Le trouble du spectre autistique (TSA) est associé à un comportement social et communicatif altéré et à l’émergence d’un comportement répétitif. Pour étudier l’interrelation entre les gènes TSA et les déficits comportementaux dans le modèle de la drosophile , cinq paradigmes comportementaux sont décrits dans cet article pour mesurer l’espacement social, l’agressivité, la parade nuptiale, le toilettage et le comportement d’habituation.
Le trouble du spectre autistique (TSA) englobe un groupe hétérogène de troubles neurodéveloppementaux avec des symptômes comportementaux communs, notamment des déficits dans l’interaction sociale et la capacité de communication, des comportements restreints ou répétitifs accrus, ainsi que, dans certains cas, des troubles d’apprentissage et un déficit moteur. La drosophile a servi d’organisme modèle sans précédent pour la modélisation d’un grand nombre de maladies humaines. Comme de nombreux gènes ont été impliqués dans les TSA, les mouches des fruits sont apparues comme un moyen puissant et efficace de tester les gènes supposément impliqués dans la maladie. Comme des centaines de gènes, avec des rôles fonctionnels variés, sont impliqués dans les TSA, un seul modèle génétique de mouche TSA est irréalisable ; au lieu de cela, les mutants génétiques individuels, les inactivations de gènes ou les études basées sur la surexpression des homologues de mouches des gènes associés aux TSA sont les moyens courants d’obtenir des informations sur les voies moléculaires sous-jacentes à ces produits géniques. Une foule de techniques comportementales sont disponibles chez la drosophile qui permettent de lire facilement les déficits dans des composants comportementaux spécifiques. Le dosage de l’espace social et les essais d’agression et de parade nuptiale chez les mouches se sont révélés utiles pour évaluer les défauts d’interaction sociale ou de communication. Le comportement de toilettage chez les mouches est une excellente lecture du comportement répétitif. Le test d’habituation est utilisé chez les mouches pour estimer la capacité d’apprentissage de l’habituation, qui s’avère être affectée chez certains patients atteints de TSA. Une combinaison de ces paradigmes comportementaux peut être utilisée pour faire une évaluation approfondie de l’état pathologique humain de type TSA chez les mouches. En utilisant des mouches mutantes Fmr1 , récapitulant le syndrome de l’X fragile chez l’homme et l’inactivation de la rangée homologue POGZ dans les neurones des mouches, nous avons montré des déficits quantifiables dans l’espacement social, l’agressivité, le comportement de parade nuptiale, le comportement de toilettage et l’accoutumance. Ces paradigmes comportementaux sont démontrés ici dans leurs formes les plus simples et les plus directes, avec l’hypothèse que cela faciliterait leur utilisation généralisée pour la recherche sur les TSA et d’autres troubles neurodéveloppementaux dans les modèles de mouches.
Les troubles du spectre autistique (TSA) englobent un groupe hétérogène de troubles neurologiques. Elle comprend une gamme de troubles neuro-développementaux complexes caractérisés par des déficits multicontextuels et persistants dans la communication sociale et l’interaction sociale et la présence de modèles et d’intérêts comportementaux et d’activités restreints et répétitifs1. Selon l’Organisation mondiale de la santé (OMS), 1 enfant sur 100 est diagnostiqué avec un TSA dans le monde avec un ratio hommes-femmes de 4,22. La maladie devient évidente au cours de la deuxième ou de la troisième année de vie. Les enfants autistes montrent un manque d’intérêt pour la réciprocité socio-émotionnelle, la communication non verbale et les compétences relationnelles. Ils présentent des comportements répétitifs tels que des mouvements moteurs stéréotypés, un suivi de routine inflexible et ritualisé et une concentration intense sur des intérêts restreints. Les enfants atteints de TSA présentent un degré élevé de réponse au toucher, à l’odorat, au son et au goût, tandis que la réponse à la douleur et à la température est comparativement faible1. La pénétrance de ce trouble est également différente entre les différents patients souffrant de TSA et, par conséquent, la variabilité augmente.
