Summary

نماذج للتقييم السلوكي في نموذج ذبابة الفاكهة لاضطراب طيف التوحد

Published: September 06, 2024
doi:

Summary

يرتبط اضطراب طيف التوحد (ASD) بضعف السلوك الاجتماعي والتواصلي وظهور السلوك المتكرر. لدراسة العلاقة المتبادلة بين جينات ASD والعجز السلوكي في نموذج ذبابة الفاكهة ، تم وصف خمسة نماذج سلوكية في هذه الورقة لفحص التباعد الاجتماعي ، والعدوان ، والمغازلة ، والاستمالة ، وسلوك التعود.

Abstract

يشمل اضطراب طيف التوحد (ASD) مجموعة غير متجانسة من اضطرابات النمو العصبي مع أعراض سلوكية شائعة بما في ذلك العجز في التفاعل الاجتماعي والقدرة على التواصل ، وتعزيز السلوكيات المقيدة أو المتكررة ، وأيضا ، في بعض الحالات ، صعوبات التعلم والعجز الحركي. كانت ذبابة الفاكهة بمثابة كائن نموذجي لا مثيل له لنمذجة عدد كبير من الأمراض البشرية. نظرا لأن العديد من الجينات متورطة في ASD ، فقد ظهر ذباب الفاكهة كطريقة قوية وفعالة لاختبار الجينات التي يفترض أنها متورطة في الاضطراب. نظرا لأن مئات الجينات ، ذات الأدوار الوظيفية المتنوعة ، متورطة في ASD ، فإن نموذج ذبابة جيني واحد من ASD غير ممكن. بدلا من ذلك ، فإن الطفرات الجينية الفردية ، أو ضربات قاضية للجينات ، أو الدراسات القائمة على الإفراط في التعبير لمتماثلات الذباب للجينات المرتبطة باضطراب طيف التوحد هي الوسيلة الشائعة لاكتساب نظرة ثاقبة فيما يتعلق بالمسارات الجزيئية الكامنة وراء هذه المنتجات الجينية. تتوفر مجموعة من التقنيات السلوكية في ذبابة الفاكهة والتي توفر قراءة سهلة للعجز في مكونات سلوكية محددة. ثبت أن مقايسة الفضاء الاجتماعي ومقايسات العدوان والتودد في الذباب مفيدة في تقييم العيوب في التفاعل الاجتماعي أو التواصل. سلوك الاستمالة في الذباب هو قراءة ممتازة للسلوك المتكرر. يستخدم مقايسة التعود في الذباب لتقدير القدرة على تعلم التعود ، والذي وجد أنه يتأثر في بعض مرضى ASD. يمكن استخدام مزيج من هذه النماذج السلوكية لإجراء تقييم شامل لحالة المرض البشري الشبيه بالتوحد في الذباب. باستخدام الذباب الطافر Fmr1 ، وتلخيص متلازمة Fragile-X في البشر ، وضربة قاضية لصف POGZ-homolog في الخلايا العصبية الذبابة ، أظهرنا عجزا قابلا للقياس الكمي في التباعد الاجتماعي ، والعدوان ، وسلوك المغازلة ، وسلوك الاستمالة ، والتعود. يتم عرض هذه النماذج السلوكية هنا في أبسط أشكالها المباشرة مع افتراض أنها ستسهل استخدامها على نطاق واسع للبحث في ASD واضطرابات النمو العصبي الأخرى في نماذج الذباب.

Introduction

يشمل اضطراب طيف التوحد (ASD) مجموعة غير متجانسة من الاضطرابات العصبية. ويشمل مجموعة من اضطرابات النمو العصبي المعقدة التي تتميز بعجز متعدد السياقات ومستمر في التواصل الاجتماعي والتفاعل الاجتماعي ووجود أنماط واهتمامات سلوكية وأنشطة مقيدة ومتكررة1. وفقا لمنظمة الصحة العالمية (WHO) ، يتم تشخيص 1 من كل 100 طفل مصاب بالتوحد في جميع أنحاء العالم بنسبة ذكور إلى إناث تبلغ 4.22. يصبح المرض واضحا في السنة الثانية أو الثالثة من العمر. يظهر أطفال ASD عدم الاهتمام بالمعاملة بالمثل الاجتماعية والعاطفية والتواصل غير اللفظي ومهارات العلاقات. يظهرون سلوكيات متكررة مثل الحركة الحركية النمطية ، واتباع روتين غير مرن وطقوسي ، وتركيز مكثف على الاهتمامات المقيدة. يظهر أطفال ASD درجة عالية من الاستجابة تجاه اللمس والشم والصوت والذوق في حين أن استجابة الألم ودرجة الحرارة منخفضة نسبيا1. يختلف اختراق هذا الاضطراب أيضا بين المرضى المختلفين الذين يعانون من ASD وبالتالي يزداد التباين.

