Summary

Paradigmen für die Verhaltensbewertung im Drosophila-Modell der Autismus-Spektrum-Störung

Published: September 06, 2024
doi:

Summary

Die Autismus-Spektrum-Störung (ASS) ist mit einer Beeinträchtigung des sozialen und kommunikativen Verhaltens und dem Auftreten von sich wiederholendem Verhalten verbunden. Um die Wechselbeziehung zwischen ASD-Genen und Verhaltensdefiziten im Drosophila-Modell zu untersuchen, werden in dieser Arbeit fünf Verhaltensparadigmen zur Untersuchung von sozialem Abstand, Aggression, Balz, Pflege und Gewöhnungsverhalten beschrieben.

Abstract

Die Autismus-Spektrum-Störung (ASS) umfasst eine heterogene Gruppe von neurologischen Entwicklungsstörungen mit häufigen Verhaltenssymptomen, darunter Defizite in der sozialen Interaktion und Kommunikationsfähigkeit, verstärkte eingeschränkte oder sich wiederholende Verhaltensweisen und in einigen Fällen auch Lernbehinderung und motorisches Defizit. Drosophila diente als beispielloser Modellorganismus für die Modellierung einer großen Anzahl menschlicher Krankheiten. Da viele Gene mit ASS in Verbindung gebracht wurden, haben sich Fruchtfliegen als leistungsstarke und effiziente Methode erwiesen, um die Gene zu testen, die angeblich an der Störung beteiligt sind. Da Hunderte von Genen mit unterschiedlichen funktionellen Rollen an ASD beteiligt sind, ist ein einzelnes genetisches Fliegenmodell von ASD nicht möglich; Stattdessen sind einzelne genetische Mutanten, Gen-Knockdowns oder Überexpressions-basierte Studien der Fliegenhomologe von ASD-assoziierten Genen die üblichen Mittel, um Einblicke in die molekularen Signalwege zu gewinnen, die diesen Genprodukten zugrunde liegen. In Drosophila gibt es eine Vielzahl von Verhaltenstechniken, die ein leichtes Auslesen von Defiziten in bestimmten Verhaltenskomponenten ermöglichen. Es hat sich gezeigt, dass der Assay des Sozialraums sowie Aggressions- und Balztests bei Fliegen nützlich sind, um Defekte in der sozialen Interaktion oder Kommunikation zu beurteilen. Das Fellpflegeverhalten bei Fliegen ist eine hervorragende Lektüre für sich wiederholendes Verhalten. Der Gewöhnungsassay wird bei Fliegen verwendet, um die Fähigkeit zum Gewöhnungslernen abzuschätzen, die bei einigen ASD-Patienten beeinträchtigt ist. Eine Kombination dieser Verhaltensparadigmen kann verwendet werden, um eine gründliche Beurteilung des menschlichen ASD-ähnlichen Krankheitszustands bei Fliegen vorzunehmen. Unter Verwendung von Fmr1-mutierten Fliegen, der Rekapitulation des Fragile-X-Syndroms beim Menschen und des POGZ-homologen Row-Knockdowns in Fliegenneuronen haben wir quantifizierbare Defizite in den Bereichen Social spacing, Aggression, Balzverhalten, Pflegeverhalten und Gewöhnung gezeigt. Diese Verhaltensparadigmen werden hier in ihrer einfachsten und unkompliziertesten Form demonstriert, mit der Annahme, dass dies ihre breite Verwendung für die Forschung zu ASS und anderen neurologischen Entwicklungsstörungen in Fliegenmodellen erleichtern würde.

Introduction

Die Autismus-Spektrum-Störung (ASS) umfasst eine heterogene Gruppe von neurologischen Störungen. Sie umfasst eine Reihe komplexer neurologischer Entwicklungsstörungen, die durch multikontextuelle und anhaltende Defizite in der sozialen Kommunikation und sozialen Interaktion sowie durch das Vorhandensein von eingeschränkten, sich wiederholenden Verhaltens- und Aktivitätsmustern und -interessen gekennzeichnetsind 1. Nach Angaben der Weltgesundheitsorganisation (WHO) wird weltweit bei 1 von 100 Kindern ASS diagnostiziert, wobei das Verhältnis von Männern zu Frauen bei 4,22 liegt. Die Erkrankung macht sich im zweiten oder dritten Lebensjahr bemerkbar. ASD-Kinder zeigen ein mangelndes Interesse an sozial-emotionaler Reziprozität, nonverbaler Kommunikation und Beziehungsfähigkeit. Sie zeigen sich wiederholende Verhaltensweisen wie stereotype motorische Bewegungen, unflexible und ritualisierte Routinebefolgung und intensive Konzentration auf eingeschränkte Interessen. ASD-Kinder zeigen ein hohes Maß an Reaktion auf Berührung, Geruch, Geräusche und Geschmack, während die Schmerz- und Temperaturreaktion vergleichsweise gering ist1. Die Penetranz dieser Störung ist auch bei verschiedenen Patienten, die an ASS leiden, unterschiedlich und daher nimmt die Variabilität zu.

