Этот протокол обеспечивает оптимизированную и сложную процедуру подготовки образцов органоидов сетчатки для просвечивающей электронной микроскопии. Он подходит для приложений, связанных с анализом синапсов в зрелых органоидах сетчатки.
Органоиды сетчатки (РО) представляют собой трехмерную культуральную систему, имитирующую особенности сетчатки человека, которые дифференцировались от индуцированных плюрипотентных стволовых клеток (ИПСК) в определенных условиях. Развитие и созревание синапсов в АФ изучены иммуноцитохимически и функционально. Однако прямые доказательства синаптической контактной ультраструктуры ограничены, содержащей как специальные ленточные синапсы, так и обычные химические синапсы. Просвечивающая электронная микроскопия (ПЭМ) характеризуется высоким разрешением и хорошей историей, выясняющей развитие сетчатки и созревание синапсов у человека и различных видов. Это мощный инструмент для изучения синаптической структуры в РО, который широко используется в области исследований РО. Поэтому для лучшего изучения структуры синаптических контактов RO на наноуровне и получения высококачественных микроскопических доказательств мы разработали простой и воспроизводимый метод подготовки образцов RO TEM. В этой статье описывается протокол, используемые реагенты и подробные шаги, включая подготовку к фиксации ОО, постфиксацию, встраивание и визуализацию.
Сетчатка, жизненно важный орган зрительной чувствительности у человека и млекопитающих, имеет отчетливую слоистую структуру, характеризующуюся тремя ядерными слоями, содержащими нейронные сомы, и двумя плексиформными слоями, образованными синаптическими связями1, включая обычные синапсы и специализированный ленточный синапс 2,3. Ленточный синапс играет решающую роль в передаче импульсов везикул в постепенном порядке 2,3. Процесс зрения включает в себя передачу электрооптического сигнала через различные уровни нейронов и синапсов, в конечном итоге достигая зрительной коры 4,5.
Органоиды сетчатки (РО) представляют собой трехмерную (3D) культуральную систему, полученную из индуцированных плюрипотентных стволовых клеток (ИПСК), имитирующую физиологические состояния ткани сетчатки in vitro 1,6,7. Этот подход является перспективным для изучения заболеваний сетчатки8, скрининга лекарств9 и служит потенциальной терапией для необратимых дегенеративных состояний сетчатки, таких как пигментный ретинит10 и глаукома11. Являясь мощной системой оптической проводимости in vitro, синапс в АФ является важнейшей структурой, способствующей эффективному преобразованию и передаче сигнала.
Развитие ОО можно условно разделить на три стадии в соответствии с их морфологическими признаками и профилями молекулярной экспрессии 6,12. RO на стадии 1 (около D21-D60) включают в себя нервные клетки-предшественники сетчатки, множество ганглиозных клеток сетчатки (RGC) и несколько звездообразных амакриновых клеток (SAC), соответствующих первой эпохе развития плода человека. На стадии 2 (около D50-D150) RO экспрессируют некоторые предшественники фоторецепторов, интернейроны и гены, связанные с синаптогенезом, что представляет собой фазу перехода. Фоторецепторы развивают зрелость на стадии 3 RO (примерно после D100-D150), что соответствует третьей стадии развития плода человека 6,12,13. Примечательно, что по сравнению с АФ на стадии 1 и стадии 2, РО на стадии 3 имеют отчетливую пластинчатую структуру, синапсы которой созрели12, включая наличие ленточных синапсов14. Более того, недавнее исследование подтвердило, что зрелые синапсы существуют для передачи световых сигналов, что указывает наих функциональность. Таким образом, АФ на стадии 3 часто отбираются для исследования синаптической структуры.
