Die Autismus-Spektrum-Störung (ASS) ist mit einer Beeinträchtigung des sozialen und kommunikativen Verhaltens und dem Auftreten von sich wiederholendem Verhalten verbunden. Um die Wechselbeziehung zwischen ASD-Genen und Verhaltensdefiziten im Drosophila-Modell zu untersuchen, werden in dieser Arbeit fünf Verhaltensparadigmen zur Untersuchung von sozialem Abstand, Aggression, Balz, Pflege und Gewöhnungsverhalten beschrieben.
Die Autismus-Spektrum-Störung (ASS) umfasst eine heterogene Gruppe von neurologischen Entwicklungsstörungen mit häufigen Verhaltenssymptomen, darunter Defizite in der sozialen Interaktion und Kommunikationsfähigkeit, verstärkte eingeschränkte oder sich wiederholende Verhaltensweisen und in einigen Fällen auch Lernbehinderung und motorisches Defizit. Drosophila diente als beispielloser Modellorganismus für die Modellierung einer großen Anzahl menschlicher Krankheiten. Da viele Gene mit ASS in Verbindung gebracht wurden, haben sich Fruchtfliegen als leistungsstarke und effiziente Methode erwiesen, um die Gene zu testen, die angeblich an der Störung beteiligt sind. Da Hunderte von Genen mit unterschiedlichen funktionellen Rollen an ASD beteiligt sind, ist ein einzelnes genetisches Fliegenmodell von ASD nicht möglich; Stattdessen sind einzelne genetische Mutanten, Gen-Knockdowns oder Überexpressions-basierte Studien der Fliegenhomologe von ASD-assoziierten Genen die üblichen Mittel, um Einblicke in die molekularen Signalwege zu gewinnen, die diesen Genprodukten zugrunde liegen. In Drosophila gibt es eine Vielzahl von Verhaltenstechniken, die ein leichtes Auslesen von Defiziten in bestimmten Verhaltenskomponenten ermöglichen. Es hat sich gezeigt, dass der Assay des Sozialraums sowie Aggressions- und Balztests bei Fliegen nützlich sind, um Defekte in der sozialen Interaktion oder Kommunikation zu beurteilen. Das Fellpflegeverhalten bei Fliegen ist eine hervorragende Lektüre für sich wiederholendes Verhalten. Der Gewöhnungsassay wird bei Fliegen verwendet, um die Fähigkeit zum Gewöhnungslernen abzuschätzen, die bei einigen ASD-Patienten beeinträchtigt ist. Eine Kombination dieser Verhaltensparadigmen kann verwendet werden, um eine gründliche Beurteilung des menschlichen ASD-ähnlichen Krankheitszustands bei Fliegen vorzunehmen. Unter Verwendung von Fmr1-mutierten Fliegen, der Rekapitulation des Fragile-X-Syndroms beim Menschen und des POGZ-homologen Row-Knockdowns in Fliegenneuronen haben wir quantifizierbare Defizite in den Bereichen Social spacing, Aggression, Balzverhalten, Pflegeverhalten und Gewöhnung gezeigt. Diese Verhaltensparadigmen werden hier in ihrer einfachsten und unkompliziertesten Form demonstriert, mit der Annahme, dass dies ihre breite Verwendung für die Forschung zu ASS und anderen neurologischen Entwicklungsstörungen in Fliegenmodellen erleichtern würde.
