Summary

Альтернативные методы определения образования супероксид-анионов в тромбоцитах

Published: March 29, 2024
doi:

Summary

Образование супероксид-аниона имеет важное значение для стимуляции тромбоцитов и, в случае его нерегуляции, имеет решающее значение для тромботических заболеваний. В данной работе мы представляем три протокола для селективного детектирования супероксид-анионов и изучения редокс-зависимой регуляции тромбоцитов.

Abstract

Активные формы кислорода (АФК) представляют собой крайне нестабильные молекулы, содержащие кислород. Их химическая нестабильность делает их чрезвычайно реактивными и дает им способность реагировать с важными биологическими молекулами, такими как белки, нуклеиновые кислоты и липиды. Супероксидные анионы являются важными АФК, образующимися при восстановлении молекулярного восстановления кислорода (т.е. приобретении одного электрона). Несмотря на то, что первоначально они участвовали исключительно в старении, дегенеративных и патогенных процессах, в последнее время их участие в важных физиологических реакциях стало очевидным. Было показано, что в сосудистой системе супероксид-анионы модулируют дифференцировку и функцию гладкомышечных клеток сосудов, пролиферацию и миграцию эндотелиальных клеток сосудов в ангиогенезе, иммунный ответ и активацию тромбоцитов в гемостазе. Роль супероксид-анионов особенно важна в нарушении регуляции тромбоцитов и сердечно-сосудистых осложнениях, связанных с множеством заболеваний, включая рак, инфекции, воспаления, диабет и ожирение. Таким образом, в сердечно-сосудистых исследованиях стало чрезвычайно актуальным иметь возможность эффективно измерять образование супероксид-анионов тромбоцитами человека, понимать редокс-зависимые механизмы, регулирующие баланс между гемостазом и тромбозом, и, в конечном итоге, идентифицировать новые фармакологические инструменты для модуляции тромбоцитарных реакций, ведущих к тромбозу и сердечно-сосудистым осложнениям. В данном исследовании представлены три экспериментальных протокола, успешно принятых для обнаружения супероксид-анионов в тромбоцитах и изучения редокс-зависимых механизмов, регулирующих гемостаз и тромбоз: 1) обнаружение супероксид-анионов на основе дигидроэтидия (ДГЭ) методом проточной цитометрии; 2) Визуализация и анализ супероксид-анионов на основе ДГЭ с помощью визуализации одиночных тромбоцитов; и 3) количественное определение выхода супероксид-анионов в тромбоцитах с помощью электронного парамагнитного резонанса (ЭПР) на основе спинового зонда.

Introduction

Супероксид-анион (O2•-) является наиболее функционально значимым АФК, образующимся в тромбоцитах1. O2•- является продуктом восстановления молекулярного кислорода и предшественником многих различных АФК 2. Дисмутация O2•- приводит к образованию перекиси водорода (H2O2) в результате спонтанных реакций в водном растворе или реакций, катализируемых супероксиддисмутазами (SODs3). Несмотря на то, что были предложены различные ферментативные источники (например, ксантиноксидаза4, липоксигеназа5, циклооксигеназа6 и синтаза оксида азота7), митохондриальное дыхание 8,9 и никотинамидадениндинуклеотидфосфатоксидаза (NOXs)10 являются наиболее заметными источниками супероксид-аниона в эукариотических клетках. То же самое, по-видимому, имеет место и в отношении тромбоцитов, где утечка электронов из митохондриального дыхания11,12 и ферментативная активность NOXs13,14 были описаны как основные факторы, влияющие на выброс супероксид-анионов.

Хотя несколько исследований были сосредоточены на регуляции тромбоцитов с помощью O2•-, нет единого мнения относительно молекулярных механизмов, ответственных за это. Предложена модуляция активности поверхностных рецепторов путем прямого окисления и образования дисульфидных связей для различных рецепторов тромбоцитов. Предполагается положительная регуляция интегрина αIIbβ3 АФК путем прямого окисления остатков цистеина 15,16,17. Аналогичным образом, поскольку реакция тромбоцитов на коллаген зависит от дисульфид-зависимой димеризации и последующей димеризации гликопротеина VI (GPVI)18, было предложено потенцирование активности рецептора путем АФК-зависимого окисления19, хотя это и не было полностью доказано экспериментально. Наконец, было показано, что индуцированное АФК окисление сульфгидрильных групп гликопротеина Ib (GPIb) способствует адгезии тромбоцитов и взаимодействию тромбоцитов с лейкоцитами во время воспаления20. И наоборот, как возможное следствие снижения окисления сульфгидрильных групп и активации рецепторов, выделение эктодомена как GPVI, так и GPIb уменьшается при редуцировании условий21.

