Summary

Time-lapse beeldvorming van migrerende neuronen en glia-voorlopercellen in embryonale hersenplakjes van muizen

Published: March 08, 2024
doi:

Summary

Tijdens de ontwikkeling van de hersenschors ontstaan neuronen en gliacellen in de ventriculaire zone die het ventrikel bekleedt en migreren ze naar het hersenoppervlak. Bij dit proces zijn veel genen betrokken. Dit protocol introduceert de techniek voor de time-lapse beeldvorming van migrerende neuronen en glia-voorlopercellen.

Abstract

Tijdens de ontwikkeling van de hersenschors ontstaan neuronen en gliacellen in de ventriculaire zone die het ventrikel bekleedt en migreren ze naar het hersenoppervlak. Dit proces is cruciaal voor een goede hersenfunctie en de ontregeling ervan kan na de geboorte leiden tot neurologische ontwikkelings- en psychiatrische stoornissen. In feite zijn veel genen die verantwoordelijk zijn voor deze ziekten betrokken gebleken bij dit proces, en daarom is het belangrijk om te onthullen hoe deze mutaties de cellulaire dynamiek beïnvloeden om de pathogenese van deze ziekten te begrijpen. Dit protocol introduceert een techniek voor time-lapse beeldvorming van migrerende neuronen en glia-voorlopercellen in hersenplakjes verkregen uit muizenembryo’s. Cellen worden gelabeld met fluorescerende eiwitten met behulp van in utero-elektroporatie , waarbij individuele cellen worden gevisualiseerd die migreren uit de ventriculaire zone met een hoge signaal-ruisverhouding. Bovendien stelt dit in vivo genoverdrachtssysteem ons in staat om gemakkelijk gain-of-function- of loss-of-function-experimenten uit te voeren op de gegeven genen door co-elektroporatie van hun expressie of knockdown/knock-out vectoren. Met behulp van dit protocol kan het migratiegedrag en de migratiesnelheid van individuele cellen, informatie die nooit uit vaste hersenen wordt verkregen, worden geanalyseerd.

Introduction

Tijdens de ontwikkeling van de hersenschors produceren (apicale) radiale glia in de palliale ventriculaire zone (VZ) die de laterale ventrikel bekleedt, eerst neuronen en vervolgens gliale voorlopercellen met enige overlappende periode1. Neuronen worden ook gegenereerd uit intermediaire voorlopercellen of basale radiale glia in de subventriculaire zone (SVZ) grenzend aan de VZ, die beide afkomstig zijn van de (apicale) radiale glia 2,3. Bij muizen produceren radiale gliacellen alleen neuronen op embryonale dag (E) 12-14, zowel neuronen als glia-voorlopercellen op E15-16 en glia-voorlopercellen vanaf E174. De belangrijkste populatie glia-voorlopercellen die tijdens deze embryonale stadia worden gegenereerd, differentieert bij voorkeur tot astrocyten, hoewel sommige cellen ook differentiëren tot oligodendrocyten5. Neuronen en voorlopercellen van astrocyten die in deze stadia worden gegenereerd, migreren naar het hersenoppervlak en komen de corticale plaat binnen (toekomstige corticale grijze stof). Neuronale migratie van de VZ naar de corticale plaat vindt plaats in meerdere fasen. Neuronen nemen eerst een multipolaire morfologie aan net boven de multipolaire celaccumulatiezone (MAZ), overlappend met de SVZ of tussenliggende zone, waar ze meerdere dunne processen krachtig uitbreiden en intrekken en langzaam migreren (multipolaire migratie)6,7. Na ongeveer 24 uur transformeren neuronen in een bipolaire morfologie, waarbij een dik leidend proces zich uitbreidt naar het hersenoppervlak en een dun achterblijvend proces naar achteren, en lineair naar het hersenoppervlak migreren met behulp van een radiaal proces dat zich uitstrekt van de radiale glia naar het piale oppervlak als een steiger, die voortbewegingsmodus 2,8 wordt genoemd. Omdat neuronen in de voortbewegingsmodus altijd het buitenste oppervlak van de corticale plaat bereiken en door hun voorgangers net onder de marginale zone gaan, worden neuronen op een geboortedatum-afhankelijke inside-out manier uitgelijnd in de corticale plaat 9,10,11.

