Tijdens de ontwikkeling van de hersenschors ontstaan neuronen en gliacellen in de ventriculaire zone die het ventrikel bekleedt en migreren ze naar het hersenoppervlak. Bij dit proces zijn veel genen betrokken. Dit protocol introduceert de techniek voor de time-lapse beeldvorming van migrerende neuronen en glia-voorlopercellen.
Tijdens de ontwikkeling van de hersenschors ontstaan neuronen en gliacellen in de ventriculaire zone die het ventrikel bekleedt en migreren ze naar het hersenoppervlak. Dit proces is cruciaal voor een goede hersenfunctie en de ontregeling ervan kan na de geboorte leiden tot neurologische ontwikkelings- en psychiatrische stoornissen. In feite zijn veel genen die verantwoordelijk zijn voor deze ziekten betrokken gebleken bij dit proces, en daarom is het belangrijk om te onthullen hoe deze mutaties de cellulaire dynamiek beïnvloeden om de pathogenese van deze ziekten te begrijpen. Dit protocol introduceert een techniek voor time-lapse beeldvorming van migrerende neuronen en glia-voorlopercellen in hersenplakjes verkregen uit muizenembryo’s. Cellen worden gelabeld met fluorescerende eiwitten met behulp van in utero-elektroporatie , waarbij individuele cellen worden gevisualiseerd die migreren uit de ventriculaire zone met een hoge signaal-ruisverhouding. Bovendien stelt dit in vivo genoverdrachtssysteem ons in staat om gemakkelijk gain-of-function- of loss-of-function-experimenten uit te voeren op de gegeven genen door co-elektroporatie van hun expressie of knockdown/knock-out vectoren. Met behulp van dit protocol kan het migratiegedrag en de migratiesnelheid van individuele cellen, informatie die nooit uit vaste hersenen wordt verkregen, worden geanalyseerd.
Tijdens de ontwikkeling van de hersenschors produceren (apicale) radiale glia in de palliale ventriculaire zone (VZ) die de laterale ventrikel bekleedt, eerst neuronen en vervolgens gliale voorlopercellen met enige overlappende periode1. Neuronen worden ook gegenereerd uit intermediaire voorlopercellen of basale radiale glia in de subventriculaire zone (SVZ) grenzend aan de VZ, die beide afkomstig zijn van de (apicale) radiale glia 2,3. Bij muizen produceren radiale gliacellen alleen neuronen op embryonale dag (E) 12-14, zowel neuronen als glia-voorlopercellen op E15-16 en glia-voorlopercellen vanaf E174. De belangrijkste populatie glia-voorlopercellen die tijdens deze embryonale stadia worden gegenereerd, differentieert bij voorkeur tot astrocyten, hoewel sommige cellen ook differentiëren tot oligodendrocyten5. Neuronen en voorlopercellen van astrocyten die in deze stadia worden gegenereerd, migreren naar het hersenoppervlak en komen de corticale plaat binnen (toekomstige corticale grijze stof). Neuronale migratie van de VZ naar de corticale plaat vindt plaats in meerdere fasen. Neuronen nemen eerst een multipolaire morfologie aan net boven de multipolaire celaccumulatiezone (MAZ), overlappend met de SVZ of tussenliggende zone, waar ze meerdere dunne processen krachtig uitbreiden en intrekken en langzaam migreren (multipolaire migratie)6,7. Na ongeveer 24 uur transformeren neuronen in een bipolaire morfologie, waarbij een dik leidend proces zich uitbreidt naar het hersenoppervlak en een dun achterblijvend proces naar achteren, en lineair naar het hersenoppervlak migreren met behulp van een radiaal proces dat zich uitstrekt van de radiale glia naar het piale oppervlak als een steiger, die voortbewegingsmodus 2,8 wordt genoemd. Omdat neuronen in de voortbewegingsmodus altijd het buitenste oppervlak van de corticale plaat bereiken en door hun voorgangers net onder de marginale zone gaan, worden neuronen op een geboortedatum-afhankelijke inside-out manier uitgelijnd in de corticale plaat 9,10,11.
