Образование супероксид-аниона имеет важное значение для стимуляции тромбоцитов и, в случае его нерегуляции, имеет решающее значение для тромботических заболеваний. В данной работе мы представляем три протокола для селективного детектирования супероксид-анионов и изучения редокс-зависимой регуляции тромбоцитов.
Активные формы кислорода (АФК) представляют собой крайне нестабильные молекулы, содержащие кислород. Их химическая нестабильность делает их чрезвычайно реактивными и дает им способность реагировать с важными биологическими молекулами, такими как белки, нуклеиновые кислоты и липиды. Супероксидные анионы являются важными АФК, образующимися при восстановлении молекулярного восстановления кислорода (т.е. приобретении одного электрона). Несмотря на то, что первоначально они участвовали исключительно в старении, дегенеративных и патогенных процессах, в последнее время их участие в важных физиологических реакциях стало очевидным. Было показано, что в сосудистой системе супероксид-анионы модулируют дифференцировку и функцию гладкомышечных клеток сосудов, пролиферацию и миграцию эндотелиальных клеток сосудов в ангиогенезе, иммунный ответ и активацию тромбоцитов в гемостазе. Роль супероксид-анионов особенно важна в нарушении регуляции тромбоцитов и сердечно-сосудистых осложнениях, связанных с множеством заболеваний, включая рак, инфекции, воспаления, диабет и ожирение. Таким образом, в сердечно-сосудистых исследованиях стало чрезвычайно актуальным иметь возможность эффективно измерять образование супероксид-анионов тромбоцитами человека, понимать редокс-зависимые механизмы, регулирующие баланс между гемостазом и тромбозом, и, в конечном итоге, идентифицировать новые фармакологические инструменты для модуляции тромбоцитарных реакций, ведущих к тромбозу и сердечно-сосудистым осложнениям. В данном исследовании представлены три экспериментальных протокола, успешно принятых для обнаружения супероксид-анионов в тромбоцитах и изучения редокс-зависимых механизмов, регулирующих гемостаз и тромбоз: 1) обнаружение супероксид-анионов на основе дигидроэтидия (ДГЭ) методом проточной цитометрии; 2) Визуализация и анализ супероксид-анионов на основе ДГЭ с помощью визуализации одиночных тромбоцитов; и 3) количественное определение выхода супероксид-анионов в тромбоцитах с помощью электронного парамагнитного резонанса (ЭПР) на основе спинового зонда.
Супероксид-анион (O2•-) является наиболее функционально значимым АФК, образующимся в тромбоцитах1. O2•- является продуктом восстановления молекулярного кислорода и предшественником многих различных АФК 2. Дисмутация O2•- приводит к образованию перекиси водорода (H2O2) в результате спонтанных реакций в водном растворе или реакций, катализируемых супероксиддисмутазами (SODs3). Несмотря на то, что были предложены различные ферментативные источники (например, ксантиноксидаза4, липоксигеназа5, циклооксигеназа6 и синтаза оксида азота7), митохондриальное дыхание 8,9 и никотинамидадениндинуклеотидфосфатоксидаза (NOXs)10 являются наиболее заметными источниками супероксид-аниона в эукариотических клетках. То же самое, по-видимому, имеет место и в отношении тромбоцитов, где утечка электронов из митохондриального дыхания11,12 и ферментативная активность NOXs13,14 были описаны как основные факторы, влияющие на выброс супероксид-анионов.
Хотя несколько исследований были сосредоточены на регуляции тромбоцитов с помощью O2•-, нет единого мнения относительно молекулярных механизмов, ответственных за это. Предложена модуляция активности поверхностных рецепторов путем прямого окисления и образования дисульфидных связей для различных рецепторов тромбоцитов. Предполагается положительная регуляция интегрина αIIbβ3 АФК путем прямого окисления остатков цистеина 15,16,17. Аналогичным образом, поскольку реакция тромбоцитов на коллаген зависит от дисульфид-зависимой димеризации и последующей димеризации гликопротеина VI (GPVI)18, было предложено потенцирование активности рецептора путем АФК-зависимого окисления19, хотя это и не было полностью доказано экспериментально. Наконец, было показано, что индуцированное АФК окисление сульфгидрильных групп гликопротеина Ib (GPIb) способствует адгезии тромбоцитов и взаимодействию тромбоцитов с лейкоцитами во время воспаления20. И наоборот, как возможное следствие снижения окисления сульфгидрильных групп и активации рецепторов, выделение эктодомена как GPVI, так и GPIb уменьшается при редуцировании условий21.
