Summary

透過型電子顕微鏡法のためのレチナールオルガノイドサンプルの調製

Published: June 07, 2024
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Summary

このプロトコールは、透過型電子顕微鏡用のレチナールオルガノイドサンプルの最適化された精巧な調製手順を提供します。成熟した網膜オルガノイドのシナプス分析を含むアプリケーションに適しています。

Abstract

レチナールオルガノイド(RO)は、特定の条件下で人工多能性幹細胞(iPSC)から分化したヒトの網膜の特徴を模倣した三次元培養システムです。ROにおけるSynapseの発生と成熟は、免疫細胞化学的および機能的に研究されています。しかし、シナプス接触超微細構造の直接的な証拠は限られており、特殊なリボンシナプスと従来の化学シナプスの両方が含まれています。透過型電子顕微鏡(TEM)は、高解像度で、ヒトや様々な種における網膜の発達とシナプスの成熟を解明する立派な歴史を特徴としています。これは、ROのシナプス構造を探索するための強力なツールであり、ROの研究分野で広く使用されています。したがって、ナノスケールでのROシナプス接触の構造をよりよく探索し、高品質の顕微鏡的証拠を得るために、RO TEMサンプル調製の簡単で再現性のある方法を開発しました。このホワイトペーパーでは、プロトコル、使用した試薬、およびRO固定調製、固定後、埋め込み、視覚化などの詳細な手順について説明します。

Introduction

ヒトや哺乳類の重要な視覚感覚器官である網膜は、ニューロン体細胞を収容する3つの核層と、従来のシナプスと特殊なリボンシナプス2,3を含むシナプス結合1によって形成される2つのフジツ状層を特徴とする明確な積層構造を示しています。リボンシナプスは、小胞のインパルスを段階的に伝達する上で重要な役割を果たします2,3。視覚プロセスには、さまざまなレベルのニューロンとシナプスにわたる電気光学信号の伝達が含まれ、最終的には視覚野に到達します4,5

レチナールオルガノイド(RO)は、人工多能性幹細胞(iPSC)に由来する三次元(3D)培養システムであり、in vitroで網膜組織の生理学的状態を模倣しています1,6,7。このアプローチは、網膜疾患の研究8、薬物スクリーニング9、網膜色素変性症10や緑内障11などの不可逆的な網膜変性疾患の潜在的な治療法として役立つことが期待されています。強力なin vitro光学伝導システムとして、RO内のシナプスは効果的なシグナル変換と伝達を促進する重要な構造です5

ROの発生は、その形態学的形質および分子発現プロファイル6,12に応じて、大きく3つの段階に分けることができる。ステージ1(D21-D60付近)のROは、網膜の神経前駆細胞、多くの網膜神経節細胞(RGC)、および少数のスターバーストアマクリン細胞(SAC)で構成され、ヒト胎児の発育の最初のエポックに対応します。ステージ2(D50-D150付近)では、ROは一部の光受容体前駆体、介在ニューロン、および移行期を表すシナプス形成関連遺伝子を発現します。光受容体は、ヒト胎児の発育の第3段階に対応するステージ3のRO(D100-D150の後頃)で成熟します6,12,13。注目すべきは、ステージ1およびステージ2のROと比較して、ステージ3のROは、リボンシナプス14の存在を含む、シナプスが成熟した明確なラメラ構造12を有する。さらに、最近の研究では、成熟したシナプスが光信号の透過性に存在することが確認されており、それらが機能的であることが示されています13。したがって、ステージ3のROは、シナプス構造を調査するために選択されることがよくあります。

免疫組織化学は、さまざまな分子タンパク質の発現の研究に広く応用されています。しかし、光学顕微鏡の限界は、一度に限られた数の特定の細胞や分子しか観察できないため、細胞とその周辺環境との関係を包括的に解析することができません。透過型電子顕微鏡(TEM)は、0.1〜0.2 nmの限られた分解能で、光学顕微鏡を15倍~10〜20倍上回る高解像度を特徴としています。光学顕微鏡の欠点を補うもので、ヒト16,17や種々の種18,19,20,21における網膜の発達とシナプスの成熟を解明するために用いられている。TEMは、シナプス前成分とシナプス後成分18,20を直接区別することを可能にし、さらにはリボン2,3、22、ミトコンドリア23などの細胞内構造の包括的な観察も可能にする。したがって、TEMは、シナプスの種類を特定し、ナノスケールでROのシナプス接触の超微細構造を探索するために不可欠なツールです。