Daarentegen migreren voorlopercellen van astrocyten snel naar de tussenliggende zone en de corticale plaat, met frequente richtingsveranderingen. Dit migratiegedrag is totaal anders dan neuronale migratie en wordt grillige migratie genoemd5. Voorlopers van astrocyten migreren ook langs bloedvaten in een proces dat bloedvatgeleide migratie wordt genoemd. Voorlopers van astrocyten schakelen tussen deze migratiemodi en bereiken de corticale plaat 5,12. Hoewel de positionering van astrocyten niet strikt wordt bepaald door hun productiedatum, is er een milde neiging waargenomen bij vroeggeboren astrocyten om zich te nestelen in het oppervlakkige deel van de corticale plaat5. Interessant is dat astrocyten die zich in de corticale plaat nestelen, in embryonale stadia worden gegenereerd en uiteindelijk differentiëren tot protoplasmatische astrocyten, terwijl postnataal gegenereerde astrocyten niet actief migreren, in de witte stof blijven en differentiëren tot vezelachtigeastrocyten. Hoe deze fase-afhankelijke specificatie van astrocytische subtypes optreedt, blijft onduidelijk.
Er is een groeiend aantal genen geïdentificeerd die betrokken zijn bij neuronale migratie, waaronder genen die betrokken zijn bij neurologische ontwikkelingsstoornissen en psychiatrische stoornissen13,14. Daarom is het cruciaal om de effecten van mutaties in deze genen op het gedrag van migrerende neuronen op te helderen. Zoals eerder vermeld, vindt neuronale migratie plaats in meerdere fasen. Time-lapse-waarnemingen kunnen direct de fase bepalen die het meest wordt beïnvloed (uitgang van de celcyclus, multipolaire-bipolaire overgang, migratiesnelheid van voortbeweging, enz.). De moleculaire mechanismen die ten grondslag liggen aan de specificatie, migratie en positionering van astrocyten blijven echter grotendeels onbekend. Aangezien astrocyten een cruciale rol spelen bij synaptogenese15 en de vorming van bloed-hersenbarrières tijdens de ontwikkeling van de hersenen16, kunnen ontwikkelingsstoornissen bij astrocyten leiden tot neurologische ontwikkelingsstoornissen. Time-lapse-studies naar voorlopercellen van astrocyten kunnen deze moleculaire mechanismen en hun relatie met psychische aandoeningen verduidelijken.
Dit protocol biedt een methode voor time-lapse-observatie van corticale VZ-afgeleide cellen. Een soortgelijk videoprotocol voor de observatie van neuronale migratie is al gepubliceerd17. Hier beschrijven we de methode voor zowel migrerende neuronen als astrocytenvoorlopercellen. Om deze cellen te labelen met fluorescerende eiwitten, zoals groene en rode fluorescerende eiwitten (GFP en RFP), worden plasmidemengsels met de juiste componenten in de corticale VZ geïntroduceerd door in utero elektroporatie in de juiste stadia 18,19,20,21. De gemanipuleerde embryo’s worden in de gewenste stadia verwijderd en de hersenen worden in plakjes gesneden en gebruikt voor time-lapse-observaties met behulp van een laserscanmicroscoop. De migratiesnelheid, richting en ander gedrag, dat nooit wordt aangepakt met behulp van vaste hersenmonsters, kan met deze methode worden onderzocht. Door gebruik te maken van in utero elektroporatie, expressie en knockdown/knock-out vectoren kunnen ze gemakkelijk gelijktijdig worden overgedragen met fluorescerende eiwitvectoren, waardoor we gain-of-function-en verlies-of-function-studies van specifieke genen kunnen uitvoeren.
Dit protocol introduceerde een methode voor de time-lapse observatie van cellen afkomstig van de palliale (corticale) VZ. Om de migrerende cellen van de VZ te labelen, gebruikten we in utero-elektroporatie, waarbij individuele cellen duidelijk werden gelabeld met een hogere signaal-ruisverhouding dan in virale vector-gemedieerde labeling. Met behulp van in utero-elektroporatie kan elk type vector in elke combinatie gemakkelijk in de radiale gliacellen (neurale stamcellen) in levende embryo’s worden inge…
The authors have nothing to disclose.
Tα1 promotor is een geschenk van P. Barker en F.D. Miller. Dcx promotor is een geschenk van Q. Lu. hGFAP-Cre was een geschenk van Albee Messing. Het PiggyBac transposon vector systeem werd geleverd door het Sanger Instituut. Flt1-DsRed-muizen werden geleverd door M. Ema (Shiga University). Dit werk werd ondersteund door JSPS KAKENHI (subsidienummer JP21K07309 aan H. Tabata, JP20H05688 en JP22K19365 aan K. Nakajima) en Takeda Science Foundation, Keio Gijuku Fukuzawa Memorial Fund for the Advancement of Education and Research, Keio Gijuku Academic Development Funds aan K. Nakajima.