Daarentegen migreren voorlopercellen van astrocyten snel naar de tussenliggende zone en de corticale plaat, met frequente richtingsveranderingen. Dit migratiegedrag is totaal anders dan neuronale migratie en wordt grillige migratie genoemd5. Voorlopers van astrocyten migreren ook langs bloedvaten in een proces dat bloedvatgeleide migratie wordt genoemd. Voorlopers van astrocyten schakelen tussen deze migratiemodi en bereiken de corticale plaat 5,12. Hoewel de positionering van astrocyten niet strikt wordt bepaald door hun productiedatum, is er een milde neiging waargenomen bij vroeggeboren astrocyten om zich te nestelen in het oppervlakkige deel van de corticale plaat5. Interessant is dat astrocyten die zich in de corticale plaat nestelen, in embryonale stadia worden gegenereerd en uiteindelijk differentiëren tot protoplasmatische astrocyten, terwijl postnataal gegenereerde astrocyten niet actief migreren, in de witte stof blijven en differentiëren tot vezelachtigeastrocyten. Hoe deze fase-afhankelijke specificatie van astrocytische subtypes optreedt, blijft onduidelijk.

Er is een groeiend aantal genen geïdentificeerd die betrokken zijn bij neuronale migratie, waaronder genen die betrokken zijn bij neurologische ontwikkelingsstoornissen en psychiatrische stoornissen13,14. Daarom is het cruciaal om de effecten van mutaties in deze genen op het gedrag van migrerende neuronen op te helderen. Zoals eerder vermeld, vindt neuronale migratie plaats in meerdere fasen. Time-lapse-waarnemingen kunnen direct de fase bepalen die het meest wordt beïnvloed (uitgang van de celcyclus, multipolaire-bipolaire overgang, migratiesnelheid van voortbeweging, enz.). De moleculaire mechanismen die ten grondslag liggen aan de specificatie, migratie en positionering van astrocyten blijven echter grotendeels onbekend. Aangezien astrocyten een cruciale rol spelen bij synaptogenese15 en de vorming van bloed-hersenbarrières tijdens de ontwikkeling van de hersenen16, kunnen ontwikkelingsstoornissen bij astrocyten leiden tot neurologische ontwikkelingsstoornissen. Time-lapse-studies naar voorlopercellen van astrocyten kunnen deze moleculaire mechanismen en hun relatie met psychische aandoeningen verduidelijken.

Dit protocol biedt een methode voor time-lapse-observatie van corticale VZ-afgeleide cellen. Een soortgelijk videoprotocol voor de observatie van neuronale migratie is al gepubliceerd17. Hier beschrijven we de methode voor zowel migrerende neuronen als astrocytenvoorlopercellen. Om deze cellen te labelen met fluorescerende eiwitten, zoals groene en rode fluorescerende eiwitten (GFP en RFP), worden plasmidemengsels met de juiste componenten in de corticale VZ geïntroduceerd door in utero elektroporatie in de juiste stadia 18,19,20,21. De gemanipuleerde embryo’s worden in de gewenste stadia verwijderd en de hersenen worden in plakjes gesneden en gebruikt voor time-lapse-observaties met behulp van een laserscanmicroscoop. De migratiesnelheid, richting en ander gedrag, dat nooit wordt aangepakt met behulp van vaste hersenmonsters, kan met deze methode worden onderzocht. Door gebruik te maken van in utero elektroporatie, expressie en knockdown/knock-out vectoren kunnen ze gemakkelijk gelijktijdig worden overgedragen met fluorescerende eiwitvectoren, waardoor we gain-of-function-en verlies-of-function-studies van specifieke genen kunnen uitvoeren.

Protocol

De huidige studie werd uitgevoerd met goedkeuring van en volgens de richtlijnen van de Animal Care and Use Committee van het Institute for Developmental Research, Aichi Developmental Disability Center (#2019-013) en Keio University (A2021-030). Getimede zwangere ICR (wild-type) muizen werden commercieel verkregen (zie Materiaaltabel). Om de relatie tussen migrerende cellen en bloedvaten te observeren, werden Flt1-DsRed-muizen gebruikt, waarbij de endotheelcellen DsRed22 tot expre…