サンプル調製は、高品質の電子顕微鏡写真を取得するために非常に重要であることに注意することが重要です。いくつかの研究では、RO12,13,24に対してEMを実施しましたが、詳細な手順は不明です。電子顕微鏡の画像品質は、ROの固定と試薬の透過の影響に大きく依存するため、調製時にはさまざまな重要な要素を考慮する必要があります。したがって、ROのシナプス接触をよりよく調べるために、ROの固定、埋め込み、および観察部位の同定の操作点を示す再現性の良い方法を提示します。

Protocol

1. iPS細胞からのROの取得25 注:ROは、以前に報告された手順を変更することにより、iPSCから導き出されました。 細菌性プロテアーゼを用いて~90%のコンフルエンスでiPS細胞を解離します( 材料の表を参照)。コロニーを細かく刻み、セルリフターでこすり落とします。 採取後、細…

Representative Results

iPS細胞の分化による3次元ROの確立は、網膜疾患のメカニズムや幹細胞補充療法の研究に強力なツールを提供します。他の研究者は、ROのシナプス結合を機能的および免疫細胞化学的に実証していますが、従来のシナプスとリボンシナプスの直接的な証拠は非常に限られています。ここでは、TEMによってROの2種類のシナプスの超微細構造を調査する方法を紹介します。1…

Discussion

この記事では、TEMによってROの従来のシナプス超微細構造とリボンシナプスの超微細構造を観察するための詳細なプロトコルを紹介しました。このプロトコルは、前述の網膜調製方法に基づいており、いくつかの変更が加えられています20。サンプル処理の成功率とTEM顕微鏡写真の品質を向上させるためには、以下のポイントを考慮してください。?…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

この研究は、National Key Research and Development Program of China(2022YFA1105503)、State Key Laboratory of Neuroscience(SKLN-202103)、Zhejiang Natural Science Foundation of China(Y21H120019)、Natural Science Foundation of China(82070981)からの助成金によって部分的に支援されました。

Materials

100 mm Petri dish Corning 430167
Acetone Electron Microscopy Science 10000
B27 supplement Gibco A3582801
Cell lifter Santa Cruz sc-395251
Copper grids Beijing Zhongjingkeyi Technology Co., Ltd. AZH400HH
DigitalMicrograph Software Gatan, Inc. Software
Dispase StemCell Technologies #07913 Bacterial protease
DMEM/F12 medium Gibco #11320033
Embedding mold Beijing Zhongjingkeyi Technology Co., Ltd. GZ10592
Epon-812 resin Electron Microscopy Science #14900
Fetal Bovine Serum (FBS) Biological Industries #04-0021A
Glutaraldehyde Electron Microscopy Science 16020
hiPSC Shownin Biotechnology Co. Ltd. RC01001-A
Lead citrate Beijing Zhongjingkeyi Technology Co., Ltd. GZ02618
L-GlutaMax Life Technologies #35050061 L-glutamine substitute
Matrigel Corning 356234
Microscope slide CITOTEST 80312-3161
N2 supplement Gibco 17502048
Na2HPO4· 12H2O Sigma 71650 A component of PB/PBS
NaH2PO4· H2O Sigma 71507 A component of PB/PBS
Non-essential amino acids Sigma #M7145
Optical microscope Lab Binocular Biological Microscope Xsz-107bnii
OsO4 TED PELLA 4008-160501
Oven Bluepard BPG9040A
Paraformaldehyde Electron Microscopy Science 157-8
Penicillin-Streptomycin Gibco #15140-122
Semi/ultrathin microtome Reichert-Jung 396649
Taurine Sigma #T0625
Toluidine blue Sangon Biotech E670105-0100
Transmission Electron Microscopes HITACHI H-7500
Uranyl acetate TED PELLA CA96049
β-mercaptoethanol Sigma 444203

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Cite This Article
Liu, X., Rao, B., Lin, Q., Gao, M., Zhang, J. Preparing Retinal Organoid Samples for Transmission Electron Microscopy. J. Vis. Exp. (208), e66590, doi:10.3791/66590 (2024).

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