Die derzeitige klinische Diagnose von ASD basiert auf der Verhaltensbewertung der Personen, da es keinen bestätigenden, auf Biomarkern basierenden oder gemeinsamen genetischen Test gibt, der alle Formen von ASDabdeckt 3. Die Entschlüsselung der genetischen und neurophysiologischen Grundlagen wäre hilfreich, um Behandlungsstrategien zu entwickeln. In den letzten zehn Jahren hat eine große Anzahl von Forschungsarbeiten zur Identifizierung von Hunderten von Genen geführt, die entweder gelöscht oder mutiert sind oder deren Expressionsniveaus bei ASD-Patienten verändert sind. Die laufende Forschung konzentriert sich auf die Validierung des Beitrags dieser Kandidatengene anhand von Modellorganismen wie der Maus oder Fruchtfliege, bei denen diese Gene ausgeschaltet oder ausgeschaltet werden, gefolgt von Tests auf ASD-ähnliche Verhaltensdefizite und der Aufklärung der zugrunde liegenden genetischen und molekularen Signalwege, die die Anomalien verursachen. Ein Mausmodell, das Kopienzahlvariationen (CNVs) in den humanen Chromosomenloci 16p11.2 rekapituliert, zeigt einige der ASD-Verhaltensdefekte 4,5,6. Die pränatale Exposition gegenüber einem teratogenen Medikament, Valproinsäure (VPA), ist ein weiteres Mausmodell, das Merkmale aufweist, die der menschlichen ASDähneln 7,8. Darüber hinaus gibt es eine Reihe von Mausmodellen, die genetischen Syndrom-assoziierten Autismus aufweisen, z. B. syndromale Einzelgenmodelle, die durch Mutationen in Fmr1, Pten, Mecp2, Cacna1c verursacht werden, und nicht-syndromale Einzelgenmodelle, die durch Mutationen in Genen wie Cntnap2, Shank, Neurexin oder Neuroligin-Genen verursacht werden5.

Die Fruchtfliege (Drosophila melanogaster) ist ein weiterer prominenter Modellorganismus für die Untersuchung der zellulären, molekularen und genetischen Grundlagen einer Vielzahl von menschlichen Erkrankungen9, einschließlich ASD. Drosophila und Mensch teilen hochkonservierte biologische Prozesse auf molekularer, zellulärer und synaptischer Ebene. Fruchtfliegen wurden erfolgreich in ASD-Studieneingesetzt 10,11,12 um Gene zu charakterisieren, die mit ASDs in Verbindung stehen, und ihre genaue Rolle bei der Synaptogenese, der synaptischen Funktion und Plastizität, dem Aufbau neuronaler Schaltkreise und der Reifung zu entschlüsseln; Es wurde festgestellt, dass Fliegenhomologe von ASD-assoziierten Genen eine Rolle bei der Regulation von sozialem und/oder repetitivem Verhalten spielen 11,13,14,15,16,17,18,19,20,21. Die Fruchtfliege hat auch als Modell für das Screening von ASD-Genen und deren Varianten gedient 15,22,23. Die größte Herausforderung in der ASD-Forschung an Fliegen besteht darin, dass es im Gegensatz zu anderen Krankheitsmodellen kein einzelnes ASD-Fliegenmodell gibt. Um die Auswirkungen von Mutationen oder dem Ausschalten eines bestimmten ASD-Gens zu verstehen, muss ein Forscher validieren, ob die Verhaltensphänotypen die Symptome von ASD-Patienten ausreichend nachahmen, und dann dazu übergehen, die molekularen oder physiologischen Grundlagen der Phänotypen zu verstehen.