Aspirator tube assembly | Drummond | 2-040-000 | |
Atipamezole (5 mg/mL) | Meiji | Mepatia | |
Autoclip | Becton Dickinson | 427630 | 9 mm |
B27 supplement | Gibco | 17504-044 | |
Butorphanol (5 mg/mL) | Meiji | Vetorphale | |
Cell culture insert | Millipore | PICM ORG 50 | |
Confocal microscope | Nikon | A1RHD25 | Equipped with a long working distance lens (S Plan Fluor ELWD 20XC) |
Cryomold | Tissue-Tek | 4566 | |
Culture chamber | Tokken | TK-NBCMP | Custom-made |
Electroporator | NEPA Gene | NEPA21 | |
Fast Green | Sigma-Aldrich | F7258 | |
Gas mixer | Tokken | TK-MIGM01-02 | |
Glass base dish | Iwaki | 3910-035 | Diameter of glass base is 27 mm |
Glass capillaries | Narishige | GD-1 | |
HBS (2x) | Sigma-Aldrich | 51558 | |
HBSS(-) | Wako | 084-08345 | |
Heater Unit | Tokken | TK-0003HU20 | Custom-made, including hood and heater |
hGFAP-Cre | Addgene | #40591 | A gift from Albee Messing |
ImageJ | https://imagej.net/ij/ | ||
L-glutamine (200 mM) | Gibco | 25030 | |
Low melting temperature agarose | Lonza | 50100 | |
Medetomidine (1 mg/mL) | Meiji | Medetomin | |
Microinjector | Narishige | IM-300 | |
Midazolam (5 mg/mL) | Sandoz | Midazolam | |
MTrackJ | https://imagescience.org/meijering/software/mtrackj/ | ||
Neurobasal medium | Gibco | 21103-049 | |
pCAG-hyPBase | The hyPBase cDNA from pCMV-hyPBase (a gift from Sanger Institute) was inserted into the downstream of the CAG promoter of pCAGGS (a gift from J. Miyazaki). | ||
pDcx-Dre | The Dcx promoter from Dcx4kbEGFP70 (a gift from Q. Lu) was exchanged with CAG promoter of pCAG-NLS-HA-Dre34 (a gift from Pawel Pelczar, Addgene #51272). | ||
Penicillin + Streptomycin | Gibco | 15140122 | |
Plasmid purification kit | Invitrogen | PureLink HiPure plasmid midiprep kit (K210005) | |
pPB-CAG-LNL-RFP | CAG-LNL cassette from pCALNL-DsRed (a gift from Connie Cepko, Addgene #13769), and TurboRFP cDNA (Evrogen, FP232) were inserted into the cloning site of pPB-CAG.EBNXN (a gift from Sanger Institute). | ||
pPB-CAG-rDIO-EGFP | The sequence containning synthetic rox sites, synthetic DIO cassette, and EGFP cDNA from pEGFP-N1 (Clontech, U55762) in reverse direction were inserted into the cloning site of pPB-CAG.EBNXN (a gift from Sanger Institute). The sequence is provided in the Supplementary File. | ||
Puller | Narishige | PN-31 | |
StackRed | a plugin for ImageJ | http://bigwww.epfl.ch/thevenaz/stackreg/ | |
Suture needle | Nazme | C-24-521-R No.1 | 1/2 circle, length 14 mm |
Suture thread | Nazme | C-23-B2 | Silk, size 5-0 |
Timed pregnant ICR (wild-type) mice | Japan SLC | ICR mouse | |
TrackMate | https://imagej.net/plugins/trackmate/index | ||
Tweezer-type electrode | BEX or NEPA Gene | CUY650P5 | |
Tα1-EGFP | EGFP cDNA from pEGFP-N1 (Clontech, U55762) was inserted into the downstream of the Tα1 promoter in plasmid 253 (a gift from P. Barker and F.D.Miller) | ||
Vibrating microtome | Leica or Zeiss | Vibrating blade microtome VT1000S or Hyrax V50. |