يعتمد التشخيص السريري الحالي لاضطراب طيف التوحد على التقييم السلوكي للأفراد حيث لا يوجد اختبار جيني مؤكد قائم على العلامات الحيوية أو اختبار جيني شائع يغطي جميع أشكال ASD3. سيكون فك رموز القواعد الجينية والفسيولوجية العصبية مفيدا في استهداف استراتيجيات العلاج. في العقد الماضي ، أدت مجموعة كبيرة من الأبحاث إلى تحديد مئات الجينات التي يتم حذفها أو تحورها أو التي يتم تغيير مستويات تعبيرها في مرضى ASD. تؤكد الأبحاث الجارية على التحقق من صحة مساهمة هذه الجينات المرشحة باستخدام كائنات نموذجية مثل الفأر أو ذبابة الفاكهة ، حيث يتم التخلص من هذه الجينات أو هدمها متبوعة باختبارات للعجز السلوكي الشبيه بالتوحد وتوضيح المسارات الجينية والجزيئية الأساسية التي تسبب الحالات الشاذة. يظهر نموذج الماوس الذي يلخص اختلافات رقم النسخ (CNVs) في مواقع الكروموسومات البشرية 16p11.2 بعض العيوب السلوكية ASD4،5،6. التعرض قبل الولادة لحمض الفالبرويك المسخي (VPA) هو نموذج فأر آخر يصور سمات تشبه ASD 7,8 البشري. بالإضافة إلى ذلك ، هناك مجموعة من نماذج الفئران التي تظهر التوحد المرتبط بالمتلازمة الوراثية ، على سبيل المثال ، نماذج متلازمية أحادية الجين ناتجة عن طفرات في Fmr1 و Pten و Mecp2 و Cacna1c ونماذج غير متلازمية أحادية الجين ناتجة عن طفرات في جينات مثل Cntnap2 أو Shank أو Neurexin أو Neuroligin 5.

ذبابة الفاكهة (ذبابة الفاكهة الميلانوجاستر) هي كائن نموذجي بارز آخر لدراسة القواعد الخلوية والجزيئية والجينية لعدد كبير من الاضطرابات البشرية9 ، بما في ذلك ASD. تشترك ذبابة الفاكهة والبشر في عمليات بيولوجية محفوظة للغاية على المستويات الجزيئية والخلوية والمشبكية. تم استخدام ذباب الفاكهة بنجاح في دراسات ASD10،11،12 لتوصيف الجينات المرتبطة ب ASDs وفك دورها الدقيق في تكوين المشابك ، والوظيفة المشبكية واللدونة ، وتجميع الدوائر العصبية ، والنضج. تم العثور على متجانسات الذباب للجينات المرتبطة ب ASD لها أدوار في تنظيم السلوك الاجتماعي و / أو المتكرر11،13،14،15،16،17،18،19،20،21. عملت ذبابة الفاكهة أيضا كنموذج لفحص جينات ASD ومتغيراتها15،22،23. التحدي الأكبر في أبحاث ASD في الذباب هو أنه ، على عكس نماذج الأمراض الأخرى ، لا يوجد نموذج واحد لذبابة ASD. لفهم تأثير الطفرات أو هدم جين ASD معين ، يحتاج الباحث إلى التحقق مما إذا كانت الأنماط الظاهرية السلوكية تحاكي بشكل كاف أعراض مرضى ASD ، ثم المضي قدما نحو فهم الأسس الجزيئية أو الفسيولوجية للأنماط الظاهرية.