Die Autismus-Spektrum-Störung (ASS) umfasst eine heterogene Gruppe von neurologischen Störungen. Sie umfasst eine Reihe komplexer neurologischer Entwicklungsstörungen, die durch multikontextuelle und anhaltende Defizite in der sozialen Kommunikation und sozialen Interaktion sowie durch das Vorhandensein von eingeschränkten, sich wiederholenden Verhaltens- und Aktivitätsmustern und -interessen gekennzeichnetsind 1. Nach Angaben der Weltgesundheitsorganisation (WHO) wird weltweit bei 1 von 100 Kindern ASS diagnostiziert, wobei das Verhältnis von Männern zu Frauen bei 4,22 liegt. Die Erkrankung macht sich im zweiten oder dritten Lebensjahr bemerkbar. ASD-Kinder zeigen ein mangelndes Interesse an sozial-emotionaler Reziprozität, nonverbaler Kommunikation und Beziehungsfähigkeit. Sie zeigen sich wiederholende Verhaltensweisen wie stereotype motorische Bewegungen, unflexible und ritualisierte Routinebefolgung und intensive Konzentration auf eingeschränkte Interessen. ASD-Kinder zeigen ein hohes Maß an Reaktion auf Berührung, Geruch, Geräusche und Geschmack, während die Schmerz- und Temperaturreaktion vergleichsweise gering ist1. Die Penetranz dieser Störung ist auch bei verschiedenen Patienten, die an ASS leiden, unterschiedlich und daher nimmt die Variabilität zu.
Die derzeitige klinische Diagnose von ASD basiert auf der Verhaltensbewertung der Personen, da es keinen bestätigenden, auf Biomarkern basierenden oder gemeinsamen genetischen Test gibt, der alle Formen von ASDabdeckt 3. Die Entschlüsselung der genetischen und neurophysiologischen Grundlagen wäre hilfreich, um Behandlungsstrategien zu entwickeln. In den letzten zehn Jahren hat eine große Anzahl von Forschungsarbeiten zur Identifizierung von Hunderten von Genen geführt, die entweder gelöscht oder mutiert sind oder deren Expressionsniveaus bei ASD-Patienten verändert sind. Die laufende Forschung konzentriert sich auf die Validierung des Beitrags dieser Kandidatengene anhand von Modellorganismen wie der Maus oder Fruchtfliege, bei denen diese Gene ausgeschaltet oder ausgeschaltet werden, gefolgt von Tests auf ASD-ähnliche Verhaltensdefizite und der Aufklärung der zugrunde liegenden genetischen und molekularen Signalwege, die die Anomalien verursachen. Ein Mausmodell, das Kopienzahlvariationen (CNVs) in den humanen Chromosomenloci 16p11.2 rekapituliert, zeigt einige der ASD-Verhaltensdefekte 4,5,6. Die pränatale Exposition gegenüber einem teratogenen Medikament, Valproinsäure (VPA), ist ein weiteres Mausmodell, das Merkmale aufweist, die der menschlichen ASDähneln 7,8. Darüber hinaus gibt es eine Reihe von Mausmodellen, die genetischen Syndrom-assoziierten Autismus aufweisen, z. B. syndromale Einzelgenmodelle, die durch Mutationen in Fmr1, Pten, Mecp2, Cacna1c verursacht werden, und nicht-syndromale Einzelgenmodelle, die durch Mutationen in Genen wie Cntnap2, Shank, Neurexin oder Neuroligin-Genen verursacht werden5.
Die Fruchtfliege (Drosophila melanogaster) ist ein weiterer prominenter Modellorganismus für die Untersuchung der zellulären, molekularen und genetischen Grundlagen einer Vielzahl von menschlichen Erkrankungen9, einschließlich ASD. Drosophila und Mensch teilen hochkonservierte biologische Prozesse auf molekularer, zellulärer und synaptischer Ebene. Fruchtfliegen wurden erfolgreich in ASD-Studieneingesetzt 10,11,12 um Gene zu charakterisieren, die mit ASDs in Verbindung stehen, und ihre genaue Rolle bei der Synaptogenese, der synaptischen Funktion und Plastizität, dem Aufbau neuronaler Schaltkreise und der Reifung zu entschlüsseln; Es wurde festgestellt, dass Fliegenhomologe von ASD-assoziierten Genen eine Rolle bei der Regulation von sozialem und/oder repetitivem Verhalten spielen 11,13,14,15,16,17,18,19,20,21. Die Fruchtfliege hat auch als Modell für das Screening von ASD-Genen und deren Varianten gedient 15,22,23. Die größte Herausforderung in der ASD-Forschung an Fliegen besteht darin, dass es im Gegensatz zu anderen Krankheitsmodellen kein einzelnes ASD-Fliegenmodell gibt. Um die Auswirkungen von Mutationen oder dem Ausschalten eines bestimmten ASD-Gens zu verstehen, muss ein Forscher validieren, ob die Verhaltensphänotypen die Symptome von ASD-Patienten ausreichend nachahmen, und dann dazu übergehen, die molekularen oder physiologischen Grundlagen der Phänotypen zu verstehen.
