Summary

Парадигмы поведенческой оценки у дрозофилы Модель расстройства аутистического спектра

Published: September 06, 2024
doi:

Summary

Расстройство аутистического спектра (РАС) связано с нарушением социального и коммуникативного поведения и возникновением повторяющегося поведения. Для изучения взаимосвязи между генами РАС и поведенческим дефицитом в модели дрозофилы в данной статье описаны пять поведенческих парадигм для анализа социального пространства, агрессии, ухаживания, ухода и привыкания.

Abstract

Расстройство аутистического спектра (РАС) включает в себя гетерогенную группу расстройств развития нервной системы с общими поведенческими симптомами, включая дефицит социального взаимодействия и способности к общению, усиленное ограниченное или повторяющееся поведение, а также, в некоторых случаях, неспособность к обучению и двигательный дефицит. Дрозофила послужила не имеющим аналогов модельным организмом для моделирования большого числа заболеваний человека. Поскольку многие гены были вовлечены в РАС, плодовые мушки стали мощным и эффективным способом проверки генов, предположительно участвующих в этом расстройстве. Поскольку сотни генов с различными функциональными ролями вовлечены в РАС, единая генетическая модель РАС невозможна; Вместо этого отдельные генетические мутанты, нокдауны генов или основанные на сверхэкспрессии исследования гомологов генов, ассоциированных с РАС, являются распространенными средствами для получения информации о молекулярных путях, лежащих в основе этих генных продуктов. У дрозофилы доступно множество поведенческих техник, которые обеспечивают легкое считывание дефицита в конкретных поведенческих компонентах. Было показано, что анализ социального пространства, а также анализ агрессии и ухаживания у мух полезны для оценки дефектов в социальном взаимодействии или коммуникации. Груминговое поведение у мух является отличным считыванием повторяющегося поведения. Анализ привыкания используется у мух для оценки способности к привыканию, которая обнаруживается у некоторых пациентов с РАС. Комбинация этих поведенческих парадигм может быть использована для тщательной оценки состояния заболевания человека с РАС у мух. Используя мутантных мух Fmr1 , повторяя синдром ломкой X у людей и нокдаун ряда POGZ-гомолога у нейронов мух, мы показали количественно измеримый дефицит социального пространства, агрессии, брачного поведения, ухаживающего поведения и привыкания. Эти поведенческие парадигмы демонстрируются здесь в их простейших и понятных формах с предположением, что это будет способствовать их широкому использованию для исследований РАС и других расстройств развития нервной системы на моделях мух.

Introduction

Расстройство аутистического спектра (РАС) включает в себя гетерогенную группу неврологических расстройств. Он включает в себя ряд сложных расстройств развития нервной системы, характеризующихся мультиконтекстуальными и стойкими дефицитами в социальной коммуникации и социальном взаимодействии, а также наличием ограниченных, повторяющихся поведенческих и активных моделей и интересов1. По данным Всемирной организации здравоохранения (ВОЗ), у 1 из 100 детей во всем мире диагностируется РАС с соотношением мужчин и женщин 4,22. Болезнь становится очевидной на втором или третьем году жизни. Дети с РАС демонстрируют отсутствие интереса к социально-эмоциональной взаимности, невербальному общению и навыкам взаимоотношений. Они демонстрируют повторяющееся поведение, такое как стереотипные моторные движения, негибкое и ритуализированное следование рутине, а также интенсивное внимание к ограниченным интересам. Дети с РАС демонстрируют высокую степень реакции на прикосновение, обоняние, звук и вкус, в то время как реакция на боль и температурусравнительно низкая. Пенетрантность этого расстройства также различна у разных пациентов, страдающих аутизмом, и, следовательно, вариабельность увеличивается.