Daher ist der Nachweis von ASD-ähnlichen Phänotypen für die ASD-Forschung im Fliegenmodell von entscheidender Bedeutung. Im Laufe der Jahre ist eine Handvoll Verhaltenstechniken entstanden, die es uns ermöglichen, Anomalien wie Defizite im Sozialverhalten/in der Interaktion, in der Kommunikation, in sich wiederholenden Verhaltensweisen und in der Reaktionsfähigkeit auf Reize zu erkennen. Darüber hinaus wurden in verschiedenen Labors verschiedene Modifikationen und Upgrades dieser Verhaltenstechniken vorgenommen, um spezifischen Anforderungen wie Upscaling, Automatisierung von Assays, Auslesungen, Quantifizierungs- und Vergleichsmethoden gerecht zu werden. In diesem Videoartikel werden die grundlegendsten Versionen von fünf Verhaltensparadigmen demonstriert, die in Kombination verwendet werden können, um ASS-ähnliche Verhaltensergebnisse auf einfachste Weise zu erkennen.

Aggression ist ein evolutionär konserviertes angeborenes Verhalten, das das Überleben und die Fortpflanzung beeinflusst24. Aggressives Verhalten gegenüber Artgenossen wird sowohl durch die “Motivation zur Sozialisation”25,26 als auch durch die “Kommunikation”27 beeinflusst, die beide bei ASS-Betroffenen beeinträchtigt sind. Aggressives Verhalten ist bei Drosophila gut beschrieben und seine Quantifizierbarkeit durch den robusten Aggressionsassay 28,29,30 und eine gut verstandene genetische und neurobiologische Basis 31 macht es zu einem geeigneten Verhaltensparadigma32 für die Beurteilung des ASD-Phänotyps in einem Fliegenmodell. Aggression wird durch soziale Isolation abseits eines sozialen Umfelds beeinflusst, was zu verstärkter Aggression führt; Das Gleiche wurde beobachtet, wenn männliche Fliegen einige Tage lang isoliert gehalten wurden33,34. Ein weiterer Verhaltensassay, der die Geselligkeit bei Fliegen quantifiziert, ist der Social Space Assay35, der die Entfernungen zwischen den nächsten Nachbarn und die Abstände zwischen den Fliegen in einer kleinen Gruppe von Fliegen misst, wodurch er sich perfekt zum Testen der Rollen von ASD-Gen-Orthologen in Fliegen 12,21,36,37 sowie umweltinduzierten ASD-Fliegenmodellen38 eignet. 39. Urheberrecht

Der Drosophila-Balztest ist ein weiteres Verhaltensparadigma, das häufig verwendet wird, um Veränderungen in sozialen und kommunikativen Fähigkeiten durch Schaltkreis- oder Genmanipulation zu testen, einschließlich Autismus-bezogener Gene 18,19,21,40. Sich wiederholende Verhaltensmuster sind bei ASD-Patienten weit verbreitet, was sich bei Fliegen durch Pflegeverhalten widerspiegelt – eine Reihe von unterschiedlichen, stereotypen Handlungen, die zum Reinigen und zu anderen Zwecken ausgeführt werden. Es wurde erfolgreich eingesetzt, um die Auswirkungen von ASD-Genmutationen bei Fliegen21,41 sowie die Exposition gegenüber Chemikalien38,39 zu untersuchen. Mehrere Fortschritte und Automatisierungen im Assay wurden bereits vor 16,41,42,43 beschrieben; Hier demonstrieren wir das grundlegendste Assay-Muster, das einfach zu übernehmen und zu quantifizieren ist.

Es ist bekannt, dass ASD die Gewöhnungsfähigkeit, das Lernen und das Gedächtnis bei einigen Patientenbeeinflusst 44,45,46,47,48,49,50, ASD-Modellorganismen 51,52 und auch Defizite in verschiedenen Geruchsverhaltensweisen verursacht50. Die Gewöhnung an Drosophila-Light-Off-Sprünge wurde zuvor verwendet, um nach ASD-Genenzu suchen 23. Die Gewöhnung kann durch ein einfaches Verfahren des olfaktorischen Gewöhnungsassays 53,54,55 bestimmt werden. Wir beschreiben das Verfahren zur Induktion der olfaktorischen Gewöhnung und testen das Ergebnis unter Verwendung eines klassischen Y-Labyrinth-basierten binären Odor-Choice-Assays56, der zur Erkennung von Defekten in der Gewöhnungsstörung bei ASD-Genmutanten oder Gen-Knockdown-Bedingungen verwendet werden kann. Um zu beurteilen, ob der Einfluss einer Mutation (oder eines Gen-Knock-downs) oder einer pharmakologischen Behandlung auf das Verhalten einer Fliege auf einen ASD-ähnlichen Phänotyp hinausläuft, kann man eine Kombination dieser 5 hier beschriebenen Assays verwenden.