Le diagnostic clinique actuel des TSA est basé sur l’évaluation comportementale des individus, car il n’existe pas de test génétique commun basé sur des biomarqueurs de confirmation qui couvre toutes les formes de TSA3. Décrypter les bases génétiques et neurophysiologiques serait utile pour cibler les stratégies de traitement. Au cours de la dernière décennie, un grand nombre de recherches ont abouti à l’identification de centaines de gènes qui sont soit supprimés, soit mutés, soit dont les niveaux d’expression sont modifiés chez les patients atteints de TSA. Les recherches en cours mettent l’accent sur la validation de la contribution de ces gènes candidats à l’aide d’organismes modèles comme la souris ou la mouche des fruits, dans lesquels ces gènes sont éliminés ou renversés, suivis de tests de déficits comportementaux de type TSA et d’élucidation des voies génétiques et moléculaires sous-jacentes à l’origine des anomalies. Un modèle murin récapitulant les variations du nombre de copies (CNV) dans les loci chromosomiques humains 16p11.2 montre certains des défauts comportementaux des TSA 4,5,6. L’exposition prénatale à un médicament tératogène, l’acide valproïque (APV), est un autre modèle murin décrivant des traits ressemblant à ceux des TSA humains 7,8. En outre, il existe une gamme de modèles murins qui présentent un autisme associé au syndrome génétique, par exemple, des modèles syndromiques monogéniques causés par des mutations dans Fmr1, Pten, Mecp2, Cacna1c et des modèles non syndromiques monogéniques causés par des mutations dans des gènes comme Cntnap2, Shank, Neurexin ou Neuroligin gènes 5.
La mouche des fruits (Drosophila melanogaster) est un autre organisme modèle important pour l’étude des bases cellulaires, moléculaires et génétiques d’une pléthore de troubles humains9, y compris les TSA. La drosophile et l’homme partagent des processus biologiques hautement conservés aux niveaux moléculaire, cellulaire et synaptique. Les mouches des fruits ont été utilisées avec succès dans des études sur les TSA 10,11,12 pour caractériser les gènes liés aux TSA et déchiffrer leur rôle exact dans la synaptogenèse, la fonction et la plasticité synaptiques, l’assemblage des circuits neuronaux et la maturation ; Les homologues de mouches des gènes associés aux TSA ont joué un rôle dans la régulation du comportement social et/ou répétitif 11,13,14,15,16,17,18,19,20,21. La mouche des fruits a également servi de modèle pour le dépistage des gènes des TSA et de leurs variantes 15,22,23. Le plus grand défi dans la recherche sur les TSA chez les mouches est que, contrairement à d’autres modèles de maladies, il n’existe pas de modèle unique de mouche TSA. Pour comprendre l’impact des mutations ou de l’inactivation d’un gène spécifique de TSA, un chercheur doit valider si les phénotypes comportementaux imitent suffisamment les symptômes des patients atteints de TSA, puis procéder à la compréhension des fondements moléculaires ou physiologiques des phénotypes.
Par conséquent, la détection de phénotypes de type TSA est essentielle à la recherche sur les TSA dans le modèle de mouche. Une poignée de techniques comportementales ont émergé au fil des ans qui nous permettent de détecter des anomalies telles que des déficits dans le comportement/l’interaction sociale, la communication, les comportements répétitifs et la réactivité aux stimuli. De plus, plusieurs modifications et mises à niveau de ces techniques comportementales ont été apportées dans différents laboratoires pour répondre à des exigences spécifiques telles que la mise à l’échelle, l’automatisation des tests, les lectures, la quantification et les méthodes de comparaison. Dans cet article vidéo, les versions les plus basiques de cinq paradigmes comportementaux sont présentées, qui, en combinaison, peuvent être utilisés pour détecter les résultats comportementaux de type TSA de la manière la plus simple.