وبالتالي ، فإن اكتشاف الأنماط الظاهرية الشبيهة باضطراب طيف التوحد أمر حيوي لأبحاث ASD في نموذج الذبابة. ظهرت حفنة من التقنيات السلوكية على مر السنين والتي تمكننا من اكتشاف التشوهات مثل العجز في السلوك / التفاعل الاجتماعي ، والتواصل ، والسلوكيات المتكررة ، والاستجابة للمنبهات. بالإضافة إلى ذلك ، تم إجراء العديد من التعديلات والترقيات لهذه التقنيات السلوكية في مختبرات مختلفة لتناسب متطلبات محددة مثل الترقية وأتمتة المقايسات والقراءات والقياس الكمي وطرق المقارنة. في مقالة الفيديو هذه ، يتم عرض الإصدارات الأساسية لخمسة نماذج سلوكية ، والتي ، مجتمعة ، يمكن استخدامها للكشف عن النتائج السلوكية الشبيهة باضطراب طيف التوحد بأسهل طريقة.

العدوان هو سلوك فطري محفوظ تطوريا يؤثر على البقاء والتكاثر24. يتأثر السلوك العدواني تجاه المحددات ب “الدافع للتنشئة الاجتماعية”25,26 وكذلك “التواصل”27 ، وكلاهما يتعرض للخطر لدى الأفراد المتأثرين بالتوحد. يتم وصف السلوك العدواني بشكل جيد في ذبابة الفاكهة وقابليته للقياس الكمي من خلال مقايسة العدوان القوية28،29،30 والأساس الجيني والبيولوجي العصبي المفهوم جيدا31 يجعله نموذجا سلوكيا مناسبا32 لتقييم النمط الظاهري ASD في نموذج الذبابة. يتأثر العدوان بالعزلة الاجتماعية بعيدا عن البيئة الاجتماعية ، مما يؤدي إلى العدوان المعزز. وقد لوحظ الشيء نفسه عندما يتم إيواء ذكور الذباب في عزلة لبضعة أيام33,34. اختبار سلوكي آخر يحدد كمية التواصل الاجتماعي في الذباب هو فحص الفضاء الاجتماعي35 ، والذي يقيس المسافات بين أقرب الجيران ومسافات الطيران البيني في مجموعة صغيرة من الذباب ، مما يجعله مناسبا تماما لاختبار أدوار تقويم الجينات ASD في الذباب12،21،36،37 وكذلك نماذج ذبابة ASD المستحثة بيئيا38 ، 39.

مقايسة مغازلة ذبابة الفاكهة هي نموذج سلوكي آخر يستخدم بشكل متكرر لفحص التغيير في المهارات الاجتماعية والتواصلية عند التلاعب بالدائرة أو الجينات ، بما في ذلك الجينات المرتبطة بالتوحد18،19،21،40. تنتشر أنماط السلوك المتكررة في مرضى ASD ، والتي يتم تلخيصها في الذباب عن طريق سلوك الاستمالة – سلسلة من الإجراءات النمطية المتميزة التي يتم إجراؤها للتنظيف وأغراض أخرى. تم استخدامه بنجاح لفحص تأثير طفرات جين ASD في الذباب21,41 وكذلك التعرض للمواد الكيميائية38,39. تم وصف التطورات المتعددة والأتمتة في الفحص قبل16،41،42،43 ؛ هنا ، نعرض نمط الفحص الأساسي ، والذي يسهل اعتماده وتحديده.

من المعروف أن ASD يؤثر على القدرة على التعود والتعلم والذاكرة لدى بعض المرضى44،45،46،47،48،49،50 ، الكائنات الحية النموذجية ASD51،52 ويسبب أيضا عجزا في السلوكيات الشمية المختلفة50. تم استخدام تعود القفز الخفيف من ذبابة الفاكهة سابقا للكشف عن جينات ASD23. يمكن فحص التعود بطريقة بسيطة لمقايسة التعود الشمي53،54،55. نصف طريقة الحث على التعود الشمي وفحص النتيجة باستخدام مقايسة اختيار الرائحة الثنائية الكلاسيكية القائمة على متاهةY 56 والتي يمكن استخدامها للكشف عن العيوب في التعود في طفرة جين ASD أو حالة ضربة قاضية للجينات. لتقييم ما إذا كان تأثير طفرة (أو ضربة قاضية جينية) أو علاج دوائي على سلوك ذبابة يرقى إلى النمط الظاهري الشبيه باضطراب طيف التوحد ، يمكن للمرء استخدام مزيج من هذه المقايسات 5 الموصوفة هنا.