Representative Results

Radiale gliacellen in de palliale VZ produceren alleen neuronen tot E14, en zowel neuronen als gliacellen op E15 en E16. Om het migratiegedrag van neuronen en gliacellen tegelijkertijd te observeren, hebben we ze gelabeld met respectievelijk verbeterde GFP (EGFP) en RFP met behulp van een neuronspecifieke promotor, Tα1-promotor27, en humaan gliafibrillair zuur eiwit (hGFAP) promotor28, die bij voorkeur wordt geactiveerd in astrocyten. Voorlopers van astrocyten her…

Discussion

Dit protocol introduceerde een methode voor de time-lapse observatie van cellen afkomstig van de palliale (corticale) VZ. Om de migrerende cellen van de VZ te labelen, gebruikten we in utero-elektroporatie, waarbij individuele cellen duidelijk werden gelabeld met een hogere signaal-ruisverhouding dan in virale vector-gemedieerde labeling. Met behulp van in utero-elektroporatie kan elk type vector in elke combinatie gemakkelijk in de radiale gliacellen (neurale stamcellen) in levende embryo’s worden inge…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Tα1 promotor is een geschenk van P. Barker en F.D. Miller. Dcx promotor is een geschenk van Q. Lu. hGFAP-Cre was een geschenk van Albee Messing. Het PiggyBac transposon vector systeem werd geleverd door het Sanger Instituut. Flt1-DsRed-muizen werden geleverd door M. Ema (Shiga University). Dit werk werd ondersteund door JSPS KAKENHI (subsidienummer JP21K07309 aan H. Tabata, JP20H05688 en JP22K19365 aan K. Nakajima) en Takeda Science Foundation, Keio Gijuku Fukuzawa Memorial Fund for the Advancement of Education and Research, Keio Gijuku Academic Development Funds aan K. Nakajima.

Materials

Aspirator tube assembly Drummond 2-040-000
Atipamezole (5 mg/mL) Meiji Mepatia
Autoclip Becton Dickinson 427630 9 mm
B27 supplement Gibco 17504-044
Butorphanol (5 mg/mL) Meiji Vetorphale
Cell culture insert Millipore PICM ORG 50
Confocal microscope Nikon A1RHD25 Equipped with a long working distance lens (S Plan Fluor ELWD 20XC)
Cryomold Tissue-Tek 4566
Culture chamber Tokken TK-NBCMP Custom-made
Electroporator NEPA Gene NEPA21
Fast Green Sigma-Aldrich F7258
Gas mixer Tokken TK-MIGM01-02
Glass base dish Iwaki 3910-035 Diameter of glass base is 27 mm
Glass capillaries Narishige GD-1
HBS (2x) Sigma-Aldrich 51558
HBSS(-) Wako 084-08345
Heater Unit Tokken TK-0003HU20 Custom-made, including hood and heater
hGFAP-Cre Addgene #40591 A gift from Albee Messing
ImageJ https://imagej.net/ij/
L-glutamine (200 mM) Gibco 25030
Low melting temperature agarose Lonza 50100
Medetomidine (1 mg/mL) Meiji Medetomin
Microinjector Narishige IM-300
Midazolam (5 mg/mL) Sandoz Midazolam
MTrackJ https://imagescience.org/meijering/software/mtrackj/
Neurobasal medium Gibco 21103-049
pCAG-hyPBase The hyPBase cDNA from pCMV-hyPBase (a gift from Sanger Institute) was inserted into the downstream of the CAG promoter of pCAGGS (a gift from J. Miyazaki).
pDcx-Dre The Dcx promoter from Dcx4kbEGFP70 (a gift from Q. Lu) was exchanged with CAG promoter of pCAG-NLS-HA-Dre34 (a gift from Pawel Pelczar, Addgene #51272).
Penicillin + Streptomycin Gibco 15140122
Plasmid purification kit Invitrogen PureLink HiPure plasmid midiprep kit (K210005)
pPB-CAG-LNL-RFP CAG-LNL cassette from pCALNL-DsRed (a gift from Connie Cepko, Addgene #13769), and TurboRFP cDNA (Evrogen, FP232) were inserted into the cloning site of pPB-CAG.EBNXN (a gift from Sanger Institute).
pPB-CAG-rDIO-EGFP The sequence containning synthetic rox sites, synthetic DIO cassette, and EGFP cDNA from pEGFP-N1 (Clontech, U55762) in reverse direction  were inserted into the cloning site of pPB-CAG.EBNXN (a gift from Sanger Institute). The sequence is provided in the Supplementary File.
Puller Narishige PN-31
StackRed a plugin for ImageJ http://bigwww.epfl.ch/thevenaz/stackreg/
Suture needle Nazme C-24-521-R No.1 1/2 circle, length 14 mm
Suture thread Nazme C-23-B2 Silk, size 5-0
Timed pregnant ICR (wild-type) mice Japan SLC ICR mouse
TrackMate https://imagej.net/plugins/trackmate/index
Tweezer-type electrode BEX or NEPA Gene CUY650P5 
Tα1-EGFP EGFP cDNA from pEGFP-N1 (Clontech, U55762) was inserted into the downstream of the Tα1 promoter in plasmid 253 (a gift from P. Barker and F.D.Miller)
Vibrating microtome Leica or Zeiss Vibrating blade microtome VT1000S or Hyrax V50.