В настоящее время клинический диагноз РАС основан на поведенческой оценке индивидуумов, поскольку не существует подтверждающего, основанного на биомаркерах или общего генетического теста, который охватывал бы все формы РАС3. Расшифровка генетических и нейрофизиологических основ была бы полезна для определения стратегий лечения. За последнее десятилетие большое количество исследований привело к идентификации сотен генов, которые либо удалены, либо мутировали, или уровни экспрессии которых изменены у пациентов с РАС. Текущие исследования подчеркивают валидацию вклада этих генов-кандидатов с использованием модельных организмов, таких как мышь или плодовая муха, у которых эти гены нокаутируются или сбиваются с ног, после чего проводятся тесты на поведенческие дефициты, подобные РАС, и выясняются основные генетические и молекулярные пути, вызывающие аномалии. Мышиная модель, повторяющая вариации числа копий (CNV) в хромосомных локусах человека 16p11.2, показывает некоторые поведенческие дефекты РАС 4,5,6. Пренатальное воздействие тератогенного препарата вальпроевой кислоты (VPA) является еще одной моделью мыши, демонстрирующей черты, напоминающие человеческие ASD 7,8. Кроме того, существует ряд мышиных моделей, которые демонстрируют генетический синдром-ассоциированный аутизм, например, одногенные синдромные модели, вызванные мутациями в Fmr1, Pten, Mecp2, Cacna1c, и одногенные несиндромальные модели, вызванные мутациями в таких генах, как Cntnap2, Shank, Neurexin или Neuroligin 5.

Плодовая муха (Drosophila melanogaster) является еще одним известным модельным организмом для изучения клеточных, молекулярных и генетических основ множества заболеванийчеловека, включая РАС. Дрозофилы и люди имеют общие высококонсервативные биологические процессы на молекулярном, клеточном и синаптическом уровнях. Плодовые мушки были успешно использованы в исследованиях РАС 10,11,12 для характеристики генов, связанных с РАС, и расшифровки их точной роли в синаптогенезе, синаптической функции и пластичности, сборке нейронных цепей и созревании; Было обнаружено, что гомологи генов, ассоциированных с РАС, играют роль в регуляции социального и/или повторяющегося поведения 11,13,14,15,16,17,18,19,20,21. Плодовая муха также работала в качестве модели для скрининга генов РАС и их вариантов 15,22,23. Самая большая проблема в исследованиях РАС на мухах заключается в том, что, в отличие от других моделей заболеваний, не существует единой модели мухи с РАС. Чтобы понять влияние мутаций или подавления определенного гена РАС, исследователь должен проверить, достаточно ли поведенческие фенотипы имитируют симптомы пациентов с РАС, а затем перейти к пониманию молекулярных или физиологических основ фенотипов.

Следовательно, обнаружение РАС-подобных фенотипов имеет жизненно важное значение для исследований РАС на модели мухи. За эти годы появилось несколько поведенческих методов, которые позволяют нам обнаруживать аномалии, такие как дефицит социального поведения/взаимодействия, общения, повторяющегося поведения и реакции на раздражители. Кроме того, в различных лабораториях было внесено несколько модификаций и обновлений этих поведенческих методов в соответствии с конкретными требованиями, такими как масштабирование, автоматизация анализов, считывание, количественная оценка и методы сравнения. В этой видеостатье демонстрируются самые основные версии пяти поведенческих парадигм, которые в сочетании могут быть использованы для выявления поведенческих исходов РАС самым простым способом.

Агрессия – это эволюционно консервативное врожденное поведение, влияющее на выживание и размножение. На агрессивное поведение по отношению к сородичам влияет «мотивация к социализации»25,26, а также «общение»27, которые скомпрометированы у людей с РАС. Агрессивное поведение хорошо описано у дрозофилы, а его количественная оценка с помощью надежного анализа агрессии 28,29,30 и хорошо изученная генетическая и нейробиологическая основа 31 делают его подходящей поведенческой парадигмой32 для оценки фенотипа РАС на модели мухи. На агрессию влияет социальная изоляция вдали от социальной среды, что приводит к усилению агрессии; То же самое наблюдалось, когда самцы мух содержались в изоляции в течение нескольких дней33,34. Еще одним поведенческим анализом, который количественно оценивает общительность у мух, является Social Space Assay35, который измеряет расстояния между ближайшими соседями и расстояния между мухами в небольшой группе мух, что делает его идеально подходящим для проверки роли ортологов гена ASD у мух 12,21,36,37, а также у моделей мух с РАС, вызванных окружающей средой38. 39.

Тест на ухаживание дрозофилы является еще одной поведенческой парадигмой, часто используемой для анализа на изменение социальных и коммуникативных навыков при круговых или генетических манипуляциях, включая гены, связанные с аутизмом 18,19,21,40. Повторяющиеся модели поведения преобладают у пациентов с РАС, которые повторяются у мух путем груминга — серии отчетливых, стереотипных действий, выполняемых для уборки и других целей. Он был успешно использован для анализа влияния мутаций гена РАС у мух 21,41, а также воздействия химических веществ 38,39. Многочисленные усовершенствования и автоматизация в анализе были описаны ранее 16,41,42,43; Здесь мы демонстрируем самую простую схему анализа, которую легко принять и количественно оценить.