Также предложены способы действия, не зависящие от прямого окисления поверхностных рецепторов тромбоцитов. Было показано, что АФК, включая O2•-, положительно модулируют коллагеновый рецептор GPVI за счет ослабления активности области гомологии Src 2, содержащей протеинтирозинфосфатазу 2 (SHP-2), которая отрицательно регулирует сигнальный каскад этого рецептора22. Кроме того, O2•- может образовывать ONOO(пероксинитрит) путем быстрой реакции с оксидом азота (NO), который в норме ингибирует тромбоциты через NO-чувствительную гуанилилциклазу (NO-GC) и генерацию отрицательного регулятора тромбоцитов циклической GMP (cGMP)23,24. Возникающее в результате снижение уровня NO может привести к потенцированию тромбоцитов. В качестве альтернативы, предполагается, что образование O2•- с помощью NOX2 способствует перекисному окислению липидов и образованию изопростана, что имеет важное значение для активации тромбоцитов и адгезии. Наконец, митоген-активируемая протеинкиназа (MAPK) внеклеточная сигнал-регулируемая киназа 5 (ERK5), протеинкиназа, предлагаемая в качестве датчика редокс-стресса в тромбоцитах26, активируетсяO2•- и индуцирует фенотип прокоагулянта в тромбоцитах (что оценивается с помощью измерения экстернализации фосфатидилсерина на основе проточной цитометрии)27.

Нарушение регуляции образования O2•- и других АФК в тромбоцитах было связано с преувеличенной гемостатической реакцией, приводящей к тромботическим сердечно-сосудистым осложнениям, связанным с атеросклерозом, сахарным диабетом, гипертонией, ожирением и раком28,29. В этих патологических условиях выход АФК тромбоцитами увеличивается, что приводит к потенцированию их адгезивных и агрегационных реакций. В дополнение к влиянию на реакцию тромбоцитов, выход свободных радикалов тромбоцитов может иметь последствия для других клеток крови и сосудистых структур, что является плохо изученной и недостаточно изученной областью сердечно-сосудистого здоровья. Несмотря на наше ограниченное понимание молекулярных механизмов, связывающих окислительный стресс с тромботическими состояниями, клиническая значимость антиоксидантов для защиты от сердечно-сосудистых заболеваний привлекла значительное внимание. Было показано, что уровни антиоксидантов в плазме обратно коррелируют с риском развития сердечно-сосудистых заболеваний, а потребление антиоксидантов с пищей защищает от ишемической болезни сердца31,32. Следовательно, использование пищевых антиоксидантов было рекомендовано как многообещающий подход к профилактике сердечно-сосудистых заболеваний 33,34,35. Среди эффектов образования АФК в тромбоцитах увеличение апоптоза может иметь важные патофизиологические эффекты36,37. В целом, надежные протоколы для обнаружения и количественного определения выхода O2•- из тромбоцитов становятся все более актуальными в исследованиях сердечно-сосудистых заболеваний.

В настоящее время доступные методы обнаружения АФК имеют существенные ограничения специфичности (т.е. химическая природа обнаруженных молекул окислителя неизвестна) и надежности (т.е. нежелательное взаимодействие с биологическими молекулами и экспериментальными реагентами приводит к смещенным нефизиологическим результатам)38,39. Наиболее часто используемый подход к выявлению АФК в тромбоцитах основан на использовании дихлордигидрофлуоресцеина диацетата (DCFDA), который превращается в дихлордигидрофлуоресцеин (DCFH) посредством внутриклеточных эстераз и, следовательно, в высокофлуоресцентный дихлорфлуоресцеин (DCF) клеточными окислителями, включая гидроксильные радикалы и промежуточные соединения пероксидазы-H2O2 40,41. Несмотря на его широкое использование, были подняты серьезные вопросы относительно надежности этого подхода для измерения внутриклеточного АФК38. Окисление DCFH до DCF может быть, фактически, индуцировано ионами переходных металлов (например, Fe2+) или ферментами, содержащими гем (например, цитохромами) вместо ROS42. Кроме того, DCFDA превращается клеточными пероксидазами в свою свободнорадикальную форму семихинона (DCF•-), которая, в свою очередь, окисляется до DCF в результате реакции с молекулярным кислородом (O2) с выделением O2•-, что приводит к искусственной амплификации окислительных реакций 41,43,44. Таким образом, обнаружение внутриклеточных АФК с помощью DCFDA полезно для получения первоначальных представлений, но требует тщательного рассмотрения и обширного экспериментального контроля38,39.