L’agression est un comportement inné conservé au cours de l’évolution qui affecte la survie et la reproduction24. Le comportement agressif envers les congénères est influencé par la « motivation à la socialisation »25,26 ainsi que par la « communication »27, les deux étant compromis chez les personnes atteintes de TSA. Le comportement agressif est bien décrit chez la drosophile et sa quantifiabilité grâce au test d’agression robuste 28,29,30 et à une base génétique et neurobiologique bien comprise31 en fait un paradigme comportemental approprié 32 pour évaluer le phénotype TSA dans un modèle de mouche. L’agression est influencée par l’isolement social loin d’un environnement social, ce qui conduit à une agressivité accrue ; La même chose a été observée lorsque les mouches mâles sont logées en isolement pendant quelques jours33,34. Un autre test comportemental qui quantifie la sociabilité chez les mouches est le Social Space Assay35, qui mesure les distances entre les voisins les plus proches et les distances entre les mouches dans un petit groupe de mouches, ce qui le rend parfaitement adapté pour tester les rôles des orthologues des gènes TSA chez les mouches 12,21,36,37 ainsi que chez les modèles de mouches TSA induites par l’environnement 38, 39. Planche à billets
Le test de parade nuptiale de la drosophile est un autre paradigme comportemental fréquemment utilisé pour tester l’altération des compétences sociales et de communication lors d’un circuit ou d’une manipulation génétique, y compris les gènes liés à l’autisme 18,19,21,40. Les modèles de comportement répétitifs sont répandus chez les patients atteints de TSA, ce qui est récapitulé chez les mouches par le comportement de toilettage – une série d’actions distinctes et stéréotypées effectuées pour le nettoyage et à d’autres fins. Il a été utilisé avec succès pour tester l’impact des mutations du gène TSA chez les mouches21,41 ainsi que l’exposition aux produits chimiques38,39. De multiples avancées et automatisations dans le test ont été décrites avant 16,41,42,43 ; Ici, nous démontrons le modèle de test le plus basique, qui est facile à adopter et à quantifier.
Les TSA sont connus pour avoir un impact sur la capacité d’accoutumance, d’apprentissage et de mémoire chez certains patients 44,45,46,47,48,49,50, organismes modèles TSA 51,52 et provoquent également des déficits dans différents comportements olfactifs50. L’habituation au saut lumineux de la drosophile a déjà été utilisée pour dépister les gènesTSA 23. L’habituation peut être mesurée par une méthode simple d’habituation olfactive 53,54,55. Nous décrivons la méthode pour induire l’habituation olfactive et analysons le résultat à l’aide d’un test binaire classique basé sur un labyrinthe en Y56 qui peut être utilisé pour détecter les défauts d’accoutumance dans le mutant du gène ASD ou l’inactivation du gène. Pour évaluer si l’impact d’une mutation (ou d’un inactivation génétique) ou d’un traitement pharmacologique sur le comportement d’une mouche équivaut à un phénotype de type TSA, on peut utiliser une combinaison de ces 5 tests décrits ici.
La drosophile est utilisée comme un excellent organisme modèle pour la recherche sur les troubles neurologiques humains en raison d’un haut degré de conservation des séquences génétiques entre les gènes de la mouche et de la maladie humaine9. De nombreux paradigmes comportementaux robustes en font un modèle attrayant pour l’étude des phénotypes se manifestant chez les mutants récapitulant les maladies humaines. Comme des centaines de gènes sont impliqués dans les troubles…
The authors have nothing to disclose.
Nous sommes immensément reconnaissants à Mani Ramaswami (NCBS, Bangalore) et Baskar Bakthavachalu (IIT Mandi) pour la configuration du test d’accoutumance et de choix d’odeur, à Pavan Agrawal (MAHE) pour ses précieuses suggestions sur le test d’agression, à Amitava Majumdar (NCCS, Pune) pour avoir partagé son prototype de chambre de test de parade nuptiale et ses lignes de mouches mutantes Fmr1 , et à Gaurav Das (NCCS, Pune) pour le partage de la ligne MB247-GAL4. Nous remercions le Bloomington Drosophila Stock Center (BDSC, Indiana, États-Unis), l’Institut national de génétique (NIG, Kyoto, Japon), l’Université hindoue de Banaras (BHU, Varanasi, Inde) et le National Center for Biological Science (NCBS, Bangalore, Inde) pour les lignées de drosophile . Les travaux en laboratoire ont été soutenus par des subventions de SERB-DST (ECR/2017/002963) à AD, une bourse DBT Ramalingaswami attribuée à AD (BT/RLF/Re-entry/11/2016) et un soutien institutionnel de l’IIT Kharagpur, en Inde. SD et SM reçoivent des bourses de doctorat du CSIR-Senior Research Fellowship ; PM reçoit une bourse de doctorat du MHRD, en Inde.