Известно, что РАС влияет на способность к привыканию, обучению и памяти у некоторых пациентов 44,45,46,47,48,49,50, модельные организмы РАС 51,52, а также вызывает дефицит различного обонятельного поведения50. Привыкание дрозофил к прыжку при выключении света ранее использовалось для скрининга генов РАС23. Привыкание может быть измерено простым методом анализа обонятельного привыкания 53,54,55. Мы описываем метод индуцирования обонятельного привыкания и анализа результата с использованием классического бинарного анализа выбора запаха56 на основе Y-лабиринта, который может быть использован для выявления дефектов привыкания при мутантном гене РАС или состоянии нокдауна гена. Чтобы оценить, является ли влияние мутации (или нокдауна гена) или фармакологического лечения на поведение мухи фенотипом, подобным РАС, можно использовать комбинацию этих 5 анализов, описанных здесь.

Protocol

Подробную информацию обо всех материалах и реагентах, используемых в этом протоколе, см. в Таблице материалов . 1. Анализ на агрессию Подготовка арены для анализа на агрессиюВозьмите стандартный планшет с 24 лунками (рисунок 1A) и …

Representative Results

Анализ на агрессиюВ качестве модели ASD мухи были использованы мутантные мухи Fmr1 63,64. w1118 самцов использовали в качестве контроля, а Fmr1 трансгетерозиготу Fmr1Δ113M/Fmr1Δ50M – 57 самцов в качестве экспериментальных м…

Discussion

Дрозофила используется в качестве прекрасного модельного организма для исследований неврологических расстройств человека из-за высокой степени сохранности последовательностей генов между генами мухи и болезни человека9. Многочисленные устойчивые поведенческие п?…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Мы безмерно благодарны Мани Рамасвами (NCBS, Бангалор) и Баскару Бактавачалу (IIT Mandi) за организацию анализа привыкания и выбора запаха, Павану Агравалу (MAHE) за его ценные предложения по анализу на агрессию, Амитаве Маджумдару (NCCS, Пуна) за то, что поделился прототипом пробирной камеры для ухаживания и линиями мутантных мух Fmr1 , а также Гаураву Дасу (NCCS, Пуна) за то, что поделился линейкой MB247-GAL4. Мы благодарим Bloomington Drosophila Stock Center (BDSC, Индиана, США), Национальный институт генетики (NIG, Киото, Япония), Банарасский индуистский университет (BHU, Варанаси, Индия) и Национальный центр биологических наук (NCBS, Бангалор, Индия) за линии дрозофилы . Работа лаборатории поддерживалась грантами от SERB-DST (ECR/2017/002963) AD, стипендией DBT Ramalingaswami, присужденной AD (BT/RLF/Re-entry/11/2016), и институциональной поддержкой от IIT Kharagpur, Индия. SD и SM получают стипендии для получения степени доктора философии от CSIR-Senior Research Fellowship; Премьер-министр получает стипендию доктора философии от MHRD, Индия.