Protocol

انظر جدول المواد للحصول على التفاصيل المتعلقة بجميع المواد والكواشف المستخدمة في هذا البروتوكول. 1. مقايسة العدوان إعداد ساحة فحص العدوانخذ صفيحة قياسية من 24 بئرا (الشكل 1 أ) واستخدم كل بئر من اللوحة ك “ساحة” واحدة (الشك?…

Representative Results

مقايسة العدوانكنموذج ذبابة ASD ، تم استخدام الذباب الطافر Fmr1 63,64. تم استخدام1118 من الذكور كمجموعة تحكم و Fmr1 عبر الزيجوت غير المتجانس Fmr1Δ113M / Fmr1Δ50M57 ذباب ذكر كذباب تجريبي ؛ تم إيواء الذكور البالغين في أنابيب الع?…

Discussion

يستخدم ذبابة الفاكهة ككائن نموذجي جيد للبحث في الاضطرابات العصبية البشرية بسبب درجة عالية من الحفاظ على تسلسل الجينات بين جينات الذبابة والأمراض البشرية9. العديد من النماذج السلوكية القوية تجعله نموذجا جذابا لدراسة الأنماط الظاهرية التي تتجلى في الطفرات التي تلخص الأم…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

نحن ممتنون للغاية لماني راماسوامي (NCBS ، بنغالور) وباسكار باكثافاشالو (IIT Mandi) لإعداد فحص التعود واختيار الرائحة ، بافان أغراوال (MAHE) لاقتراحاته القيمة حول مقايسة العدوان ، أميتافا ماجومدار (NCCS ، بيون) لمشاركة النموذج الأولي لغرفة فحص المغازلة وخطوط الذباب الطافرة Fmr1 ، وغوراف داس (NCCS ، بيون) لمشاركة خط MB247-GAL4. نشكر مركز بلومنجتون ذبابة الفاكهة (BDSC ، إنديانا ، الولايات المتحدة الأمريكية) ، والمعهد الوطني لعلم الوراثة (NIG ، كيوتو ، اليابان) ، وجامعة Banaras Hindu (BHU ، فاراناسي ، الهند) ، والمركز الوطني للعلوم البيولوجية (NCBS ، بنغالور ، الهند) لخطوط ذبابة الفاكهة . تم دعم العمل في المختبر بمنح من SERB-DST (ECR / 2017/002963) إلى AD ، وزمالة DBT Ramalingaswami الممنوحة ل AD (BT / RLF / Re-entry / 11/2016) ، ودعم مؤسسي من IIT Kharagpur ، الهند. SD و SM الحصول على الدكتوراه زمالات من CSIR-زمالة كبار البحوث. رئيس الوزراء يحصل على زمالة الدكتوراه من MHRD ، الهند.