Protocol

In der Materialtabelle finden Sie Einzelheiten zu allen Materialien und Reagenzien, die in diesem Protokoll verwendet werden. 1. Aggressions-Assay Vorbereitung der Aggressions-Assay-ArenaNehmen Sie eine Standard-24-Well-Platte (Abbildung 1A) und verwenden Sie jede Vertiefung der Platte als eine einzelne “Arena” (Abbildung 1B) für die Aggression der Fliegen. Füllen Sie die Hälfte j…

Representative Results

Aggressions-AssayAls Fliegen-ASD-Modell wurden Fmr1-mutierte Fliegen verwendet63,64. w1118 Männchen wurden als Kontrolle und Fmr1 trans-heterozygote Fmr1Δ113M/Fmr1Δ50M57 männliche Fliegen als Versuchsfliegen verwendet; Erwachsene Männchen wurden 5 Tage lang in Isolationsröhren untergebracht. Homotypische Männchen (gleicher Genotyp, gleiche Haltungsbedingungen) wurde…

Discussion

Drosophila wird aufgrund eines hohen Grades an Konservierung von Gensequenzen zwischen Fliegen- und menschlichen Krankheitsgenen als guter Modellorganismus für die Erforschung humaner neurologischer Erkrankungen verwendet9. Zahlreiche robuste Verhaltensparadigmen machen es zu einem attraktiven Modell für die Untersuchung von Phänotypen, die sich in Mutanten manifestieren, die menschliche Krankheiten rekapitulieren. Da Hunderte von Genen an der Autismus-Spektrum-Störung (ASS) beteiligt…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Wir danken Mani Ramaswami (NCBS, Bangalore) und Baskar Bakthavachalu (IIT Mandi) für das Setup des Gewöhnungs- und Geruchsauswahl-Assays, Pavan Agrawal (MAHE) für seine wertvollen Vorschläge zum Aggressions-Assay, Amitava Majumdar (NCCS, Pune) für das Teilen seines Prototyps der Balz-Assay-Kammer und der Fmr1-Mutantenfliegenschnüre und Gaurav Das (NCCS, Pune) für die Bereitstellung der MB247-GAL4-Linie. Wir danken dem Bloomington Drosophila Stock Center (BDSC, Indiana, USA), dem National Institute of Genetics (NIG, Kyoto, Japan), der Banaras Hindu University (BHU, Varanasi, Indien) und dem National Center for Biological Science (NCBS, Bangalore, Indien) für die Drosophila-Linien . Die Arbeit im Labor wurde durch Zuschüsse von SERB-DST (ECR/2017/002963) an AD, ein DBT Ramalingaswami-Stipendium für AD (BT/RLF/Re-entry/11/2016) und institutionelle Unterstützung vom IIT Kharagpur, Indien, unterstützt. SD und SM erhalten Ph.D.-Stipendien vom CSIR-Senior Research Fellowship; PM erhält ein Ph.D.-Stipendium von MHRD, Indien.