В данном исследовании представлены три альтернативных метода обнаружения и измерения ключевого регулятора функции тромбоцитов O2•-1. Первый метод заключается в обнаружении с помощью DHE и проточной цитометрии, что дает преимущества надежности и специфичности по сравнению с DCFDA. Второй предложенный здесь метод также использует DHE, но метод детектирования представляет собой флуоресцентную визуализацию живых тромбоцитов, которая позволяет изучать генерацию сигналов O2•-на тромбоцитах с быстрой кинетикой и разрешением отдельных клеток. Наконец, протокол, основанный на использовании гидроксиламинового спинового зонда 1-гидрокси-3-метоксикарбонил-2,2,5,5-тетраметилпирролидина (CMH) в экспериментах по резонансу ЭПР, дает возможность количественно оценить скорость образования O2•- тромбоцитами и сравнить ее в различных условиях.

Protocol

Забор периферической крови у добровольцев по обоюдному согласию одобрен местным Комитетом по этике и Национальным управлением по исследованиям в области здравоохранения Национальной службы здравоохранения (ссылка REC: 21/SC/0215; IRAS ID: 283854). 1. Метод 1: Обн…

Representative Results

Для определения флуоресценции DHE с помощью проточной цитометрии мы показываем репрезентативные результаты для тромбоцитов, находящихся либо в состоянии покоя (рис. 3A), либо стимулированных тромбином 0,1 ЕД/мл (рис. 3B). Выход O2•</su…

Discussion

В этой рукописи мы представляем три различных метода, которые могут расширить возможности исследования редокс-зависимой регуляции функции тромбоцитов посредством селективного обнаружения O2. Первые два метода являются улучшением существующих м?…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Эта работа финансировалась грантами Британского фонда сердца (PG/15/40/31522), Alzheimer Research UK (ARUK-PG2017A-3) и Европейского исследовательского совета (#10102507).

Materials

1-hydroxy-3-methoxycarbonyl-2,2,5,5-tetramethylpyrrolidine (CMH) Noxygen Science trasfer and Diagnostics GmbH NOX-02.1-50mg Reagent for EPR (spin probe)
BD FACSAria III BD Biosciences  NA Flow cytometer
Bovine Serum Albumin Merck/Sigma A7030 For μ-slide coating
Bruker E-scan M (Noxyscan) Noxygen Science trasfer and Diagnostics GmbH  NOX-E.11-BES  EPR spectrometer
Catalase–polyethylene glycol (PEG-Cat.) Merck/Sigma C4963 Hydrogen peroxide scavenger (specificity control)
ChronoLog Model 490+4 Labmedics/Chronolog NA Aggregometer
CM radical Noxygen Science trasfer and Diagnostics GmbH NOX-20.1-100mg  Reagent for EPR (calibration control)
deferoxamine  Noxygen Science trasfer and Diagnostics GmbH NOX-09.1-100mg  Reagent for EPR
diethyldithiocarbamate (DETC)  Noxygen Science trasfer and Diagnostics GmbH NOX-10.1-1g  Reagent for EPR
Dihydroethidium Thermo Fisher Scientifics D11347 Superoxide anion probe
Dimethyl sulfoxide Merck/Sigma 34869 For stock solution preparation 
EPR sealing wax plates Noxygen Science trasfer and Diagnostics GmbH NOX-A.3-VPM Consumable for EPR
EPR-grade water Noxygen Science trasfer and Diagnostics GmbH NOX-07.7.1-0.5L  Reagent for EPR
Fibrinogen from human plasma Merck/Sigma F4883 For μ-slide coating
FITC anti-human CD41 Antibody BioLegend 303704 Platelet-specific staining for flow cytometry
Glass cuvettes  Labmedics/Chronolog P/N 312 Consumable for incubation in aggregometer
Horm Collagen Labmedics/Chronolog P/N 385 For platelet stimulation
ImageJ  National Institutes of Health (NIH) NA ImageJ 1.53t (Wayne Rasband)
Indomethacin Merck/Sigma I7378 For platelet isolation
Micropipettes DURAN 50µl Noxygen Science trasfer and Diagnostics GmbH NOX-G.6.1-50µL Consumable for EPR
Poly-L-lysine hydrochloride Merck/Sigma P2658 For μ-slide coating
Prostaglandin E1 (PGE1) Merck/Sigma P5515 For platelet isolation
Sodium citrate (4% w/v solution) Merck/Sigma S5770 For platelet isolation
Stirring bars (Teflon-coated) Labmedics/Chronolog P/N 313 Consumable for incubation in aggregometer
Superoxide dismutase–polyethylene glycol (PEG-SOD) Merck/Sigma S9549 Superoxide anion scavenger (specificity control)
Thrombin from human plasma Merck/Sigma T6884 For platelet stimulation and μ-slide coating
VAS2870 Enzo Life Science BML-EI395 NOX inhibitor
Zeiss 510 LSM confocal microscope Zeiss NA Confocal microscope