Materials

Aggression arena:
Standard 24-well plate made of transparent polystyrene 12 cm x 8 cm x 2 cm. Diameter of a single well= 18 cm. Sigma-aldrich #Z707791; depth = 1 cm
Transparent plastic/acrylic sheet Alternative: a perforated lid of a cell culture plate
Social Space Assay:
Binder clips 19 mm
Glass sheets and acrylic sheets of customized sizes Thickness = 5 mm
Courtship assay:
Nut and bolt with threading
Perspex sheets of customized shapes i) Lid: A custom-made round transparent Perspex disk (2-3 mm thickness, 70 mm diameter) with one loading hole at the peripheral region and another screw hole at the center (diameter ~ 3 mm for each); ii) A second transparent thicker Perspex disk (3-4 mm thickness, 70 mm diameter), with 6-8 perforations of diameter 15 mm, equidistant from the center; iii) Base: Same as lid except without the loading hole
Grooming assay:
Diffused glass-covered LED panel 10–15-Watt ceiling mountable LED panel
Habituation and Y-maze assay
Climbing chambers x2, Borosilicate glass
Adapter for connecting Y-maze with entry vial Perspex, custom made, measurements in Figure 5A
Clear reagent bottles Borosil #1500017
Gas washing stopper Borosil #1761021
Glass vial OD= 25 mm x Height= 85 mm; Borosilicate Glass
Odorant (Ethyl Butyrate) Merck #E15701
Paraffin wax (liquid) light SRL #18211
Roller clamps Polymed #14098
Silicone tubes OD = 0.6 cm, ID = 0.3 cm; roller clamps for flow control
Vacuum pump Hana #HN-648 (Any aquarium pump with flow direction reversed manually)
Y-maze Borosilicate glass
Y-shaped glass tube (borosilicate glass) Custom made, measurements in Figure 5A
Common items:
Any software for video playback (eg.- VLC media player) https://www.videolan.org/vlc/
Computer for video data analysis
Fly bottles OD= 60 mm x Height= 140 mm; glass/polypropylene
Fly vials OD= 25 mm x Height= 85 mm; Borosilicate Glass
Graph-pad Prism software https://www.graphpad.com/scientific-software/prism/www.graphpad.com/scientific-software/prism/
ImageJ software https://imagej.net/downloads
Timer
Video camera with video recording set up Camcorder or a mobile phone camera will work
For Fly Aspirator:
Cotton Absorbent, autoclaved
Parafilm Sigma-aldrich #P7793
Pipette tips 200 µL or 1000 µL, choose depeding on outer diameter of the silicone tube
Silicone/rubber tube length= 30-50 cm. The tube should be odorless
Composition of Fly food:
Ingredients (amount for 1 L of food)
Agar (8 g) SRL # 19661 (CAS : 9002-18-0)
Cornflour (80 g) Organic, locally procured
D-Glucose (20 g) SRL # 51758 (CAS: 50-99-7)
Propionic acid (4 g) SRL # 43883 (CAS: 79-09-4)
Sucrose (40 g) SRL # 90701 (CAS: 57-50-1)
Tego (Methyl para hydroxy benzoate) (1.25 g) SRL # 60905 (CAS: 5026-62-0)
Yeast Powder (10 g) HIMEDIA # RM027
Fly lines used in the experiments in this study:
Wild type (Canton S or CS) BDSC # 64349
w1118 BDSC # 3605
w[1118]; Fmr1[Δ50M]/TM6B, Tb[+] BDSC # 6930
w[*]; Fmr1[Δ113M]/TM6B, Tb[1] BDSC # 67403
MB247-GAL4 (Gaurav Das, NCCS Pune, India) BDSC # 50742
LN1-GAL4 NP1227, NP consortium, Japan
row-shRNA BDSC # 25971