Materials

Aggression arena:
Standard 24-well plate made of transparent polystyrene 12 cm x 8 cm x 2 cm. Diameter of a single well= 18 cm. Sigma-aldrich #Z707791; depth = 1 cm
Transparent plastic/acrylic sheet Alternative: a perforated lid of a cell culture plate
Social Space Assay:
Binder clips 19 mm
Glass sheets and acrylic sheets of customized sizes Thickness = 5 mm
Courtship assay:
Nut and bolt with threading
Perspex sheets of customized shapes i) Lid: A custom-made round transparent Perspex disk (2-3 mm thickness, 70 mm diameter) with one loading hole at the peripheral region and another screw hole at the center (diameter ~ 3 mm for each); ii) A second transparent thicker Perspex disk (3-4 mm thickness, 70 mm diameter), with 6-8 perforations of diameter 15 mm, equidistant from the center; iii) Base: Same as lid except without the loading hole
Grooming assay:
Diffused glass-covered LED panel 10–15-Watt ceiling mountable LED panel
Habituation and Y-maze assay
Climbing chambers x2, Borosilicate glass
Adapter for connecting Y-maze with entry vial Perspex, custom made, measurements in Figure 5A
Clear reagent bottles Borosil #1500017
Gas washing stopper Borosil #1761021
Glass vial OD= 25 mm x Height= 85 mm; Borosilicate Glass
Odorant (Ethyl Butyrate) Merck #E15701
Paraffin wax (liquid) light SRL #18211
Roller clamps Polymed #14098
Silicone tubes OD = 0.6 cm, ID = 0.3 cm; roller clamps for flow control
Vacuum pump Hana #HN-648 (Any aquarium pump with flow direction reversed manually)
Y-maze Borosilicate glass
Y-shaped glass tube (borosilicate glass) Custom made, measurements in Figure 5A
Common items:
Any software for video playback (eg.- VLC media player) https://www.videolan.org/vlc/
Computer for video data analysis
Fly bottles OD= 60 mm x Height= 140 mm; glass/polypropylene
Fly vials OD= 25 mm x Height= 85 mm; Borosilicate Glass
Graph-pad Prism software https://www.graphpad.com/scientific-software/prism/www.graphpad.com/scientific-software/prism/
ImageJ software https://imagej.net/downloads
Timer
Video camera with video recording set up Camcorder or a mobile phone camera will work
For Fly Aspirator:
Cotton Absorbent, autoclaved
Parafilm Sigma-aldrich #P7793
Pipette tips 200 µL or 1000 µL, choose depeding on outer diameter of the silicone tube
Silicone/rubber tube length= 30-50 cm. The tube should be odorless
Composition of Fly food:
Ingredients (amount for 1 L of food)
Agar (8 g) SRL # 19661 (CAS : 9002-18-0)
Cornflour (80 g) Organic, locally procured
D-Glucose (20 g) SRL # 51758 (CAS: 50-99-7)
Propionic acid (4 g) SRL # 43883 (CAS: 79-09-4)
Sucrose (40 g) SRL # 90701 (CAS: 57-50-1)
Tego (Methyl para hydroxy benzoate) (1.25 g) SRL # 60905 (CAS: 5026-62-0)
Yeast Powder (10 g) HIMEDIA # RM027
Fly lines used in the experiments in this study:
Wild type (Canton S or CS) BDSC # 64349
w1118 BDSC # 3605
w[1118]; Fmr1[Δ50M]/TM6B, Tb[+] BDSC # 6930
w[*]; Fmr1[Δ113M]/TM6B, Tb[1] BDSC # 67403
MB247-GAL4 (Gaurav Das, NCCS Pune, India) BDSC # 50742
LN1-GAL4 NP1227, NP consortium, Japan
row-shRNA BDSC # 25971