Materials

Aggression arena:
Standard 24-well plate made of transparent polystyrene 12 cm x 8 cm x 2 cm. Diameter of a single well= 18 cm. Sigma-aldrich #Z707791; depth = 1 cm
Transparent plastic/acrylic sheet Alternative: a perforated lid of a cell culture plate
Social Space Assay:
Binder clips 19 mm
Glass sheets and acrylic sheets of customized sizes Thickness = 5 mm
Courtship assay:
Nut and bolt with threading
Perspex sheets of customized shapes i) Lid: A custom-made round transparent Perspex disk (2-3 mm thickness, 70 mm diameter) with one loading hole at the peripheral region and another screw hole at the center (diameter ~ 3 mm for each); ii) A second transparent thicker Perspex disk (3-4 mm thickness, 70 mm diameter), with 6-8 perforations of diameter 15 mm, equidistant from the center; iii) Base: Same as lid except without the loading hole
Grooming assay:
Diffused glass-covered LED panel 10–15-Watt ceiling mountable LED panel
Habituation and Y-maze assay
Climbing chambers x2, Borosilicate glass
Adapter for connecting Y-maze with entry vial Perspex, custom made, measurements in Figure 5A
Clear reagent bottles Borosil #1500017
Gas washing stopper Borosil #1761021
Glass vial OD= 25 mm x Height= 85 mm; Borosilicate Glass
Odorant (Ethyl Butyrate) Merck #E15701
Paraffin wax (liquid) light SRL #18211
Roller clamps Polymed #14098
Silicone tubes OD = 0.6 cm, ID = 0.3 cm; roller clamps for flow control
Vacuum pump Hana #HN-648 (Any aquarium pump with flow direction reversed manually)
Y-maze Borosilicate glass
Y-shaped glass tube (borosilicate glass) Custom made, measurements in Figure 5A
Common items:
Any software for video playback (eg.- VLC media player) https://www.videolan.org/vlc/
Computer for video data analysis
Fly bottles OD= 60 mm x Height= 140 mm; glass/polypropylene
Fly vials OD= 25 mm x Height= 85 mm; Borosilicate Glass
Graph-pad Prism software https://www.graphpad.com/scientific-software/prism/www.graphpad.com/scientific-software/prism/
ImageJ software https://imagej.net/downloads
Timer
Video camera with video recording set up Camcorder or a mobile phone camera will work
For Fly Aspirator:
Cotton Absorbent, autoclaved
Parafilm Sigma-aldrich #P7793
Pipette tips 200 µL or 1000 µL, choose depeding on outer diameter of the silicone tube
Silicone/rubber tube length= 30-50 cm. The tube should be odorless
Composition of Fly food:
Ingredients (amount for 1 L of food)
Agar (8 g) SRL # 19661 (CAS : 9002-18-0)
Cornflour (80 g) Organic, locally procured
D-Glucose (20 g) SRL # 51758 (CAS: 50-99-7)
Propionic acid (4 g) SRL # 43883 (CAS: 79-09-4)
Sucrose (40 g) SRL # 90701 (CAS: 57-50-1)
Tego (Methyl para hydroxy benzoate) (1.25 g) SRL # 60905 (CAS: 5026-62-0)
Yeast Powder (10 g) HIMEDIA # RM027
Fly lines used in the experiments in this study:
Wild type (Canton S or CS) BDSC # 64349
w1118 BDSC # 3605
w[1118]; Fmr1[Δ50M]/TM6B, Tb[+] BDSC # 6930
w[*]; Fmr1[Δ113M]/TM6B, Tb[1] BDSC # 67403
MB247-GAL4 (Gaurav Das, NCCS Pune, India) BDSC # 50742
LN1-GAL4 NP1227, NP consortium, Japan
row-shRNA BDSC # 25971