References

  1. American Psychiatric Association. . American Psychiatric Association DSM-5 Task Force Diagnostic and statistical manual of mental disorders: DSM-5TM, 5th ed. , (2013).
  2. Zeidan, J., et al. Global prevalence of autism: A systematic review update. Autism Res. 15 (5), 778 (2022).
  3. Lordan, R., Storni, C., De Benedictis, C. A. Autism spectrum disorders: diagnosis and treatment. Autism Spectr Disord. , (2021).
  4. Horev, G., et al. Dosage-dependent phenotypes in models of 16p11.2 lesions found in autism. Proc Natl Acad Sci USA. 108 (41), 17076-17081 (2011).
  5. Bey, A. L., Jiang, Y. Overview of mouse models of autism spectrum disorders. Curr Protoc Pharmacol. 66 (1), 1 (2014).
  6. Fetit, R., Price, D. J., Lawrie, S. M., Johnstone, M. Understanding the clinical manifestations of 16p11.2 deletion syndrome: a series of developmental case reports in children. Psychiatr Genet. 30 (5), 136-140 (2020).
  7. Nicolini, C., Fahnestock, M. The valproic acid-induced rodent model of autism. Exp Neurol. 299, 217-227 (2018).
  8. Tartaglione, A. M., Schiavi, S., Calamandrei, G., Trezza, V. Prenatal valproate in rodents as a tool to understand the neural underpinnings of social dysfunctions in autism spectrum disorder. Neuropharmacology. 159, 107477 (2019).
  9. Reiter, L. T., Potocki, L., Chien, S., Gribskov, M., Bier, E. A systematic analysis of human disease-associated gene sequences in Drosophilamelanogaster. Genome Res. 11 (6), 1114-1125 (2001).
  10. Coll-Tane, M., Krebbers, A., Castells-Nobau, A., Zweier, C., Schenck, A. Intellectual disability and autism spectrum disorders "on the fly": Insights from Drosophila. DMM Dis Model Mech. 12 (5), 1-16 (2019).
  11. Tian, Y., Zhang, Z. C., Han, J. Drosophila studies on autism spectrum disorders. Neurosci Bull. 33 (6), 737-746 (2017).
  12. Ueoka, I., Pham, H. T. N., Matsumoto, K., Yamaguchi, M. Autism spectrum disorder-related syndromes: Modeling with Drosophila and rodents. Int J Mol Sci. 20 (17), 1-24 (2019).
  13. Yost, R. T., et al. Abnormal social interactions in a Drosophila mutant of an autism candidate gene: Neuroligin 3. Int J Mol Sci. 21 (13), 1-20 (2020).
  14. Wise, A., et al. Drosophila mutants of the autism candidate gene neurobeachin (rugose) exhibit neuro-developmental disorders, aberrant synaptic properties, altered locomotion, impaired adult social behavior and activity patterns. J Neurogenet. 29 (2-3), 135-143 (2015).
  15. Koemans, T. S., et al. Functional convergence of histone methyltransferases EHMT1 and KMT2C involved in intellectual disability and autism spectrum disorder. PLoS Genet. 13 (10), e1006864 (2017).
  16. Tauber, J. M., Vanlandingham, P. A., Zhang, B. Elevated levels of the vesicular monoamine transporter and a novel repetitive behavior in the Drosophila model of fragile X syndrome. PLoS One. 6 (11), e27100 (2011).
  17. Iyer, J., et al. Pervasive genetic interactions modulate neurodevelopmental defects of the autism-associated 16p11.2 deletion in Drosophilamelanogaster. Nat Commun. 9 (1), 1-19 (2018).
  18. Palacios-Muñoz, A., et al. Mutations in trpγ, the homologue of TRPC6 autism candidate gene, causes autism-like behavioral deficits in Drosophila. Mol Psychiatry. 27 (8), 3328-3342 (2022).
  19. Hahn, N., et al. Monogenic heritable autism gene neuroligin impacts Drosophila social behaviour. Behav Brain Res. 252, 450-457 (2013).
  20. Stessman, H. A. F., et al. Disruption of POGZ is associated with intellectual disability and autism spectrum disorders. Am J Hum Genet. 98 (3), 541-552 (2016).
  21. Hope, K. A., et al. The Drosophila gene sulfateless modulates autism-like behaviors. Front Genet. 10, 574 (2019).
  22. Stessman, H. A. F., et al. Targeted sequencing identifies 91 neurodevelopmental-disorder risk genes with autism and developmental-disability biases. Nat Genet. 49 (4), 515-526 (2017).
  23. Fenckova, M., et al. Habituation learning is a widely affected mechanism in Drosophila models of intellectual disability and autism spectrum disorders. Biol Psychiatry. 86 (4), 294-305 (2019).
  24. Trannoy, S., Chowdhury, B., Kravitz, E. A. Handling alters aggression and "loser" effect formation in Drosophilamelanogaster. Learn Mem. 22 (2), 64-68 (2015).
