Seok-Hong, H., Moon, M., Mook-Jung, I. Disruption of blood-brain barrier in Alzheimer disease pathogenesis. Tissue Barriers. 1 (2), e23993 (2013).
  8. Kempermann, G. Activity dependency and aging in the regulation of adult neurogenesis. Cold Spring Harb Perspect Biol. 7 (11), a018929 (2015).
  9. Del Brutto, V. J., Ortiz, J. G., Biller, J. Intracranial arterial dolichoectasia. Front Neurol. 8, 344 (2017).
  10. de la Torre, J. C., Mussivand, T. Can disturbed brain microcirculation cause Alzheimer’s disease. Neurol Res. 15 (3), 146-153 (1993).
  11. Gutierrez, J., Sacco, R. L., Wright, C. B. Dolichoectasia-an evolving arterial disease. Nat Rev Neurol. 7 (1), 41-50 (2011).
  12. Desai, B. S., Schneider, J. A., Li, J. L., Carvey, P. M., Hendey, B. Evidence of angiogenic vessels in Alzheimer’s disease. J Neural Transm. 116 (5), 587-597 (2009).
  13. Biron, K. E., Dickstein, D. L., Gopaul, R., Jefferies, W. A. Amyloid triggers extensive cerebral angiogenesis causing blood brain barrier permeability and hypervascularity in Alzheimer’s disease. PLoS One. 6 (8), e23789 (2011).
  14. Zenaro, E., Piacentino, G., Constantin, G. The blood-brain barrier in Alzheimer’s disease. Neurobiol Dis. 107, 41-56 (2017).
  15. Brandl, S., Reindl, M. Blood-Brain barrier breakdown in neuroinflammation: current in vitro models. Int J Mol Sci. 24 (16), 12699 (2023).
  16. Austin, B. P., et al. Effects of hypoperfusion in Alzheimer’s disease. J Alzheimers Dis. 26, 123-133 (2011).
  17. Jagust, W. J., Budinger, T. F., Reed, B. R. The diagnosis of dementia with single photon emission computed tomography. Arch Neurol. 44 (3), 258-262 (1987).
  18. Schuff, N., et al. Cerebral blood flow in ischemic vascular dementia and Alzheimer’s disease, measured by arterial spin-labeling magnetic resonance imaging. Alzheimers Dement. 5 (6), 454-462 (2009).
  19. Singh, C., Pfeifer, C. G., Jefferies, W. A. Pathogenic Angiogenic Mechanisms in Alzheimer’s Disease. Physiologic and Pathologic Angiogenesis – Signaling Mechanisms and Targeted Therapy. , (2017).
  20. Dai, D., Kadirvel, R., Rezek, I., Ding, Y. H., Lingineni, R., Kallmes, D. Elastase-induced intracranial dolichoectasia model in mice. Neurosurgery. 76 (3), 337-343 (2015).
  21. Liu, F. X., et al. Modified protocol for establishment of intracranial arterial Dolichoectasia model by injection of elastase into cerebellomedullary cistern in mice. Front Neurol. 13, 860541 (2022).
  22. Lee, A. Y., Han, B., Lamm, S. D., Fierro, C. A., Han, H. Effects of elastin degradation and surrounding matrix support on artery stability. Am J Physiol Heart Circ Physiol. 302 (4), H873-H884 (2012).
  23. Li, Y., et al. The role of elastase in corneal epithelial barrier dysfunction caused by Pseudomonas aeruginosa exoproteins. Invest Ophthalmol Vis Sci. 62 (9), 7 (2021).
  24. Temesvári, P., Ábrahám, C. S., Gellén, J., Speer, C. P., Kovács, J., Megyeri, P. Elastase given intracisternally opens blood-brain barrier in newborn piglets. Biol Neonatol. 67 (1), 59-63 (1995).
  25. Takata, F., et al. Elevated permeability of the blood-brain barrier in mice intratracheally administered porcine pancreatic elastase. J Pharmacol Sci. 129 (1), 78-81 (2015).
  26. Hanyu, H. Diagnosis and treatment of mixed dementia. Brain Nerve. 64 (9), 1047-1055 (2012).
  27. Chui, H. C., Ramirez-Gomez, L. Clinical and imaging features of mixed alzheimer and vascular pathologies. Alzheimers Res Ther. 7 (1), 21 (2015).
  28. Saito, T., et al. Single app knock-in mouse models of alzheimer’s disease. Nat Neurosci. 17 (5), 661-663 (2014).
  29. Dobrin, P. B., Canfield, T. R. Elastase, collagenase, and the biaxial elastic properties of dog carotid artery. Am J Physiol. 247, H124-H131 (1984).
  30. Wagenseil, J. E., Ciliberto, C. H., Knutsen, R. H., Levy, M. A., Kovacs, A., Mecham, R. P. Reduced vessel elasticity alters cardiovascular structure and function in newborn mice. Circ Res. 104 (10), 1217-1224 (2009).
This article has been published
Video Coming Soon
Keep me updated:

.

Cite This Article
Simpson, D., Morrone, C. D., Wear, D., Gutierrez, J., Yu, W. H. A Visual Approach for Inducing Dolichoectasia in Mice to Model Large Vessel-Mediated Cerebrovascular Dysfunction. J. Vis. Exp. (207), e66792, doi:10.3791/66792 (2024).

View Video