References

  1. American Psychiatric Association. . American Psychiatric Association DSM-5 Task Force Diagnostic and statistical manual of mental disorders: DSM-5TM, 5th ed. , (2013).
  2. Zeidan, J., et al. Global prevalence of autism: A systematic review update. Autism Res. 15 (5), 778 (2022).
  3. Lordan, R., Storni, C., De Benedictis, C. A. Autism spectrum disorders: diagnosis and treatment. Autism Spectr Disord. , (2021).
  4. Horev, G., et al. Dosage-dependent phenotypes in models of 16p11.2 lesions found in autism. Proc Natl Acad Sci USA. 108 (41), 17076-17081 (2011).
  5. Bey, A. L., Jiang, Y. Overview of mouse models of autism spectrum disorders. Curr Protoc Pharmacol. 66 (1), 1 (2014).
  6. Fetit, R., Price, D. J., Lawrie, S. M., Johnstone, M. Understanding the clinical manifestations of 16p11.2 deletion syndrome: a series of developmental case reports in children. Psychiatr Genet. 30 (5), 136-140 (2020).
  7. Nicolini, C., Fahnestock, M. The valproic acid-induced rodent model of autism. Exp Neurol. 299, 217-227 (2018).
  8. Tartaglione, A. M., Schiavi, S., Calamandrei, G., Trezza, V. Prenatal valproate in rodents as a tool to understand the neural underpinnings of social dysfunctions in autism spectrum disorder. Neuropharmacology. 159, 107477 (2019).
  9. Reiter, L. T., Potocki, L., Chien, S., Gribskov, M., Bier, E. A systematic analysis of human disease-associated gene sequences in Drosophilamelanogaster. Genome Res. 11 (6), 1114-1125 (2001).
  10. Coll-Tane, M., Krebbers, A., Castells-Nobau, A., Zweier, C., Schenck, A. Intellectual disability and autism spectrum disorders "on the fly": Insights from Drosophila. DMM Dis Model Mech. 12 (5), 1-16 (2019).
  11. Tian, Y., Zhang, Z. C., Han, J. Drosophila studies on autism spectrum disorders. Neurosci Bull. 33 (6), 737-746 (2017).
  12. Ueoka, I., Pham, H. T. N., Matsumoto, K., Yamaguchi, M. Autism spectrum disorder-related syndromes: Modeling with Drosophila and rodents. Int J Mol Sci. 20 (17), 1-24 (2019).
  13. Yost, R. T., et al. Abnormal social interactions in a Drosophila mutant of an autism candidate gene: Neuroligin 3. Int J Mol Sci. 21 (13), 1-20 (2020).
  14. Wise, A., et al. Drosophila mutants of the autism candidate gene neurobeachin (rugose) exhibit neuro-developmental disorders, aberrant synaptic properties, altered locomotion, impaired adult social behavior and activity patterns. J Neurogenet. 29 (2-3), 135-143 (2015).
  15. Koemans, T. S., et al. Functional convergence of histone methyltransferases EHMT1 and KMT2C involved in intellectual disability and autism spectrum disorder. PLoS Genet. 13 (10), e1006864 (2017).
  16. Tauber, J. M., Vanlandingham, P. A., Zhang, B. Elevated levels of the vesicular monoamine transporter and a novel repetitive behavior in the Drosophila model of fragile X syndrome. PLoS One. 6 (11), e27100 (2011).
  17. Iyer, J., et al. Pervasive genetic interactions modulate neurodevelopmental defects of the autism-associated 16p11.2 deletion in Drosophilamelanogaster. Nat Commun. 9 (1), 1-19 (2018).
  18. Palacios-Muñoz, A., et al. Mutations in trpγ, the homologue of TRPC6 autism candidate gene, causes autism-like behavioral deficits in Drosophila. Mol Psychiatry. 27 (8), 3328-3342 (2022).
  19. Hahn, N., et al. Monogenic heritable autism gene neuroligin impacts Drosophila social behaviour. Behav Brain Res. 252, 450-457 (2013).
  20. Stessman, H. A. F., et al. Disruption of POGZ is associated with intellectual disability and autism spectrum disorders. Am J Hum Genet. 98 (3), 541-552 (2016).
  21. Hope, K. A., et al. The Drosophila gene sulfateless modulates autism-like behaviors. Front Genet. 10, 574 (2019).
  22. Stessman, H. A. F., et al. Targeted sequencing identifies 91 neurodevelopmental-disorder risk genes with autism and developmental-disability biases. Nat Genet. 49 (4), 515-526 (2017).
  23. Fenckova, M., et al. Habituation learning is a widely affected mechanism in Drosophila models of intellectual disability and autism spectrum disorders. Biol Psychiatry. 86 (4), 294-305 (2019).
  24. Trannoy, S., Chowdhury, B., Kravitz, E. A. Handling alters aggression and "loser" effect formation in Drosophilamelanogaster. Learn Mem. 22 (2), 64-68 (2015).