  25. Anderson, D. J. Circuit modules linking internal states and social behaviour in flies and mice. Nat Rev Neurosci. 17 (11), 692-704 (2016).
  26. Flanigan, M. E., Russo, S. J. Recent advances in the study of aggression. Neuropsychopharmacology. 44 (2), 241-244 (2018).
  27. Sun, Y., et al. Social attraction in Drosophila is regulated by the mushroom body and serotonergic system. Nat Commun. 11 (1), 1-14 (2020).
  28. Nilsen, S. P., Chan, Y. B., Huber, R., Kravitz, E. A. Gender-selective patterns of aggressive behavior in Drosophilamelanogaster. Proc Natl Acad Sci USA. 101 (33), 12342-12347 (2004).
  29. Kravitz, E. A., Fernandez, M. d. e. l. a. P. Aggression in Drosophila. Behav Neurosci. 129 (5), 549-563 (2015).
  30. Chen, S., Lee, A. Y., Bowens, N. M., Huber, R., Kravitz, E. A. Fighting fruit flies: a model system for the study of aggression. Proc Natl Acad Sci USA. 99 (8), 5664-5668 (2002).
  31. Zwarts, L., Versteven, M., Callaerts, P. Genetics and neurobiology of aggression in Drosophila. Fly (Austin). 6 (1), 35-48 (2012).
  32. Mundiyanapurath, S., Certel, S., Kravitz, E. A. Studying aggression in Drosophila (fruit flies). J Vis Exp. (2), e155 (2007).
  33. Agrawal, P., Kao, D., Chung, P., Looger, L. L. The neuropeptide Drosulfakinin regulates social isolation-induced aggression in Drosophila. J Exp Biol. 223 (2), 207407 (2020).
  34. Wang, L., Dankert, H., Perona, P., Anderson, D. J. A common genetic target for environmental and heritable influences on aggressiveness in Drosophila. Proc Natl Acad Sci USA. 105 (15), 5657-5663 (2008).
  35. Simon, A. F., et al. A simple assay to study social behavior in Drosophila: Measurement of social space within a group. Genes Brain Behav. 11 (2), 243-252 (2012).
  36. Corthals, K., et al. Neuroligins Nlg2 and Nlg4 affect social behavior in Drosophilamelanogaster. Front Psychiatry. 8, 113 (2017).
  37. Cao, H., Tang, J., Liu, Q., Huang, J., Xu, R. Autism-like behaviors regulated by the serotonin receptor 5-HT2B in the dorsal fan-shaped body neurons of Drosophilamelanogaster. Eur J Med Res. 27 (1), 1-15 (2022).
  38. Kaur, K., Simon, A. F., Chauhan, V., Chauhan, A. Effect of bisphenol A on Drosophilamelanogaster behavior – A new model for the studies on neurodevelopmental disorders. Behav Brain Res. 284, 77-84 (2015).
  39. Shilpa, O., Anupama, K. P., Antony, A., Gurushankara, H. P. Lead (Pb)-induced oxidative stress mediates sex-specific autistic-like behaviour in Drosophilamelanogaster. Mol Neurobiol. 58 (12), 6378-6393 (2021).
  40. Dockendorff, T. C., et al. Drosophila lacking dfmr1 activity show defects in crcadian output and fail to maintain courtship interest. Neuron. 34 (6), 973-984 (2002).
  41. Andrew, D. R., et al. Spontaneous motor-behavior abnormalities in two Drosophila models of neurodevelopmental disorders. J Neurogenet. 35 (1), 1-22 (2021).
  42. Barradale, F., Sinha, K., Lebestky, T. Quantification of Drosophila grooming behavior. J Vis Exp. (125), e55231 (2017).
  43. Qiao, B., Li, C., Allen, V. W., Shirasu-Hiza, M., Syed, S. Automated analysis of long-term grooming behavior in Drosophila using a k-nearest neighbors classifier. Elife. 7, e34497 (2018).
  44. Webb, S. J., et al. Toddlers with elevated autism symptoms show slowed habituation to faces. Child Neuropsychol. 16 (3), 255-278 (2010).
  45. Kleinhans, N. M., et al. Reduced neural habituation in the amygdala and social impairments in autism spectrum disorders. Am J Psychiatry. 166 (4), 467-475 (2009).
  46. Ethridge, L. E., et al. Reduced habituation of auditory evoked potentials indicate cortical hyper-excitability in Fragile X Syndrome. Transl Psychiatry. 6 (4), e787-e787 (2016).
  47. McDiarmid, T. A., Bernardos, A. C., Rankin, C. H. Habituation is altered in neuropsychiatric disorders-A comprehensive review with recommendations for experimental design and analysis. Neurosci Biobehav Rev. 80, 286-305 (2017).
  48. Kuiper, M. W. M., Verhoeven, E. W. M., Geurts, H. M. Stop making noise! Auditory sensitivity in adults with an autism spectrum disorder diagnosis: physiological habituation and subjective detection thresholds. J Autism Dev Disord. 49 (5), 2116-2128 (2019).