References

  1. American Psychiatric Association. . American Psychiatric Association DSM-5 Task Force Diagnostic and statistical manual of mental disorders: DSM-5TM, 5th ed. , (2013).
  2. Zeidan, J., et al. Global prevalence of autism: A systematic review update. Autism Res. 15 (5), 778 (2022).
  3. Lordan, R., Storni, C., De Benedictis, C. A. Autism spectrum disorders: diagnosis and treatment. Autism Spectr Disord. , (2021).
  4. Horev, G., et al. Dosage-dependent phenotypes in models of 16p11.2 lesions found in autism. Proc Natl Acad Sci USA. 108 (41), 17076-17081 (2011).
  5. Bey, A. L., Jiang, Y. Overview of mouse models of autism spectrum disorders. Curr Protoc Pharmacol. 66 (1), 1 (2014).
  6. Fetit, R., Price, D. J., Lawrie, S. M., Johnstone, M. Understanding the clinical manifestations of 16p11.2 deletion syndrome: a series of developmental case reports in children. Psychiatr Genet. 30 (5), 136-140 (2020).
  7. Nicolini, C., Fahnestock, M. The valproic acid-induced rodent model of autism. Exp Neurol. 299, 217-227 (2018).
  8. Tartaglione, A. M., Schiavi, S., Calamandrei, G., Trezza, V. Prenatal valproate in rodents as a tool to understand the neural underpinnings of social dysfunctions in autism spectrum disorder. Neuropharmacology. 159, 107477 (2019).
  9. Reiter, L. T., Potocki, L., Chien, S., Gribskov, M., Bier, E. A systematic analysis of human disease-associated gene sequences in Drosophilamelanogaster. Genome Res. 11 (6), 1114-1125 (2001).
  10. Coll-Tane, M., Krebbers, A., Castells-Nobau, A., Zweier, C., Schenck, A. Intellectual disability and autism spectrum disorders "on the fly": Insights from Drosophila. DMM Dis Model Mech. 12 (5), 1-16 (2019).
  11. Tian, Y., Zhang, Z. C., Han, J. Drosophila studies on autism spectrum disorders. Neurosci Bull. 33 (6), 737-746 (2017).
  12. Ueoka, I., Pham, H. T. N., Matsumoto, K., Yamaguchi, M. Autism spectrum disorder-related syndromes: Modeling with Drosophila and rodents. Int J Mol Sci. 20 (17), 1-24 (2019).
  13. Yost, R. T., et al. Abnormal social interactions in a Drosophila mutant of an autism candidate gene: Neuroligin 3. Int J Mol Sci. 21 (13), 1-20 (2020).
  14. Wise, A., et al. Drosophila mutants of the autism candidate gene neurobeachin (rugose) exhibit neuro-developmental disorders, aberrant synaptic properties, altered locomotion, impaired adult social behavior and activity patterns. J Neurogenet. 29 (2-3), 135-143 (2015).
  15. Koemans, T. S., et al. Functional convergence of histone methyltransferases EHMT1 and KMT2C involved in intellectual disability and autism spectrum disorder. PLoS Genet. 13 (10), e1006864 (2017).
  16. Tauber, J. M., Vanlandingham, P. A., Zhang, B. Elevated levels of the vesicular monoamine transporter and a novel repetitive behavior in the Drosophila model of fragile X syndrome. PLoS One. 6 (11), e27100 (2011).
  17. Iyer, J., et al. Pervasive genetic interactions modulate neurodevelopmental defects of the autism-associated 16p11.2 deletion in Drosophilamelanogaster. Nat Commun. 9 (1), 1-19 (2018).
  18. Palacios-Muñoz, A., et al. Mutations in trpγ, the homologue of TRPC6 autism candidate gene, causes autism-like behavioral deficits in Drosophila. Mol Psychiatry. 27 (8), 3328-3342 (2022).
  19. Hahn, N., et al. Monogenic heritable autism gene neuroligin impacts Drosophila social behaviour. Behav Brain Res. 252, 450-457 (2013).
  20. Stessman, H. A. F., et al. Disruption of POGZ is associated with intellectual disability and autism spectrum disorders. Am J Hum Genet. 98 (3), 541-552 (2016).
  21. Hope, K. A., et al. The Drosophila gene sulfateless modulates autism-like behaviors. Front Genet. 10, 574 (2019).
  22. Stessman, H. A. F., et al. Targeted sequencing identifies 91 neurodevelopmental-disorder risk genes with autism and developmental-disability biases. Nat Genet. 49 (4), 515-526 (2017).
  23. Fenckova, M., et al. Habituation learning is a widely affected mechanism in Drosophila models of intellectual disability and autism spectrum disorders. Biol Psychiatry. 86 (4), 294-305 (2019).
  24. Trannoy, S., Chowdhury, B., Kravitz, E. A. Handling alters aggression and "loser" effect formation in Drosophilamelanogaster. Learn Mem. 22 (2), 64-68 (2015).