  25. Anderson, D. J. Circuit modules linking internal states and social behaviour in flies and mice. Nat Rev Neurosci. 17 (11), 692-704 (2016).
  26. Flanigan, M. E., Russo, S. J. Recent advances in the study of aggression. Neuropsychopharmacology. 44 (2), 241-244 (2018).
  27. Sun, Y., et al. Social attraction in Drosophila is regulated by the mushroom body and serotonergic system. Nat Commun. 11 (1), 1-14 (2020).
  28. Nilsen, S. P., Chan, Y. B., Huber, R., Kravitz, E. A. Gender-selective patterns of aggressive behavior in Drosophilamelanogaster. Proc Natl Acad Sci USA. 101 (33), 12342-12347 (2004).
  29. Kravitz, E. A., Fernandez, M. d. e. l. a. P. Aggression in Drosophila. Behav Neurosci. 129 (5), 549-563 (2015).
  30. Chen, S., Lee, A. Y., Bowens, N. M., Huber, R., Kravitz, E. A. Fighting fruit flies: a model system for the study of aggression. Proc Natl Acad Sci USA. 99 (8), 5664-5668 (2002).
  31. Zwarts, L., Versteven, M., Callaerts, P. Genetics and neurobiology of aggression in Drosophila. Fly (Austin). 6 (1), 35-48 (2012).
  32. Mundiyanapurath, S., Certel, S., Kravitz, E. A. Studying aggression in Drosophila (fruit flies). J Vis Exp. (2), e155 (2007).
  33. Agrawal, P., Kao, D., Chung, P., Looger, L. L. The neuropeptide Drosulfakinin regulates social isolation-induced aggression in Drosophila. J Exp Biol. 223 (2), 207407 (2020).
  34. Wang, L., Dankert, H., Perona, P., Anderson, D. J. A common genetic target for environmental and heritable influences on aggressiveness in Drosophila. Proc Natl Acad Sci USA. 105 (15), 5657-5663 (2008).
  35. Simon, A. F., et al. A simple assay to study social behavior in Drosophila: Measurement of social space within a group. Genes Brain Behav. 11 (2), 243-252 (2012).
  36. Corthals, K., et al. Neuroligins Nlg2 and Nlg4 affect social behavior in Drosophilamelanogaster. Front Psychiatry. 8, 113 (2017).
  37. Cao, H., Tang, J., Liu, Q., Huang, J., Xu, R. Autism-like behaviors regulated by the serotonin receptor 5-HT2B in the dorsal fan-shaped body neurons of Drosophilamelanogaster. Eur J Med Res. 27 (1), 1-15 (2022).
  38. Kaur, K., Simon, A. F., Chauhan, V., Chauhan, A. Effect of bisphenol A on Drosophilamelanogaster behavior – A new model for the studies on neurodevelopmental disorders. Behav Brain Res. 284, 77-84 (2015).
  39. Shilpa, O., Anupama, K. P., Antony, A., Gurushankara, H. P. Lead (Pb)-induced oxidative stress mediates sex-specific autistic-like behaviour in Drosophilamelanogaster. Mol Neurobiol. 58 (12), 6378-6393 (2021).
  40. Dockendorff, T. C., et al. Drosophila lacking dfmr1 activity show defects in crcadian output and fail to maintain courtship interest. Neuron. 34 (6), 973-984 (2002).
  41. Andrew, D. R., et al. Spontaneous motor-behavior abnormalities in two Drosophila models of neurodevelopmental disorders. J Neurogenet. 35 (1), 1-22 (2021).
  42. Barradale, F., Sinha, K., Lebestky, T. Quantification of Drosophila grooming behavior. J Vis Exp. (125), e55231 (2017).
  43. Qiao, B., Li, C., Allen, V. W., Shirasu-Hiza, M., Syed, S. Automated analysis of long-term grooming behavior in Drosophila using a k-nearest neighbors classifier. Elife. 7, e34497 (2018).
  44. Webb, S. J., et al. Toddlers with elevated autism symptoms show slowed habituation to faces. Child Neuropsychol. 16 (3), 255-278 (2010).
  45. Kleinhans, N. M., et al. Reduced neural habituation in the amygdala and social impairments in autism spectrum disorders. Am J Psychiatry. 166 (4), 467-475 (2009).
  46. Ethridge, L. E., et al. Reduced habituation of auditory evoked potentials indicate cortical hyper-excitability in Fragile X Syndrome. Transl Psychiatry. 6 (4), e787-e787 (2016).
  47. McDiarmid, T. A., Bernardos, A. C., Rankin, C. H. Habituation is altered in neuropsychiatric disorders-A comprehensive review with recommendations for experimental design and analysis. Neurosci Biobehav Rev. 80, 286-305 (2017).
  48. Kuiper, M. W. M., Verhoeven, E. W. M., Geurts, H. M. Stop making noise! Auditory sensitivity in adults with an autism spectrum disorder diagnosis: physiological habituation and subjective detection thresholds. J Autism Dev Disord. 49 (5), 2116-2128 (2019).
