Summary

Beoordeling van de connectiviteitsuitkomstmaten van de motoreenheid van het rattendiafragma als kwantitatieve biomarkers van degeneratie en compensatie van phrenische motorneuronen

Published: April 19, 2024
doi:

Summary

In deze studie presenteren we een in vivo methode voor het schatten van het aantal en de grootte van de motoreenheid om de connectiviteit van de middenrifmotoreenheid van de rat te kwantificeren. Een stapsgewijze aanpak van deze technieken wordt beschreven.

Abstract

Verlies van de beademingsspierfunctie is een gevolg van letsel aan motorneuronen en neurodegeneratie (bijv. respectievelijk cervicale ruggenmergbeschadiging en amyotrofische laterale sclerose). Phrenische motorneuronen zijn de laatste schakel tussen het centrale zenuwstelsel en de spier, en hun respectievelijke motoreenheden (groepen spiervezels die worden geïnnerveerd door een enkel motorneuron) vertegenwoordigen de kleinste functionele eenheid van het neuromusculaire ventilatorsysteem. Samengesteld spieractiepotentiaal (CMAP), enkelvoudig motorisch eenheidspotentiaal (SMUP) en schatting van het aantal motoreenheden (MUNE) zijn gevestigde elektrofysiologische benaderingen die de longitudinale beoordeling van de integriteit van de motorische eenheid in diermodellen in de loop van de tijd mogelijk maken, maar die meestal zijn toegepast op de spieren van ledematen. Daarom zijn de doelstellingen van deze studie het beschrijven van een benadering in preklinische knaagdierstudies die longitudinaal kan worden gebruikt om de phrenische MUNE, de grootte van de motoreenheid (weergegeven als SMUP) en CMAP te kwantificeren, en vervolgens om het nut van deze benaderingen in een model voor motorneuronverlies aan te tonen. Gevoelige, objectieve en translationeel relevante biomarkers voor neuronaal letsel, degeneratie en regeneratie bij motorneuronletsel en ziekten kunnen experimentele onderzoeksontdekkingen aanzienlijk helpen en versnellen tot klinische tests.

Introduction

Phrenische motorneuronen (MN’s), die zich uitstrekken van C3- tot C6-myotoomniveaus, vormen de laatste schakel van het centrale zenuwstelsel (CZS) naar de middenrifspier1. Phrenische motorische eenheden (MU’s) bestaan uit een enkele spinale MN en zijn geïnnerveerde middenrifspiervezels die de kleinste functionele eenheid van het respiratoire neuromusculaire systeem vormen. De beademingsfunctie vereist een adequate samentrekking van de middenrifspier, bereikt door gecoördineerde activering van de phrenic MU-pool 2,3. Veel neurologische aandoeningen, waaronder amyotrofische laterale sclerose (ALS), leiden tot ernstige ademhalingsstoornissen en dragen uiteindelijk bij aande doodsoorzaak.

Er kunnen verschillende elektrofysiologische benaderingen worden gebruikt om de integriteit van de pool van de motoreenheid (MU) in vivo te evalueren en te bewaken. Samengesteld spieractiepotentiaal (CMAP) weerspiegelt de samengevatte depolarisatie van alle spiervezels in een specifieke spier of spiergroep na perifere zenuwstimulatie en is gevoelig voor een reeks neuromusculaire aandoeningen, waaronder ALS 5,6 en spinale musculaire atrofie (SMA) 7,8,9. Een beperking van CMAP-beoordeling is dat collaterale ontkieming kan leiden tot een gehandhaafde CMAP-amplitude en -oppervlakte, zelfs in aanwezigheid van MU-verlies10. Om deze beperking te overwinnen, zijn er wijzigingen aangebracht in de CMAP-techniek om zowel het aantal motoreenheden als maat11 te evalueren. Bovendien suggereerde een in vivo studie naar de functionele beoordeling van membraan CMAP door een elektrofysiologisch systeem dat het ook haalbaar zou kunnen zijn om de beschreven membraan CMAP-registratietechniek te gebruiken voor het schatten van het aantal motoreenheden12.