References

  1. Kriegstein, A., Alvarez-Buylla, A. The glial nature of embryonic and adult neural stem cells. Annu Rev Neurosci. 32 (1), 149-184 (2009).
  2. Noctor, S. C., Martínez-Cerdeño, V., Ivic, L., Kriegstein, A. R. Cortical neurons arise in symmetric and asymmetric division zones and migrate through specific phases. Nat Neurosci. 7 (2), 136-144 (2004).
  3. Haubensak, W., Attardo, A., Denk, W., Huttner, W. B. Neurons arise in the basal neuroepithelium of the early mammalian telencephalon: A major site of neurogenesis. P Natl Acad Sci USA. 101 (9), 3196-3201 (2004).
  4. Yoshida, A., Yamaguchi, Y., Nonomura, K., Kawakami, K., Takahashi, Y., Miura, M. Simultaneous expression of different transgenes in neurons and glia by combining in utero electroporation with the Tol2 transposon-mediated gene transfer system. Genes Cells. 15 (5), 501-512 (2010).
  5. Tabata, H., et al. Erratic and blood vessel-guided migration of astrocyte progenitors in the cerebral cortex. Nat Commun. 13 (1), 6571 (2022).
  6. Tabata, H., Nakajima, K. Multipolar Migration: The third mode of radial neuronal migration in the developing cerebral cortex. J Neurosci. 23 (31), 9996-10001 (2003).
  7. Tabata, H., Kanatani, S., Nakajima, K. Differences of migratory behavior between direct progeny of apical progenitors and basal progenitors in the developing cerebral cortex. Cereb Cortex. 19 (9), 2092-2105 (2009).
  8. Rakic, P. Mode of cell migration to the superficial layers of fetal monkey neocortex. J Comp Neurol. 145 (1), 61-83 (1972).
  9. Sekine, K., Honda, T., Kawauchi, T., Kubo, K., Nakajima, K. The outermost region of the developing cortical plate is crucial for both the switch of the radial migration mode and the Dab1-dependent "inside-out" lamination in the neocortex. J Neurosci. 31 (25), 9426-9439 (2011).
  10. Shin, M., et al. Both excitatory and inhibitory neurons transiently form clusters at the outermost region of the developing mammalian cerebral neocortex. J Comp Neurol. 527 (10), 1577-1597 (2019).
  11. Sekine, K., et al. Reelin controls neuronal positioning by promoting cell-matrix adhesion via inside-out activation of integrin α5β1. Neuron. 76 (2), 353-369 (2012).
  12. Morimoto, K., Tabata, H., Takahashi, R., Nakajima, K. Interactions between neural cells and blood vessels in central nervous system development. BioEssays. 230091, (2023).
  13. Tabata, H., Nagata, K. Decoding the molecular mechanisms of neuronal migration using in utero electroporation. Med Mol Morphol. 49 (2), 63-75 (2016).
  14. Ishii, K., Kubo, K., Nakajima, K. Reelin and neuropsychiatric disorders. Front Cell Neurosci. 10, 229 (2016).
  15. Bosworth, A. P., Allen, N. J. The diverse actions of astrocytes during synaptic development. Curr Opin Neurobiol. 47, 38-43 (2017).
  16. Tabata, H. Crosstalk between blood vessels and glia during the central nervous system development. Life. 12 (11), 1761 (2022).
  17. Wiegreffe, C., Feldmann, S., Gaessler, S., Britsch, S. Time-lapse confocal imaging of migrating neurons in organotypic slice culture of embryonic mouse brain using in utero electroporation. J Vis Exp. (125), e55886 (2017).
  18. Saito, T., Nakatsuji, N. Efficient Gene Transfer into the Embryonic Mouse Brain Using in Vivo Electroporation. Dev Biol. 240 (1), 237-246 (2001).
  19. Tabata, H., Nakajima, K. Labeling embryonic mouse central nervous system cells by in utero electroporation. Dev Growth Differ. 50 (6), 507-511 (2008).