Также предложены способы действия, не зависящие от прямого окисления поверхностных рецепторов тромбоцитов. Было показано, что АФК, включая O2•-, положительно модулируют коллагеновый рецептор GPVI за счет ослабления активности области гомологии Src 2, содержащей протеинтирозинфосфатазу 2 (SHP-2), которая отрицательно регулирует сигнальный каскад этого рецептора22. Кроме того, O2•- может образовывать ONOO– (пероксинитрит) путем быстрой реакции с оксидом азота (NO), который в норме ингибирует тромбоциты через NO-чувствительную гуанилилциклазу (NO-GC) и генерацию отрицательного регулятора тромбоцитов циклической GMP (cGMP)23,24. Возникающее в результате снижение уровня NO может привести к потенцированию тромбоцитов. В качестве альтернативы, предполагается, что образование O2•- с помощью NOX2 способствует перекисному окислению липидов и образованию изопростана, что имеет важное значение для активации тромбоцитов и адгезии. Наконец, митоген-активируемая протеинкиназа (MAPK) внеклеточная сигнал-регулируемая киназа 5 (ERK5), протеинкиназа, предлагаемая в качестве датчика редокс-стресса в тромбоцитах26, активируетсяO2•- и индуцирует фенотип прокоагулянта в тромбоцитах (что оценивается с помощью измерения экстернализации фосфатидилсерина на основе проточной цитометрии)27.
Нарушение регуляции образования O2•- и других АФК в тромбоцитах было связано с преувеличенной гемостатической реакцией, приводящей к тромботическим сердечно-сосудистым осложнениям, связанным с атеросклерозом, сахарным диабетом, гипертонией, ожирением и раком28,29. В этих патологических условиях выход АФК тромбоцитами увеличивается, что приводит к потенцированию их адгезивных и агрегационных реакций. В дополнение к влиянию на реакцию тромбоцитов, выход свободных радикалов тромбоцитов может иметь последствия для других клеток крови и сосудистых структур, что является плохо изученной и недостаточно изученной областью сердечно-сосудистого здоровья. Несмотря на наше ограниченное понимание молекулярных механизмов, связывающих окислительный стресс с тромботическими состояниями, клиническая значимость антиоксидантов для защиты от сердечно-сосудистых заболеваний привлекла значительное внимание. Было показано, что уровни антиоксидантов в плазме обратно коррелируют с риском развития сердечно-сосудистых заболеваний, а потребление антиоксидантов с пищей защищает от ишемической болезни сердца31,32. Следовательно, использование пищевых антиоксидантов было рекомендовано как многообещающий подход к профилактике сердечно-сосудистых заболеваний 33,34,35. Среди эффектов образования АФК в тромбоцитах увеличение апоптоза может иметь важные патофизиологические эффекты36,37. В целом, надежные протоколы для обнаружения и количественного определения выхода O2•- из тромбоцитов становятся все более актуальными в исследованиях сердечно-сосудистых заболеваний.
В настоящее время доступные методы обнаружения АФК имеют существенные ограничения специфичности (т.е. химическая природа обнаруженных молекул окислителя неизвестна) и надежности (т.е. нежелательное взаимодействие с биологическими молекулами и экспериментальными реагентами приводит к смещенным нефизиологическим результатам)38,39. Наиболее часто используемый подход к выявлению АФК в тромбоцитах основан на использовании дихлордигидрофлуоресцеина диацетата (DCFDA), который превращается в дихлордигидрофлуоресцеин (DCFH) посредством внутриклеточных эстераз и, следовательно, в высокофлуоресцентный дихлорфлуоресцеин (DCF) клеточными окислителями, включая гидроксильные радикалы и промежуточные соединения пероксидазы-H2O2 40,41. Несмотря на его широкое использование, были подняты серьезные вопросы относительно надежности этого подхода для измерения внутриклеточного АФК38. Окисление DCFH до DCF может быть, фактически, индуцировано ионами переходных металлов (например, Fe2+) или ферментами, содержащими гем (например, цитохромами) вместо ROS42. Кроме того, DCFDA превращается клеточными пероксидазами в свою свободнорадикальную форму семихинона (DCF•-), которая, в свою очередь, окисляется до DCF в результате реакции с молекулярным кислородом (O2) с выделением O2•-, что приводит к искусственной амплификации окислительных реакций 41,43,44. Таким образом, обнаружение внутриклеточных АФК с помощью DCFDA полезно для получения первоначальных представлений, но требует тщательного рассмотрения и обширного экспериментального контроля38,39.