Daher ist der Nachweis von ASD-ähnlichen Phänotypen für die ASD-Forschung im Fliegenmodell von entscheidender Bedeutung. Im Laufe der Jahre ist eine Handvoll Verhaltenstechniken entstanden, die es uns ermöglichen, Anomalien wie Defizite im Sozialverhalten/in der Interaktion, in der Kommunikation, in sich wiederholenden Verhaltensweisen und in der Reaktionsfähigkeit auf Reize zu erkennen. Darüber hinaus wurden in verschiedenen Labors verschiedene Modifikationen und Upgrades dieser Verhaltenstechniken vorgenommen, um spezifischen Anforderungen wie Upscaling, Automatisierung von Assays, Auslesungen, Quantifizierungs- und Vergleichsmethoden gerecht zu werden. In diesem Videoartikel werden die grundlegendsten Versionen von fünf Verhaltensparadigmen demonstriert, die in Kombination verwendet werden können, um ASS-ähnliche Verhaltensergebnisse auf einfachste Weise zu erkennen.
Aggression ist ein evolutionär konserviertes angeborenes Verhalten, das das Überleben und die Fortpflanzung beeinflusst24. Aggressives Verhalten gegenüber Artgenossen wird sowohl durch die “Motivation zur Sozialisation”25,26 als auch durch die “Kommunikation”27 beeinflusst, die beide bei ASS-Betroffenen beeinträchtigt sind. Aggressives Verhalten ist bei Drosophila gut beschrieben und seine Quantifizierbarkeit durch den robusten Aggressionsassay 28,29,30 und eine gut verstandene genetische und neurobiologische Basis 31 macht es zu einem geeigneten Verhaltensparadigma32 für die Beurteilung des ASD-Phänotyps in einem Fliegenmodell. Aggression wird durch soziale Isolation abseits eines sozialen Umfelds beeinflusst, was zu verstärkter Aggression führt; Das Gleiche wurde beobachtet, wenn männliche Fliegen einige Tage lang isoliert gehalten wurden33,34. Ein weiterer Verhaltensassay, der die Geselligkeit bei Fliegen quantifiziert, ist der Social Space Assay35, der die Entfernungen zwischen den nächsten Nachbarn und die Abstände zwischen den Fliegen in einer kleinen Gruppe von Fliegen misst, wodurch er sich perfekt zum Testen der Rollen von ASD-Gen-Orthologen in Fliegen 12,21,36,37 sowie umweltinduzierten ASD-Fliegenmodellen38 eignet. 39. Urheberrecht
Der Drosophila-Balztest ist ein weiteres Verhaltensparadigma, das häufig verwendet wird, um Veränderungen in sozialen und kommunikativen Fähigkeiten durch Schaltkreis- oder Genmanipulation zu testen, einschließlich Autismus-bezogener Gene 18,19,21,40. Sich wiederholende Verhaltensmuster sind bei ASD-Patienten weit verbreitet, was sich bei Fliegen durch Pflegeverhalten widerspiegelt – eine Reihe von unterschiedlichen, stereotypen Handlungen, die zum Reinigen und zu anderen Zwecken ausgeführt werden. Es wurde erfolgreich eingesetzt, um die Auswirkungen von ASD-Genmutationen bei Fliegen21,41 sowie die Exposition gegenüber Chemikalien38,39 zu untersuchen. Mehrere Fortschritte und Automatisierungen im Assay wurden bereits vor 16,41,42,43 beschrieben; Hier demonstrieren wir das grundlegendste Assay-Muster, das einfach zu übernehmen und zu quantifizieren ist.