  20. Tabata, H., Nakajima, K. Efficient in utero gene transfer system to the developing mouse brain using electroporation: visualization of neuronal migration in the developing cortex. Neuroscience. 103 (4), 865-872 (2001).
  21. Fukuchi-Shimogori, T. Neocortex patterning by the secreted signaling molecule FGF8. Science. 294 (5544), 1071-1074 (2001).
  22. Matsumoto, K., et al. Study of normal and pathological blood vessel morphogenesis in Flt1-tdsRed BAC Tg mice. Genesis. 50 (7), 561-571 (2012).
  23. Kawai, S., Takagi, Y., Kaneko, S., Kurosawa, T. Effect of three types of mixed anesthetic agents alternate to ketamine in mice. Exp Anim. 60 (5), 481-487 (2011).
  24. Meijering, E., Dzyubachyk, O., Smal, I. Methods for cell and particle tracking. Methods Enzymol. 504, 183-200 (2012).
  25. Ershov, D., et al. TrackMate 7: Integrating state-of-the-art segmentation algorithms into tracking pipelines. Nat Methods. 19 (7), 829-832 (2022).
  26. Tinevez, J. -. Y., et al. TrackMate: An open and extensible platform for single-particle tracking. Methods. 115, 80-90 (2017).
  27. Gloster, A., et al. The T alpha 1 alpha-tubulin promoter specifies gene expression as a function of neuronal growth and regeneration in transgenic mice. J Neurosci. 14 (12), 7319-7330 (1994).
  28. Zhuo, L., et al. hGFAP-cre transgenic mice for manipulation of glial and neuronal function in vivo. Genesis. 31 (2), 85-94 (2001).
  29. Yusa, K., Zhou, L., Li, M. A., Bradley, A., Craig, N. L. A hyperactive piggyBac transposase for mammalian applications. P Natl Acad Sci USA. 108 (4), 1531-1536 (2011).
  30. Chen, F., LoTurco, J. A method for stable transgenesis of radial glia lineage in rat neocortex by piggyBac mediated transposition. J Neurosci Meth. 207 (2), 172-180 (2012).
  31. Wang, X., Qiu, R., Tsark, W., Lu, Q. Rapid promoter analysis in developing mouse brain and genetic labeling of young neurons by doublecortin-DsRed-express. J Neurosci Res. 85 (16), 3567-3573 (2007).
  32. Sauer, B. DNA recombination with a heterospecific Cre homolog identified from comparison of the pac-c1 regions of P1-related phages. Nucleic Acids Res. 32 (20), 6086-6095 (2004).
  33. Hermann, M., et al. Binary recombinase systems for high-resolution conditional mutagenesis. Nucleic Acids Res. 42 (6), 3894-3907 (2014).
  34. Kanatani, S., et al. The COUP-TFII/Neuropilin-2 is a molecular switch steering diencephalon-derived GABAergic neurons in the developing mouse brain. P Natl Acad Sci USA. 112 (36), E4985-E4994 (2015).
  35. Yozu, M., Tabata, H., Nakajima, K. The caudal migratory stream: A novel migratory stream of interneurons derived from the caudal ganglionic eminence in the developing mouse forebrain. J Neurosci. 25 (31), 7268-7277 (2005).
  36. Kanatani, S., Yozu, M., Tabata, H., Nakajima, K. COUP-TFII is preferentially expressed in the caudal ganglionic eminence and is involved in the caudal migratory stream. J Neurosci. 28 (50), 13582-13591 (2008).
  37. Kitazawa, A., et al. Hippocampal pyramidal neurons switch from a multipolar migration mode to a novel "climbing" migration mode during development. J Neurosci. 34 (4), 1115-1126 (2014).

Play Video

Cite This Article
Tabata, H., Nagata, K., Nakajima, K. Time-Lapse Imaging of Migrating Neurons and Glial Progenitors in Embryonic Mouse Brain Slices. J. Vis. Exp. (205), e66631, doi:10.3791/66631 (2024).

View Video