Иммуногистохимия широко применяется для изучения экспрессии различных молекулярных белков. Тем не менее, ограничение оптической микроскопии заключается в ее способности наблюдать только ограниченное количество конкретных клеток и молекул одновременно, что приводит к отсутствию всестороннего анализа взаимоотношений между клетками и окружающей их средой. Просвечивающая электронная микроскопия (ПЭМ) характеризуется высоким разрешением, с ограниченным разрешением 0,1-0,2 нм, превосходящим световой микроскоп в ~10-20 разв 15 раз. Он восполняет дефекты оптической микроскопии и используется для выяснения развития сетчатки и созревания синапсов у человека16,17 и различных видов 18,19,20,21. ПЭМ позволяет проводить прямое различие между пресинаптическими и постсинаптическими компонентами18,20 и даже позволяет всесторонне наблюдать за субклеточными структурами, такими как ленты 2,3, везикулы22 и митохондрии23. Таким образом, ПЭМ является важным инструментом для идентификации типов синапсов и изучения ультраструктуры синаптических контактов в РО на наноуровне.
Важно отметить, что пробоподготовка имеет большое значение для получения высококачественных электронных микрофотографий. Хотя в некоторых исследованиях ЭМ выполняли на RO 12,13,24, подробные процедуры неясны. Поскольку качество изображения электронной микроскопии в значительной степени зависит от эффекта фиксации RO и проникновения реагента, при подготовке необходимо учитывать различные важные факторы. Следовательно, для лучшего исследования синаптических контактов в РО мы представляем метод с хорошей воспроизводимостью, который показывает рабочие точки фиксации, встраивания и идентификации мест наблюдения РО.
В этой статье мы представили подробный протокол наблюдения за обычной и ленточной синаптической ультраструктурой в РО с помощью ПЭМ. Этот протокол основан на описанных ранее способах препарирования сетчатки с некоторыми модификациями20. Чтобы повысить ?…
The authors have nothing to disclose.
Эта работа была частично поддержана грантами Национальной программы ключевых исследований и разработок Китая (2022YFA1105503), Государственной ключевой лаборатории нейронаук (SKLN-202103) и Чжэцзянского фонда естественных наук Китая (Y21H120019), Фонда естественных наук Китая (82070981).
100 mm Petri dish | Corning | 430167 | |
Acetone | Electron Microscopy Science | 10000 | |
B27 supplement | Gibco | A3582801 | |
Cell lifter | Santa Cruz | sc-395251 | |
Copper grids | Beijing Zhongjingkeyi Technology Co., Ltd. | AZH400HH | |
DigitalMicrograph Software | Gatan, Inc. | Software | |
Dispase | StemCell Technologies | #07913 | Bacterial protease |
DMEM/F12 medium | Gibco | #11320033 | |
Embedding mold | Beijing Zhongjingkeyi Technology Co., Ltd. | GZ10592 | |
Epon-812 resin | Electron Microscopy Science | #14900 | |
Fetal Bovine Serum (FBS) | Biological Industries | #04-0021A | |
Glutaraldehyde | Electron Microscopy Science | 16020 | |
hiPSC | Shownin Biotechnology Co. Ltd. | RC01001-A | |
Lead citrate | Beijing Zhongjingkeyi Technology Co., Ltd. | GZ02618 | |
L-GlutaMax | Life Technologies | #35050061 | L-glutamine substitute |
Matrigel | Corning | 356234 | |
Microscope slide | CITOTEST | 80312-3161 | |
N2 supplement | Gibco | 17502048 | |
Na2HPO4· 12H2O | Sigma | 71650 | A component of PB/PBS |
NaH2PO4· H2O | Sigma | 71507 | A component of PB/PBS |
Non-essential amino acids | Sigma | #M7145 | |
Optical microscope | Lab Binocular Biological Microscope | Xsz-107bnii | |
OsO4 | TED PELLA | 4008-160501 | |
Oven | Bluepard | BPG9040A | |
Paraformaldehyde | Electron Microscopy Science | 157-8 | |
Penicillin-Streptomycin | Gibco | #15140-122 | |
Semi/ultrathin microtome | Reichert-Jung | 396649 | |
Taurine | Sigma | #T0625 | |
Toluidine blue | Sangon Biotech | E670105-0100 | |
Transmission Electron Microscopes | HITACHI | H-7500 | |
Uranyl acetate | TED PELLA | CA96049 | |
β-mercaptoethanol | Sigma | 444203 |