  25. Anderson, D. J. Circuit modules linking internal states and social behaviour in flies and mice. Nat Rev Neurosci. 17 (11), 692-704 (2016).
  26. Flanigan, M. E., Russo, S. J. Recent advances in the study of aggression. Neuropsychopharmacology. 44 (2), 241-244 (2018).
  27. Sun, Y., et al. Social attraction in Drosophila is regulated by the mushroom body and serotonergic system. Nat Commun. 11 (1), 1-14 (2020).
  28. Nilsen, S. P., Chan, Y. B., Huber, R., Kravitz, E. A. Gender-selective patterns of aggressive behavior in Drosophilamelanogaster. Proc Natl Acad Sci USA. 101 (33), 12342-12347 (2004).
  29. Kravitz, E. A., Fernandez, M. d. e. l. a. P. Aggression in Drosophila. Behav Neurosci. 129 (5), 549-563 (2015).
  30. Chen, S., Lee, A. Y., Bowens, N. M., Huber, R., Kravitz, E. A. Fighting fruit flies: a model system for the study of aggression. Proc Natl Acad Sci USA. 99 (8), 5664-5668 (2002).
  31. Zwarts, L., Versteven, M., Callaerts, P. Genetics and neurobiology of aggression in Drosophila. Fly (Austin). 6 (1), 35-48 (2012).
  32. Mundiyanapurath, S., Certel, S., Kravitz, E. A. Studying aggression in Drosophila (fruit flies). J Vis Exp. (2), e155 (2007).
  33. Agrawal, P., Kao, D., Chung, P., Looger, L. L. The neuropeptide Drosulfakinin regulates social isolation-induced aggression in Drosophila. J Exp Biol. 223 (2), 207407 (2020).
  34. Wang, L., Dankert, H., Perona, P., Anderson, D. J. A common genetic target for environmental and heritable influences on aggressiveness in Drosophila. Proc Natl Acad Sci USA. 105 (15), 5657-5663 (2008).
  35. Simon, A. F., et al. A simple assay to study social behavior in Drosophila: Measurement of social space within a group. Genes Brain Behav. 11 (2), 243-252 (2012).
  36. Corthals, K., et al. Neuroligins Nlg2 and Nlg4 affect social behavior in Drosophilamelanogaster. Front Psychiatry. 8, 113 (2017).
  37. Cao, H., Tang, J., Liu, Q., Huang, J., Xu, R. Autism-like behaviors regulated by the serotonin receptor 5-HT2B in the dorsal fan-shaped body neurons of Drosophilamelanogaster. Eur J Med Res. 27 (1), 1-15 (2022).
  38. Kaur, K., Simon, A. F., Chauhan, V., Chauhan, A. Effect of bisphenol A on Drosophilamelanogaster behavior – A new model for the studies on neurodevelopmental disorders. Behav Brain Res. 284, 77-84 (2015).
  39. Shilpa, O., Anupama, K. P., Antony, A., Gurushankara, H. P. Lead (Pb)-induced oxidative stress mediates sex-specific autistic-like behaviour in Drosophilamelanogaster. Mol Neurobiol. 58 (12), 6378-6393 (2021).
  40. Dockendorff, T. C., et al. Drosophila lacking dfmr1 activity show defects in crcadian output and fail to maintain courtship interest. Neuron. 34 (6), 973-984 (2002).
  41. Andrew, D. R., et al. Spontaneous motor-behavior abnormalities in two Drosophila models of neurodevelopmental disorders. J Neurogenet. 35 (1), 1-22 (2021).
  42. Barradale, F., Sinha, K., Lebestky, T. Quantification of Drosophila grooming behavior. J Vis Exp. (125), e55231 (2017).
  43. Qiao, B., Li, C., Allen, V. W., Shirasu-Hiza, M., Syed, S. Automated analysis of long-term grooming behavior in Drosophila using a k-nearest neighbors classifier. Elife. 7, e34497 (2018).
  44. Webb, S. J., et al. Toddlers with elevated autism symptoms show slowed habituation to faces. Child Neuropsychol. 16 (3), 255-278 (2010).
  45. Kleinhans, N. M., et al. Reduced neural habituation in the amygdala and social impairments in autism spectrum disorders. Am J Psychiatry. 166 (4), 467-475 (2009).
  46. Ethridge, L. E., et al. Reduced habituation of auditory evoked potentials indicate cortical hyper-excitability in Fragile X Syndrome. Transl Psychiatry. 6 (4), e787-e787 (2016).
  47. McDiarmid, T. A., Bernardos, A. C., Rankin, C. H. Habituation is altered in neuropsychiatric disorders-A comprehensive review with recommendations for experimental design and analysis. Neurosci Biobehav Rev. 80, 286-305 (2017).
  48. Kuiper, M. W. M., Verhoeven, E. W. M., Geurts, H. M. Stop making noise! Auditory sensitivity in adults with an autism spectrum disorder diagnosis: physiological habituation and subjective detection thresholds. J Autism Dev Disord. 49 (5), 2116-2128 (2019).