В данном исследовании представлены три альтернативных метода обнаружения и измерения ключевого регулятора функции тромбоцитов O2•-1. Первый метод заключается в обнаружении с помощью DHE и проточной цитометрии, что дает преимущества надежности и специфичности по сравнению с DCFDA. Второй предложенный здесь метод также использует DHE, но метод детектирования представляет собой флуоресцентную визуализацию живых тромбоцитов, которая позволяет изучать генерацию сигналов O2•-на тромбоцитах с быстрой кинетикой и разрешением отдельных клеток. Наконец, протокол, основанный на использовании гидроксиламинового спинового зонда 1-гидрокси-3-метоксикарбонил-2,2,5,5-тетраметилпирролидина (CMH) в экспериментах по резонансу ЭПР, дает возможность количественно оценить скорость образования O2•- тромбоцитами и сравнить ее в различных условиях.
В этой рукописи мы представляем три различных метода, которые могут расширить возможности исследования редокс-зависимой регуляции функции тромбоцитов посредством селективного обнаружения O2•–. Первые два метода являются улучшением существующих м?…
The authors have nothing to disclose.
Эта работа финансировалась грантами Британского фонда сердца (PG/15/40/31522), Alzheimer Research UK (ARUK-PG2017A-3) и Европейского исследовательского совета (#10102507).
1-hydroxy-3-methoxycarbonyl-2,2,5,5-tetramethylpyrrolidine (CMH) | Noxygen Science trasfer and Diagnostics GmbH | NOX-02.1-50mg | Reagent for EPR (spin probe) |
BD FACSAria III | BD Biosciences | NA | Flow cytometer |
Bovine Serum Albumin | Merck/Sigma | A7030 | For μ-slide coating |
Bruker E-scan M (Noxyscan) | Noxygen Science trasfer and Diagnostics GmbH | NOX-E.11-BES | EPR spectrometer |
Catalase–polyethylene glycol (PEG-Cat.) | Merck/Sigma | C4963 | Hydrogen peroxide scavenger (specificity control) |
ChronoLog Model 490+4 | Labmedics/Chronolog | NA | Aggregometer |
CM radical | Noxygen Science trasfer and Diagnostics GmbH | NOX-20.1-100mg | Reagent for EPR (calibration control) |
deferoxamine | Noxygen Science trasfer and Diagnostics GmbH | NOX-09.1-100mg | Reagent for EPR |
diethyldithiocarbamate (DETC) | Noxygen Science trasfer and Diagnostics GmbH | NOX-10.1-1g | Reagent for EPR |
Dihydroethidium | Thermo Fisher Scientifics | D11347 | Superoxide anion probe |
Dimethyl sulfoxide | Merck/Sigma | 34869 | For stock solution preparation |
EPR sealing wax plates | Noxygen Science trasfer and Diagnostics GmbH | NOX-A.3-VPM | Consumable for EPR |
EPR-grade water | Noxygen Science trasfer and Diagnostics GmbH | NOX-07.7.1-0.5L | Reagent for EPR |
Fibrinogen from human plasma | Merck/Sigma | F4883 | For μ-slide coating |
FITC anti-human CD41 Antibody | BioLegend | 303704 | Platelet-specific staining for flow cytometry |
Glass cuvettes | Labmedics/Chronolog | P/N 312 | Consumable for incubation in aggregometer |
Horm Collagen | Labmedics/Chronolog | P/N 385 | For platelet stimulation |
ImageJ | National Institutes of Health (NIH) | NA | ImageJ 1.53t (Wayne Rasband) |
Indomethacin | Merck/Sigma | I7378 | For platelet isolation |
Micropipettes DURAN 50µl | Noxygen Science trasfer and Diagnostics GmbH | NOX-G.6.1-50µL | Consumable for EPR |
Poly-L-lysine hydrochloride | Merck/Sigma | P2658 | For μ-slide coating |
Prostaglandin E1 (PGE1) | Merck/Sigma | P5515 | For platelet isolation |
Sodium citrate (4% w/v solution) | Merck/Sigma | S5770 | For platelet isolation |
Stirring bars (Teflon-coated) | Labmedics/Chronolog | P/N 313 | Consumable for incubation in aggregometer |
Superoxide dismutase–polyethylene glycol (PEG-SOD) | Merck/Sigma | S9549 | Superoxide anion scavenger (specificity control) |
Thrombin from human plasma | Merck/Sigma | T6884 | For platelet stimulation and μ-slide coating |
VAS2870 | Enzo Life Science | BML-EI395 | NOX inhibitor |
Zeiss 510 LSM confocal microscope | Zeiss | NA | Confocal microscope |