Aggression arena: | |||
Standard 24-well plate made of transparent polystyrene | 12 cm x 8 cm x 2 cm. Diameter of a single well= 18 cm. Sigma-aldrich #Z707791; depth = 1 cm | ||
Transparent plastic/acrylic sheet | Alternative: a perforated lid of a cell culture plate | ||
Social Space Assay: | |||
Binder clips | 19 mm | ||
Glass sheets and acrylic sheets of customized sizes | Thickness = 5 mm | ||
Courtship assay: | |||
Nut and bolt with threading | |||
Perspex sheets of customized shapes | i) Lid: A custom-made round transparent Perspex disk (2-3 mm thickness, 70 mm diameter) with one loading hole at the peripheral region and another screw hole at the center (diameter ~ 3 mm for each); ii) A second transparent thicker Perspex disk (3-4 mm thickness, 70 mm diameter), with 6-8 perforations of diameter 15 mm, equidistant from the center; iii) Base: Same as lid except without the loading hole | ||
Grooming assay: | |||
Diffused glass-covered LED panel | 10–15-Watt ceiling mountable LED panel | ||
Habituation and Y-maze assay | |||
Climbing chambers | x2, Borosilicate glass | ||
Adapter for connecting Y-maze with entry vial | Perspex, custom made, measurements in Figure 5A | ||
Clear reagent bottles | Borosil #1500017 | ||
Gas washing stopper | Borosil #1761021 | ||
Glass vial | OD= 25 mm x Height= 85 mm; Borosilicate Glass | ||
Odorant (Ethyl Butyrate) | Merck #E15701 | ||
Paraffin wax (liquid) light | SRL #18211 | ||
Roller clamps | Polymed #14098 | ||
Silicone tubes | OD = 0.6 cm, ID = 0.3 cm; roller clamps for flow control | ||
Vacuum pump | Hana #HN-648 (Any aquarium pump with flow direction reversed manually) | ||
Y-maze | Borosilicate glass | ||
Y-shaped glass tube (borosilicate glass) | Custom made, measurements in Figure 5A | ||
Common items: | |||
Any software for video playback (eg.- VLC media player) | https://www.videolan.org/vlc/ | ||
Computer for video data analysis | |||
Fly bottles | OD= 60 mm x Height= 140 mm; glass/polypropylene | ||
Fly vials | OD= 25 mm x Height= 85 mm; Borosilicate Glass | ||
Graph-pad Prism software | https://www.graphpad.com/scientific-software/prism/www.graphpad.com/scientific-software/prism/ | ||
ImageJ software | https://imagej.net/downloads | ||
Timer | |||
Video camera with video recording set up | Camcorder or a mobile phone camera will work | ||
For Fly Aspirator: | |||
Cotton | Absorbent, autoclaved | ||
Parafilm | Sigma-aldrich #P7793 | ||
Pipette tips | 200 µL or 1000 µL, choose depeding on outer diameter of the silicone tube | ||
Silicone/rubber tube | length= 30-50 cm. The tube should be odorless | ||
Composition of Fly food: | |||
Ingredients (amount for 1 L of food) | |||
Agar (8 g) | SRL # 19661 (CAS : 9002-18-0) | ||
Cornflour (80 g) | Organic, locally procured | ||
D-Glucose (20 g) | SRL # 51758 (CAS: 50-99-7) | ||
Propionic acid (4 g) | SRL # 43883 (CAS: 79-09-4) | ||
Sucrose (40 g) | SRL # 90701 (CAS: 57-50-1) | ||
Tego (Methyl para hydroxy benzoate) (1.25 g) | SRL # 60905 (CAS: 5026-62-0) | ||
Yeast Powder (10 g) | HIMEDIA # RM027 | ||
Fly lines used in the experiments in this study: | |||
Wild type (Canton S or CS) | BDSC # 64349 | ||
w1118 | BDSC # 3605 | ||
w[1118]; Fmr1[Δ50M]/TM6B, Tb[+] | BDSC # 6930 | ||
w[*]; Fmr1[Δ113M]/TM6B, Tb[1] | BDSC # 67403 | ||
MB247-GAL4 (Gaurav Das, NCCS Pune, India) | BDSC # 50742 | ||
LN1-GAL4 | NP1227, NP consortium, Japan | ||
row-shRNA | BDSC # 25971 |