References

  1. Vara, D., Cifuentes-Pagano, E., Pagano, P. J., Pula, G. A novel combinatorial technique for simultaneous quantification of oxygen radicals and aggregation reveals unexpected redox patterns in the activation of platelets by different physiopathological stimuli. Haematologica. 104 (9), 1879-1891 (2019).
  2. Fridovich, I. Superoxide radical: An endogenous toxicant. Annu Rev Pharmacol Toxicol. 23, 239-257 (1983).
  3. Keele, B. B., Mccord, J. M., Fridovich, I. Superoxide dismutase from Escherichia coli B. A new manganese-containing enzyme. J Biol Chem. 245 (22), 6176-6181 (1970).
  4. Berry, C. E., Hare, J. M. Xanthine oxidoreductase and cardiovascular disease: Molecular mechanisms and pathophysiological implications. J Physiol. 555, 589-606 (2004).
  5. Kim, C., Kim, J. Y., Kim, J. H. Cytosolic phospholipase a(2), lipoxygenase metabolites, and reactive oxygen species. BMB Rep. 41 (2), 555-559 (2008).
  6. Armstead, W. M., Mirro, R., Busija, D. W., Leffler, C. W. Postischemic generation of superoxide anion by newborn pig brain. Am J Physiol. 255 (2), H401-H403 (1988).
  7. Mayer, B., et al. Nitric oxide synthase-catalyzed activation of oxygen and reduction of cytochromes: Reaction mechanisms and possible physiological implications. J Cardiovasc Pharmacol. 20, S54-S56 (1992).
  8. Du, G., Mouithys-Mickalad, A., Sluse, F. E. Generation of superoxide anion by mitochondria and impairment of their functions during anoxia and reoxygenation in vitro. Free Radic Biol Med. 25 (9), 1066-1074 (1998).
  9. Turrens, J. F. Mitochondrial formation of reactive oxygen species. J Physiol. 552, 335-344 (2003).
  10. Jiang, F., Zhang, Y., Dusting, G. J. Nadph oxidase-mediated redox signaling: Roles in cellular stress response, stress tolerance, and tissue repair. Pharmacol Rev. 63 (1), 218-242 (2011).
  11. Wang, Z., et al. The role of mitochondria-derived reactive oxygen species in hyperthermia-induced platelet apoptosis. PLoS One. 8 (9), e75044 (2013).
  12. Wachowicz, B., Olas, B., Zbikowska, H. M., Buczynski, A. Generation of reactive oxygen species in blood platelets. Platelets. 13 (3), 175-182 (2002).
  13. Vara, D., et al. Nadph oxidases are required for full platelet activation in vitro and thrombosis in vivo but dispensable for plasma coagulation and hemostasis. Arterioscler Thromb Vasc Biol. 41 (2), 683-697 (2021).
  14. Violi, F., Pignatelli, P. Platelet nox, a novel target for anti-thrombotic treatment. Thromb Haemost. 111 (5), 817-823 (2014).
  15. Begonja, A. J., et al. Platelet NAD(P)H-oxidase-generated ros production regulates alphaiibbeta3-integrin activation independent of the NO/CGMP pathway. Blood. 106 (8), 2757-2760 (2005).
  16. Vara, D. S., et al. Autocrine amplification of integrin αIIbβ3 activation and platelet adhesive responses by deoxyribose-1-phosphate. Thromb Haemost. 109 (6), 1108-1119 (2013).
  17. Essex, D. W. The role of thiols and disulfides in platelet function. Antioxid Redox Signal. 6 (4), 736-746 (2004).
  18. Arthur, J. F., et al. Ligand binding rapidly induces disulfide-dependent dimerization of glycoprotein vi on the platelet plasma membrane. J Biol Chem. 282 (42), 30434-30441 (2007).
  19. Arthur, J. F., Gardiner, E. E., Kenny, D., Andrews, R. K., Berndt, M. C. Platelet receptor redox regulation. Platelets. 19 (1), 1-8 (2008).
  20. Kim, K., Li, J., Tseng, A., Andrews, R. K., Cho, J. Nox2 is critical for heterotypic neutrophil-platelet interactions during vascular inflammation. Blood. 126 (16), 1952-1964 (2015).