Es ist bekannt, dass ASD die Gewöhnungsfähigkeit, das Lernen und das Gedächtnis bei einigen Patientenbeeinflusst 44,45,46,47,48,49,50, ASD-Modellorganismen 51,52 und auch Defizite in verschiedenen Geruchsverhaltensweisen verursacht50. Die Gewöhnung an Drosophila-Light-Off-Sprünge wurde zuvor verwendet, um nach ASD-Genenzu suchen 23. Die Gewöhnung kann durch ein einfaches Verfahren des olfaktorischen Gewöhnungsassays 53,54,55 bestimmt werden. Wir beschreiben das Verfahren zur Induktion der olfaktorischen Gewöhnung und testen das Ergebnis unter Verwendung eines klassischen Y-Labyrinth-basierten binären Odor-Choice-Assays56, der zur Erkennung von Defekten in der Gewöhnungsstörung bei ASD-Genmutanten oder Gen-Knockdown-Bedingungen verwendet werden kann. Um zu beurteilen, ob der Einfluss einer Mutation (oder eines Gen-Knock-downs) oder einer pharmakologischen Behandlung auf das Verhalten einer Fliege auf einen ASD-ähnlichen Phänotyp hinausläuft, kann man eine Kombination dieser 5 hier beschriebenen Assays verwenden.
Drosophila wird aufgrund eines hohen Grades an Konservierung von Gensequenzen zwischen Fliegen- und menschlichen Krankheitsgenen als guter Modellorganismus für die Erforschung humaner neurologischer Erkrankungen verwendet9. Zahlreiche robuste Verhaltensparadigmen machen es zu einem attraktiven Modell für die Untersuchung von Phänotypen, die sich in Mutanten manifestieren, die menschliche Krankheiten rekapitulieren. Da Hunderte von Genen an der Autismus-Spektrum-Störung (ASS) beteiligt…
The authors have nothing to disclose.
Wir danken Mani Ramaswami (NCBS, Bangalore) und Baskar Bakthavachalu (IIT Mandi) für das Setup des Gewöhnungs- und Geruchsauswahl-Assays, Pavan Agrawal (MAHE) für seine wertvollen Vorschläge zum Aggressions-Assay, Amitava Majumdar (NCCS, Pune) für das Teilen seines Prototyps der Balz-Assay-Kammer und der Fmr1-Mutantenfliegenschnüre und Gaurav Das (NCCS, Pune) für die Bereitstellung der MB247-GAL4-Linie. Wir danken dem Bloomington Drosophila Stock Center (BDSC, Indiana, USA), dem National Institute of Genetics (NIG, Kyoto, Japan), der Banaras Hindu University (BHU, Varanasi, Indien) und dem National Center for Biological Science (NCBS, Bangalore, Indien) für die Drosophila-Linien . Die Arbeit im Labor wurde durch Zuschüsse von SERB-DST (ECR/2017/002963) an AD, ein DBT Ramalingaswami-Stipendium für AD (BT/RLF/Re-entry/11/2016) und institutionelle Unterstützung vom IIT Kharagpur, Indien, unterstützt. SD und SM erhalten Ph.D.-Stipendien vom CSIR-Senior Research Fellowship; PM erhält ein Ph.D.-Stipendium von MHRD, Indien.