  49. McDiarmid, T. A., et al. Systematic phenomics analysis of autism-associated genes reveals parallel networks underlying reversible impairments in habituation. Proc Natl Acad Sci USA. 117 (1), 656-667 (2020).
  50. Lyons-Warren, A. M., Herman, I., Hunt, P. J., Arenkiel, B. A systematic-review of olfactory deficits in neurodevelopmental disorders: From mouse to human. Neurosci Biobehav Rev. 125, 110-121 (2021).
  51. Kepler, L. D., McDiarmid, T. A., Rankin, C. H. Habituation in high-throughput genetic model organisms as a tool to investigate the mechanisms of neurodevelopmental disorders. Neurobiol Learn Mem. 171, 107208 (2020).
  52. Huang, T. N., Yen, T. L., Qiu, L. R., Chuang, H. C., Lerch, J. P., Hsueh, Y. P. Haploinsufficiency of autism causative gene Tbr1 impairs olfactory discrimination and neuronal activation of the olfactory system in mice. Mol Autism. 10 (1), 1-16 (2019).
  53. Twick, I., Lee, J. A., Ramaswami, M. Chapter 1 – Olfactory habituation in Drosophila-odor encoding and its plasticity in the antennal lobe. Prog Brain Res. 208, 3-38 (2014).
  54. Das, S., et al. Plasticity of local GABAergic interneurons drives olfactory habituation. Proc Natl Acad Sci USA. 108 (36), E646-E654 (2011).
  55. Devaud, J. M., Acebes, A., Ferrús, A. Odor exposure causes central adaptation and morphological changes in selected olfactory glomeruli in Drosophila. J Neurosci. 21 (16), 6274-6282 (2001).
  56. Ayyub, C., Paranjape, J., Rodrigues, V., Siddiqi, O. Genetics of olfactory behavior in Drosophilamelanogaster. J Neurogenet. 6 (4), 243-262 (1990).
  57. Michel, C. I., Kraft, R., Restifo, L. L. Defective neuronal development in the mushroom bodies of Drosophila fragile X mental retardation 1 mutants. J Neurosci. 24 (25), 5798-5809 (2004).
  58. Fernandez, M. P., Trannoy, S., Certel, S. J. Fighting flies: quantifying and analyzing Drosophila aggression. Cold Spring Harb Protoc. 2023 (9), 107985 (2023).
  59. Dankert, H., Wang, L., Hoopfer, E. D., Anderson, D. J., Perona, P. Automated monitoring and analysis of social behavior in Drosophila. Nat Methods. 6 (4), 297-303 (2009).
  60. Simon, A. F., et al. Drosophila vesicular monoamine transporter mutants can adapt to reduced or eliminated vesicular stores of dopamine and serotonin. Genetics. 181 (2), 525-541 (2008).
  61. McNeil, A. R., et al. Conditions affecting social space in Drosophilamelanogaster. J Vis Exp. (105), e53242 (2015).
  62. Schneider, C. A., Rasband, W. S., Eliceiri, K. W. NIH Image to ImageJ: 25 years of image analysis. Nat Methods. 9 (7), 671-675 (2012).
  63. Drozd, M., Bardoni, B., Capovilla, M. Modeling Fragile X Syndrome in Drosophila. Front Mol Neurosci. 11, 124 (2018).
  64. Trajković, J., et al. Drosophilamelanogaster as a model to study Fragile X-associated disorders. Genes (Basel). 14 (1), 87 (2022).
  65. Gailey, D. A., Jackson, F. R., Siegel, R. W. Male courtship in Drosophila: the conditioned response to immature males and its genetic control. Genetics. 102 (4), 771-782 (1982).
  66. Cannon, R. J. C. Drosophila courtship behaviour. Courtship and Mate-finding Insects. , 1-13 (2023).
  67. von Philipsborn, A. C., Shohat-Ophir, G., Rezaval, C. Single-pair courtship and competition assays in Drosophila. Cold Spring Harb Protoc. 2023 (7), 450-459 (2023).
  68. Keleman, K., Krüttner, S., Alenius, M., Dickson, B. J. Function of the Drosophila CPEB protein Orb2 in long-term courtship memory. Nat Neurosci. 10 (12), 1587-1593 (2007).
  69. Koemans, T. S., et al. Drosophila courtship conditioning as a measure of learning and memory. J Vis Exp. (124), e55808 (2017).
  70. Fitzsimons, H. L., Scott, M. J. Genetic modulation of Rpd3 expression impairs long-term courtship memory in Drosophila. PLoS One. 6 (12), e29171 (2011).
  71. Kubli, E. My favorite molecule. The sex-peptide. BioEssays. 14 (11), 779-784 (1992).
  72. Dierick, H. A. A method for quantifying aggression in male Drosophilamelanogaster. Nat Protoc. 2 (11), 2712-2718 (2007).

Play Video

Cite This Article
Dey, S., Mondal, P., Mandal, S., Sasmal, S., Chakraborty, N., Das, A. Paradigms for Behavioral Assessment in Drosophila Model of Autism Spectrum Disorder. J. Vis. Exp. (211), e66649, doi:10.3791/66649 (2024).

View Video