  21. Hosseini, E., Solouki, A., Roudsari, Z. O., Kargar, F., Ghasemzadeh, M. Reducing state attenuates ectodomain shedding of GPVI while restoring adhesion capacities of stored platelets: Evidence addressing the controversy around the effects of redox condition on thrombosis. J Thromb Thrombolysis. 50 (1), 123-134 (2020).
  22. Jang, J. Y., et al. Reactive oxygen species play a critical role in collagen-induced platelet activation via SHP-2 oxidation. Antioxid Redox Signal. 20 (16), 2528-2540 (2014).
  23. Beckman, J. S., Koppenol, W. H. Nitric oxide, superoxide, and peroxynitrite: The good, the bad, and ugly. Am J Physiol. 271 (5), C1424-C1437 (1996).
  24. Koppenol, W. H., Kissner, R., Beckman, J. S. Syntheses of peroxynitrite: To go with the flow or on solid grounds. Methods Enzymol. 269, 296-302 (1996).
  25. Cammisotto, V., et al. Nox2-mediated platelet activation by glycoprotein (GP) VI: Effect of rivaroxaban alone and in combination with aspirin. Biochem Pharmacol. 163, 111-118 (2019).
  26. Yang, M., et al. Platelet CD36 promotes thrombosis by activating redox sensor ERK5 in hyperlipidemic conditions. Blood. 129 (21), 2917-2927 (2017).
  27. Yang, M., et al. Platelet CD36 signaling through ERK5 promotes caspase-dependent procoagulant activity and fibrin deposition in vivo. Blood Adv. 2 (21), 2848-2861 (2018).
  28. Freedman, J. E. Oxidative stress and platelets. Arterioscler Thromb Vasc Biol. 28 (3), s11-s16 (2008).
  29. Masselli, E., et al. ROS in platelet biology: Functional aspects and methodological insights. Int J Mol Sci. 21 (14), 4866 (2020).
  30. Madamanchi, N. R., Vendrov, A., Runge, M. S. Oxidative stress and vascular disease. Arterioscler Thromb Vasc Biol. 25 (1), 29-38 (2005).
  31. Riemersma, R. A., et al. Risk of angina pectoris and plasma concentrations of vitamins a, c, and e and carotene. Lancet. 337 (8732), 1-5 (1991).
  32. Rimm, E. B., et al. Vitamin E consumption and the risk of coronary heart disease in men. N Engl J Med. 328 (20), 1450-1456 (1993).
  33. Zhang, W., Zheng, Y., Yan, F., Dong, M., Ren, Y. Research progress of quercetin in cardiovascular disease. Front Cardiovasc Med. 10, 1203713 (2023).
  34. Russell, C., Keshavamurthy, S., Saha, S. Nutraceuticals in the management of cardiovascular risk factors: Where is the evidence. Cardiovasc Hematol Disord Drug Targets. 21 (3), 150-161 (2021).
  35. Rotariu, D., et al. Oxidative stress – complex pathological issues concerning the hallmark of cardiovascular and metabolic disorders. Biomed Pharmacother. 152, 113238 (2022).
  36. Hosseini, E., Ghasemzadeh, M., Atashibarg, M., Haghshenas, M. R. O. S. scavenger, n-acetyl-l-cysteine and NOX specific inhibitor, VAS2870 reduce platelets apoptosis while enhancing their viability during storage. Transfusion. 59 (4), 1333-1343 (2019).
  37. Hosseini, E., Nodeh, F. K., Ghasemzadeh, M. Gamma irradiation induces a pro-apoptotic state in longer stored platelets, without progressing to an overt apoptosis by day 7 of storage. Apoptosis. 28 (7-8), 1141-1153 (2023).
  38. Griendling, K. K., et al. Measurement of reactive oxygen species, reactive nitrogen species, and redox-dependent signaling in the cardiovascular system: A scientific statement from the American heart association. Circ Res. 119 (5), e39-e75 (2016).
  39. Murphy, M. P., et al. Guidelines for measuring reactive oxygen species and oxidative damage in cells and in vivo. Nat Metab. 4 (6), 651-662 (2022).
  40. Hempel, S. L., Buettner, G. R., O’malley, Y. Q., Wessels, D. A., Flaherty, D. M. Dihydrofluorescein diacetate is superior for detecting intracellular oxidants: Comparison with 2′,7′-dichlorodihydrofluorescein diacetate, 5(and 6)-carboxy-2′,7′-dichlorodihydrofluorescein diacetate, and dihydrorhodamine 123. Free Radic Biol Med. 27 (1-2), 146-159 (1999).