  49. McDiarmid, T. A., et al. Systematic phenomics analysis of autism-associated genes reveals parallel networks underlying reversible impairments in habituation. Proc Natl Acad Sci USA. 117 (1), 656-667 (2020).
  50. Lyons-Warren, A. M., Herman, I., Hunt, P. J., Arenkiel, B. A systematic-review of olfactory deficits in neurodevelopmental disorders: From mouse to human. Neurosci Biobehav Rev. 125, 110-121 (2021).
  51. Kepler, L. D., McDiarmid, T. A., Rankin, C. H. Habituation in high-throughput genetic model organisms as a tool to investigate the mechanisms of neurodevelopmental disorders. Neurobiol Learn Mem. 171, 107208 (2020).
  52. Huang, T. N., Yen, T. L., Qiu, L. R., Chuang, H. C., Lerch, J. P., Hsueh, Y. P. Haploinsufficiency of autism causative gene Tbr1 impairs olfactory discrimination and neuronal activation of the olfactory system in mice. Mol Autism. 10 (1), 1-16 (2019).
  53. Twick, I., Lee, J. A., Ramaswami, M. Chapter 1 – Olfactory habituation in Drosophila-odor encoding and its plasticity in the antennal lobe. Prog Brain Res. 208, 3-38 (2014).
  54. Das, S., et al. Plasticity of local GABAergic interneurons drives olfactory habituation. Proc Natl Acad Sci USA. 108 (36), E646-E654 (2011).
  55. Devaud, J. M., Acebes, A., Ferrús, A. Odor exposure causes central adaptation and morphological changes in selected olfactory glomeruli in Drosophila. J Neurosci. 21 (16), 6274-6282 (2001).
  56. Ayyub, C., Paranjape, J., Rodrigues, V., Siddiqi, O. Genetics of olfactory behavior in Drosophilamelanogaster. J Neurogenet. 6 (4), 243-262 (1990).
  57. Michel, C. I., Kraft, R., Restifo, L. L. Defective neuronal development in the mushroom bodies of Drosophila fragile X mental retardation 1 mutants. J Neurosci. 24 (25), 5798-5809 (2004).
  58. Fernandez, M. P., Trannoy, S., Certel, S. J. Fighting flies: quantifying and analyzing Drosophila aggression. Cold Spring Harb Protoc. 2023 (9), 107985 (2023).
  59. Dankert, H., Wang, L., Hoopfer, E. D., Anderson, D. J., Perona, P. Automated monitoring and analysis of social behavior in Drosophila. Nat Methods. 6 (4), 297-303 (2009).
  60. Simon, A. F., et al. Drosophila vesicular monoamine transporter mutants can adapt to reduced or eliminated vesicular stores of dopamine and serotonin. Genetics. 181 (2), 525-541 (2008).
  61. McNeil, A. R., et al. Conditions affecting social space in Drosophilamelanogaster. J Vis Exp. (105), e53242 (2015).
  62. Schneider, C. A., Rasband, W. S., Eliceiri, K. W. NIH Image to ImageJ: 25 years of image analysis. Nat Methods. 9 (7), 671-675 (2012).
  63. Drozd, M., Bardoni, B., Capovilla, M. Modeling Fragile X Syndrome in Drosophila. Front Mol Neurosci. 11, 124 (2018).
  64. Trajković, J., et al. Drosophilamelanogaster as a model to study Fragile X-associated disorders. Genes (Basel). 14 (1), 87 (2022).
  65. Gailey, D. A., Jackson, F. R., Siegel, R. W. Male courtship in Drosophila: the conditioned response to immature males and its genetic control. Genetics. 102 (4), 771-782 (1982).
  66. Cannon, R. J. C. Drosophila courtship behaviour. Courtship and Mate-finding Insects. , 1-13 (2023).
  67. von Philipsborn, A. C., Shohat-Ophir, G., Rezaval, C. Single-pair courtship and competition assays in Drosophila. Cold Spring Harb Protoc. 2023 (7), 450-459 (2023).
  68. Keleman, K., Krüttner, S., Alenius, M., Dickson, B. J. Function of the Drosophila CPEB protein Orb2 in long-term courtship memory. Nat Neurosci. 10 (12), 1587-1593 (2007).
  69. Koemans, T. S., et al. Drosophila courtship conditioning as a measure of learning and memory. J Vis Exp. (124), e55808 (2017).
  70. Fitzsimons, H. L., Scott, M. J. Genetic modulation of Rpd3 expression impairs long-term courtship memory in Drosophila. PLoS One. 6 (12), e29171 (2011).
  71. Kubli, E. My favorite molecule. The sex-peptide. BioEssays. 14 (11), 779-784 (1992).
  72. Dierick, H. A. A method for quantifying aggression in male Drosophilamelanogaster. Nat Protoc. 2 (11), 2712-2718 (2007).

Play Video

Cite This Article
Dey, S., Mondal, P., Mandal, S., Sasmal, S., Chakraborty, N., Das, A. Paradigms for Behavioral Assessment in Drosophila Model of Autism Spectrum Disorder. J. Vis. Exp. (211), e66649, doi:10.3791/66649 (2024).

View Video