  49. McDiarmid, T. A., et al. Systematic phenomics analysis of autism-associated genes reveals parallel networks underlying reversible impairments in habituation. Proc Natl Acad Sci USA. 117 (1), 656-667 (2020).
  50. Lyons-Warren, A. M., Herman, I., Hunt, P. J., Arenkiel, B. A systematic-review of olfactory deficits in neurodevelopmental disorders: From mouse to human. Neurosci Biobehav Rev. 125, 110-121 (2021).
  51. Kepler, L. D., McDiarmid, T. A., Rankin, C. H. Habituation in high-throughput genetic model organisms as a tool to investigate the mechanisms of neurodevelopmental disorders. Neurobiol Learn Mem. 171, 107208 (2020).
  52. Huang, T. N., Yen, T. L., Qiu, L. R., Chuang, H. C., Lerch, J. P., Hsueh, Y. P. Haploinsufficiency of autism causative gene Tbr1 impairs olfactory discrimination and neuronal activation of the olfactory system in mice. Mol Autism. 10 (1), 1-16 (2019).
  53. Twick, I., Lee, J. A., Ramaswami, M. Chapter 1 – Olfactory habituation in Drosophila-odor encoding and its plasticity in the antennal lobe. Prog Brain Res. 208, 3-38 (2014).
  54. Das, S., et al. Plasticity of local GABAergic interneurons drives olfactory habituation. Proc Natl Acad Sci USA. 108 (36), E646-E654 (2011).
  55. Devaud, J. M., Acebes, A., Ferrús, A. Odor exposure causes central adaptation and morphological changes in selected olfactory glomeruli in Drosophila. J Neurosci. 21 (16), 6274-6282 (2001).
  56. Ayyub, C., Paranjape, J., Rodrigues, V., Siddiqi, O. Genetics of olfactory behavior in Drosophilamelanogaster. J Neurogenet. 6 (4), 243-262 (1990).
  57. Michel, C. I., Kraft, R., Restifo, L. L. Defective neuronal development in the mushroom bodies of Drosophila fragile X mental retardation 1 mutants. J Neurosci. 24 (25), 5798-5809 (2004).
  58. Fernandez, M. P., Trannoy, S., Certel, S. J. Fighting flies: quantifying and analyzing Drosophila aggression. Cold Spring Harb Protoc. 2023 (9), 107985 (2023).
  59. Dankert, H., Wang, L., Hoopfer, E. D., Anderson, D. J., Perona, P. Automated monitoring and analysis of social behavior in Drosophila. Nat Methods. 6 (4), 297-303 (2009).
  60. Simon, A. F., et al. Drosophila vesicular monoamine transporter mutants can adapt to reduced or eliminated vesicular stores of dopamine and serotonin. Genetics. 181 (2), 525-541 (2008).
  61. McNeil, A. R., et al. Conditions affecting social space in Drosophilamelanogaster. J Vis Exp. (105), e53242 (2015).
  62. Schneider, C. A., Rasband, W. S., Eliceiri, K. W. NIH Image to ImageJ: 25 years of image analysis. Nat Methods. 9 (7), 671-675 (2012).
  63. Drozd, M., Bardoni, B., Capovilla, M. Modeling Fragile X Syndrome in Drosophila. Front Mol Neurosci. 11, 124 (2018).
  64. Trajković, J., et al. Drosophilamelanogaster as a model to study Fragile X-associated disorders. Genes (Basel). 14 (1), 87 (2022).
  65. Gailey, D. A., Jackson, F. R., Siegel, R. W. Male courtship in Drosophila: the conditioned response to immature males and its genetic control. Genetics. 102 (4), 771-782 (1982).
  66. Cannon, R. J. C. Drosophila courtship behaviour. Courtship and Mate-finding Insects. , 1-13 (2023).
  67. von Philipsborn, A. C., Shohat-Ophir, G., Rezaval, C. Single-pair courtship and competition assays in Drosophila. Cold Spring Harb Protoc. 2023 (7), 450-459 (2023).
  68. Keleman, K., Krüttner, S., Alenius, M., Dickson, B. J. Function of the Drosophila CPEB protein Orb2 in long-term courtship memory. Nat Neurosci. 10 (12), 1587-1593 (2007).
  69. Koemans, T. S., et al. Drosophila courtship conditioning as a measure of learning and memory. J Vis Exp. (124), e55808 (2017).
  70. Fitzsimons, H. L., Scott, M. J. Genetic modulation of Rpd3 expression impairs long-term courtship memory in Drosophila. PLoS One. 6 (12), e29171 (2011).
  71. Kubli, E. My favorite molecule. The sex-peptide. BioEssays. 14 (11), 779-784 (1992).
  72. Dierick, H. A. A method for quantifying aggression in male Drosophilamelanogaster. Nat Protoc. 2 (11), 2712-2718 (2007).

Play Video

Cite This Article
Dey, S., Mondal, P., Mandal, S., Sasmal, S., Chakraborty, N., Das, A. Paradigms for Behavioral Assessment in Drosophila Model of Autism Spectrum Disorder. J. Vis. Exp. (211), e66649, doi:10.3791/66649 (2024).

View Video