  41. Kalyanaraman, B., et al. Measuring reactive oxygen and nitrogen species with fluorescent probes: Challenges and limitations. Free Radic Biol Med. 52 (1), 1-6 (2012).
  42. Burkitt, M. J., Wardman, P. Cytochrome c is a potent catalyst of dichlorofluorescin oxidation: Implications for the role of reactive oxygen species in apoptosis. Biochem Biophys Res Commun. 282 (1), 329-333 (2001).
  43. Rota, C., Fann, Y. C., Mason, R. P. Phenoxyl free radical formation during the oxidation of the fluorescent dye 2′,7′-dichlorofluorescein by horseradish peroxidase. Possible consequences for oxidative stress measurements. J Biol Chem. 274 (40), 28161-28168 (1999).
  44. Rota, C., Chignell, C. F., Mason, R. P. Evidence for free radical formation during the oxidation of 2′-7′-dichlorofluorescin to the fluorescent dye 2′-7′-dichlorofluorescein by horseradish peroxidase: Possible implications for oxidative stress measurements. Free Radic Biol Med. 27 (7-8), 873-881 (1999).
  45. Rodig, S. J. Attaching suspension cells to slides for staining. Cold Spring Harb Protoc. 2020 (12), (2020).
  46. Abubaker, A. A., Vara, D., Eggleston, I., Canobbio, I., Pula, G. A novel flow cytometry assay using dihydroethidium as redox-sensitive probe reveals NADPH oxidase-dependent generation of superoxide anion in human platelets exposed to amyloid peptide beta. Platelets. 30 (2), 181-189 (2019).
  47. Gaspar, R. S., et al. Protein disulphide isomerase and NADPH oxidase 1 cooperate to control platelet function and are associated with cardiometabolic disease risk factors. Antioxidants (Basel). 10 (3), 497 (2021).
  48. Gaspar, R. S., Ferreira, P. M., Mitchell, J. L., Pula, G., Gibbins, J. M. Platelet-derived extracellular vesicles express NADPH oxidase-1 (NOX-1), generate superoxide and modulate platelet function. Free Radic Biol Med. 165, 395-400 (2021).
  49. Vara, D., et al. NADPH oxidase 1 is a novel pharmacological target for the development of an antiplatelet drug without bleeding side effects. FASEB J. 34 (10), 13959-13977 (2020).
  50. Lopes-Pires, M. E., et al. Zinc regulates reactive oxygen species generation in platelets. Platelets. 32 (3), 368-377 (2021).
  51. Zielonka, J., Kalyanaraman, B. Hydroethidine- and mitoSOX-derived red fluorescence is not a reliable indicator of intracellular superoxide formation: Another inconvenient truth. Free Radic Biol Med. 48 (8), 983-1001 (2010).
  52. Linden, M. D. Platelet flow cytometry. Methods Mol Biol. 992, 241-262 (2013).
  53. Kauffman, M. E., et al. MitoSOX-based flow cytometry for detecting mitochondrial ROS. React Oxyg Species (Apex). 2 (5), 361-370 (2016).
  54. Sonkar, V. K., et al. NOX2 NADPH oxidase is dispensable for platelet activation or arterial thrombosis in mice. Blood Adv. 3 (8), 1272-1284 (2019).
  55. Dikalov, S. I., Kirilyuk, I. A., Voinov, M., Grigor’ev, I. A. EPR detection of cellular and mitochondrial superoxide using cyclic hydroxylamines. Free Radic Res. 45 (4), 417-430 (2011).
  56. Dikalov, S. I., Polienko, Y. F., Kirilyuk, I. Electron paramagnetic resonance measurements of reactive oxygen species by cyclic hydroxylamine spin probes. Antioxid Redox Signal. 28 (15), 1433-1443 (2018).

Play Video

Cite This Article
Vara, D., Leonard, S., Calaminus, S., Pula, G. Alternative Methods for the Detection of Superoxide Anion Generation in Platelets . J. Vis. Exp. (205), e66647, doi:10.3791/66647 (2024).

View Video