Этот протокол описывает выполнение краниэктомии с помощью высокоскоростного пневматического сверла на 3-месячной свинье датской породы ландрейс. Доступ осуществляется через лобную кость и открывает вентральную твердую мозговую оболочку и нижележащие полушария головного мозга. Эта процедура позволяет получить доступ к большой части мозга свиньи.
Использование свиней в качестве экспериментальной животной модели особенно актуально в исследованиях в области нейробиологии, поскольку центральная нервная система (ЦНС) свиньи и человека имеют много общих функциональных и архитектурных свойств. Следовательно, ожидается, что свиньи будут играть все более важную роль в будущих исследованиях различных неврологических заболеваний. Здесь описывается метод выполнения передней краниэктомии через лобную кость свиньи. После разреза по средней линии и последующего обнажения лобной кости свиньи используются анатомические ориентиры, чтобы обеспечить оптимальное расположение краниэктомии. Путем тщательного и постепенного утончения лобной кости с помощью закругленного сверла достигается прямоугольное отверстие в твердую мозговую оболочку и нижележащие полушария головного мозга. Представленный метод требует определенных хирургических материалов, в том числе пневматического высокоскоростного сверла, и некоторой степени хирургического опыта. Потенциальные осложнения включают непреднамеренное поражение твердой мозговой оболочки или дорсального сагиттального синуса. Тем не менее, метод прост, экономит время и предлагает высокую степень воспроизводимости для исследователей. При правильном выполнении этот метод подвергает воздействию большую часть непораженного мозга свиньи для проведения различных нейромониторинга или анализов.
Как правило, животные модели используются, когда практические и/или этические ограничения запрещают использование пациентов для изучения заболеваний или тестирования хирургических методов. Новые животные модели, как правило, создаются для того, чтобы обеспечить новые знания, имеющие трансляционную ценность для условий жизни человека. Грызуны часто используются по практическим и финансовым соображениям, но они имеют ограниченную трансляционную ценность для человека, особенно из-за существенных анатомических различий1. Свиньи, однако, имеют ряд преимуществ по сравнению с грызунами. Мало того, что свиньи имеют несколько общих с человеком ключевых анатомических, физиологических, метаболических и генетических особенностей, но и размер систем органов свиньи может быть сопоставим по весу, чтобы напоминать человеческие органы. Это дает свиньям уникальную роль среди хирургических моделей животных и в процедурном обучении4. Несмотря на то, что использование свиных моделей требует определенных практических и финансовых возможностей по сравнению с использованием грызунов, свиньи предлагают как финансовый, так и этически более приемлемый вариант по сравнению с использованием нечеловекообразных приматов.
Мозг свиньи представляет особый интерес в исследованиях трансляционной нейробиологии. Во-первых, архитектура мозга свиньи похожа на архитектуру мозга человека, поскольку оба мозга являются преимущественно белым веществом и гирецефалическими 3,5,6. Во-вторых, больший размер мозга у свиней по сравнению с грызунами позволяет использовать хирургическое оборудование и различные методы визуализации, эквивалентные тем, которые используются вклинических условиях. Следовательно, впоследние десятилетия в исследованиях в области нейробиологии широко используются различные модели свиней9. Однако большинство таких моделей ЦНС свиней требуют прямого анализа ткани мозга, который может быть получен различными способами (например, имплантация катетеров или электродов, биопсия тканей и т. д.). 10. Поскольку большинство этих методов требуют некоторой степени инструментализации и прямого доступа к мозгу, необходимо рассмотреть различные подходы к хирургическому доступу.
Этот метод включает в себя выполнение передней краниэктомии через лобную кость 3-месячной самке свиньи датской породы ландрас. Общая цель данной рукописи состоит в том, чтобы описать метод обнажения большой части вентрального мозга свиньи через краниэктомию с помощью пневматического высокоскоростного сверла. Первым делом необходимо расположить объект в подходящем положении с поднятой головой. Поскольку черепная коробка свиньи сильно отличается от черепной коробки человека, второй шаг включает в себя планирование установки черепа с использованием различных анатомических ориентиров. Третьим шагом является доступ к основной твердой мозговой оболочке, охватывающей оба полушария, не повреждая ее.
Продемонстрированная процедура включает в себя несколько критически важных этапов. Во-первых, точное планирование места проведения краниэктомии имеет решающее значение из-за состава черепа свиньи. Поскольку толщина лобной кости свиньи увеличивается по боковым краям, размещение отве…
The authors have nothing to disclose.
Авторы выражают благодарность за поддержку и технический опыт, которыми поделились сотрудники биомедицинской лаборатории Университетской больницы Ольборга, Дания.
10 mL plastic syrringes | Becton, Dickinson and Company | 303219 | |
107 Microdialysis pump | M Dialysis | P000127 | 107 Microdialysis Pump |
2 mL plastic syrringes | Becton, Dickinson and Company | 300928 | |
25 mm, 18 G needles | Becton, Dickinson and Company | 304100 | |
Bair Hugger heater | 3M | B5005241003 | |
Bair Hugger heating blanket | 3M | B5005241003 | |
Batery for microdialysis pump | M Dialysis | 8001788 | Battery 6V, 106 & MD Pump |
Dissector | Karl Storz | 223535 | Flattended 3 mm dissector |
Endotracheal tube size 6.5 | DVMed | DVM-107860 | Cuffed endotracheal tube |
Euthasol Vet | Dechra Veterinary Products A/S | 380019 | phentobarbital for euthanazia, 400 mg/mL |
Farabeuf Rougine | Mahr Surgical | Flat headed rougine (12 mm) | |
Foley Catheter 12 F | Becton, Dickinson and Company | D175812E | Catherter with in-built thermosensor |
Intravenous sheath | Coris Avanti | Avanti Cordis Femoral Sheath 6 F | |
Microdialysis brain catheters | M Dialysis | P000050 | membrane length 10 mm -shaft 100 mm 4/pkg |
Microdialysis syringe | M Dialysis | 8010191 | 106 Pump Syringe 20/pkg |
Microvials for microdialysis sampling | M Dialysis | P000001 | Microvials 250/pkg |
Operating table | |||
Pneumatic high-speed drill | Medtronic | Medtronic Midas Rex 7 drill | |
Primus respirator | Dräger | Respirator with in-built vaporiser for supplementary Sevofluran anesthesia | |
Rounded diamond drill | Medtronic | 7BA40D-MN | |
Self-retaining retractor | World Precission Instruments | 501722 | Weitlander retractor, self-retaining, 14 cm blunt |
Sterile Saline | Fresnius Kabi | 805541 | 1000 mL |
Sterile surgical swaps | |||
Surgical scalpel no 24 | Swann Morton | 5.03396E+12 | Swann Morton Sterile Disposable Scalpel No. 24 |
Zoletil Vet | Virbac | Medical mixture for induction of anesthesia |
.