Aggression arena: | |||
Standard 24-well plate made of transparent polystyrene | 12 cm x 8 cm x 2 cm. Diameter of a single well= 18 cm. Sigma-aldrich #Z707791; depth = 1 cm | ||
Transparent plastic/acrylic sheet | Alternative: a perforated lid of a cell culture plate | ||
Social Space Assay: | |||
Binder clips | 19 mm | ||
Glass sheets and acrylic sheets of customized sizes | Thickness = 5 mm | ||
Courtship assay: | |||
Nut and bolt with threading | |||
Perspex sheets of customized shapes | i) Lid: A custom-made round transparent Perspex disk (2-3 mm thickness, 70 mm diameter) with one loading hole at the peripheral region and another screw hole at the center (diameter ~ 3 mm for each); ii) A second transparent thicker Perspex disk (3-4 mm thickness, 70 mm diameter), with 6-8 perforations of diameter 15 mm, equidistant from the center; iii) Base: Same as lid except without the loading hole | ||
Grooming assay: | |||
Diffused glass-covered LED panel | 10–15-Watt ceiling mountable LED panel | ||
Habituation and Y-maze assay | |||
Climbing chambers | x2, Borosilicate glass | ||
Adapter for connecting Y-maze with entry vial | Perspex, custom made, measurements in Figure 5A | ||
Clear reagent bottles | Borosil #1500017 | ||
Gas washing stopper | Borosil #1761021 | ||
Glass vial | OD= 25 mm x Height= 85 mm; Borosilicate Glass | ||
Odorant (Ethyl Butyrate) | Merck #E15701 | ||
Paraffin wax (liquid) light | SRL #18211 | ||
Roller clamps | Polymed #14098 | ||
Silicone tubes | OD = 0.6 cm, ID = 0.3 cm; roller clamps for flow control | ||
Vacuum pump | Hana #HN-648 (Any aquarium pump with flow direction reversed manually) | ||
Y-maze | Borosilicate glass | ||
Y-shaped glass tube (borosilicate glass) | Custom made, measurements in Figure 5A | ||
Common items: | |||
Any software for video playback (eg.- VLC media player) | https://www.videolan.org/vlc/ | ||
Computer for video data analysis | |||
Fly bottles | OD= 60 mm x Height= 140 mm; glass/polypropylene | ||
Fly vials | OD= 25 mm x Height= 85 mm; Borosilicate Glass | ||
Graph-pad Prism software | https://www.graphpad.com/scientific-software/prism/www.graphpad.com/scientific-software/prism/ | ||
ImageJ software | https://imagej.net/downloads | ||
Timer | |||
Video camera with video recording set up | Camcorder or a mobile phone camera will work | ||
For Fly Aspirator: | |||
Cotton | Absorbent, autoclaved | ||
Parafilm | Sigma-aldrich #P7793 | ||
Pipette tips | 200 µL or 1000 µL, choose depeding on outer diameter of the silicone tube | ||
Silicone/rubber tube | length= 30-50 cm. The tube should be odorless | ||
Composition of Fly food: | |||
Ingredients (amount for 1 L of food) | |||
Agar (8 g) | SRL # 19661 (CAS : 9002-18-0) | ||
Cornflour (80 g) | Organic, locally procured | ||
D-Glucose (20 g) | SRL # 51758 (CAS: 50-99-7) | ||
Propionic acid (4 g) | SRL # 43883 (CAS: 79-09-4) | ||
Sucrose (40 g) | SRL # 90701 (CAS: 57-50-1) | ||
Tego (Methyl para hydroxy benzoate) (1.25 g) | SRL # 60905 (CAS: 5026-62-0) | ||
Yeast Powder (10 g) | HIMEDIA # RM027 | ||
Fly lines used in the experiments in this study: | |||
Wild type (Canton S or CS) | BDSC # 64349 | ||
w1118 | BDSC # 3605 | ||
w[1118]; Fmr1[Δ50M]/TM6B, Tb[+] | BDSC # 6930 | ||
w[*]; Fmr1[Δ113M]/TM6B, Tb[1] | BDSC # 67403 | ||
MB247-GAL4 (Gaurav Das, NCCS Pune, India) | BDSC # 50742 | ||
LN1-GAL4 | NP1227, NP consortium, Japan | ||
row-shRNA | BDSC # 25971 |