De techniek van de incrementele schatting van het aantal motorische eenheden (MUNE) werd voor het eerst geïntroduceerd in de vroege jaren 1970 door McComas et al. voor de extensor digitorum brevis-spier bij mensen13. De incrementele MUNE-benadering was een modificatie van de traditionele CMAP-opnametechniek waarbij een geleidelijk toenemende stimulatie werd toegediend om kwantische, alles-of-geen submaximale stappen vast te leggen als indices van responsen van enkelvoudige motoreenheden. De opgetelde en gemiddelde stappen werden gebruikt om een schatting te maken van de grootte van een enkele motoreenheidspotentiaal (SMUP). Deze berekende grootte werd vervolgens verdeeld in de CMAP-amplitude om het aantal MU’s te schatten dat de spier in onderzoek11 innerverteert. MUNE vertoont een hoge gevoeligheid bij het detecteren en bewaken van verlies van de motoreenheid, waardoor disfunctie van de motoreenheid kan worden geïdentificeerd voordat waarneembare veranderingen in maatregelen zoals CMAP-amplitude of gebied14,15 worden waargenomen. Bij ALS-patiënten is bewezen dat MUNE uitzonderlijk gevoelig is en dient als een prominente biomarker voor het begin, de progressie en de prognose van de ziekte16,17.

Er zijn talloze aanpassingen van MUNE ontwikkeld en op grote schaal gebruikt om de MU-functie te beoordelen bij aandoeningen zoals neurodegeneratie, neuraal letsel en het natuurlijke verouderingsproces 18,19,20,21. Sinds de eerste beschrijving zijn verschillende aanpassingen waarbij gebruik wordt gemaakt van zowel elektrofysiologische reacties als incrementele kracht (mechanische) metingen toegepast in zowel menselijke studies als diermodellen22. MUNE biedt een niet-invasieve functionele beoordeling van de connectiviteit van motorneuronen met de spier. Longitudinale toepassing van MUNE maakt het mogelijk om de progressie van ziekte of geïnduceerde fenotypes te begrijpen en de beschermende of regeneratieve effecten van therapeutische interventies te evalueren, zowel in klinische als preklinische omgevingen. Ongeacht de effectiviteit van MUNE meet reproduceerbaarheid en de klinische relevantie van de techniek voor MU-pools in het grootste deel van het menselijk lichaam, zijn de inspanningen grotendeels gericht op ledemaatspieren in knaagdierspieren 10,23,24,25.

Daarom waren de doelstellingen van deze studie het beschrijven van een benadering voor het verkrijgen van samengesteld spieractiepotentieel (CMAP), SMUP en phrenic motor unit number (MUNE) als in vivo beoordelingen die longitudinaal kunnen worden gebruikt in preklinische knaagdierstudies om de MUNE, de grootte van de motoreenheid (weergegeven als SMUP) en CMAP te kwantificeren. Verder presenteren we representatieve gegevens die het verlies van het middenrif MU-nummer benadrukken na intrapleurale toediening van een freen MN-degeneratief middel, choleratoxine B-fragment geconjugeerd aan saporine (CTB-SAP).

Protocol

Alle procedures zijn goedgekeurd en uitgevoerd in overeenstemming met de richtlijnen die zijn opgesteld door de Institutional Animal Care and Use Committee van de Universiteit van Missouri. Experimenten werden uitgevoerd op volwassen mannelijke Sprague-Dawley-ratten in de leeftijd van 11 tot 15 weken. Deze ratten werden in paren gehuisvest en gehouden onder een 12:12 licht-donkercyclus, met te allen tijde toegang tot standaard commercieel gepelleteerd voer en HCl-behandeld water. <p …

Representative Results

De CMAP-, SMUP- en MUNE-technieken die in dit rapport worden beschreven, maken het mogelijk om de neuromusculaire functie in de middenrifspier vast te leggen met behulp van minimaal invasieve elektrodeplaatsing (Figuur 1). De parameters amplitude en oppervlakte kunnen worden gebruikt om de supramaximale CMAP-grootte te karakteriseren, wat een algemene maat biedt voor de output van spiergroepen (Figuur 2). In onze huidige methode…

Discussion

Bij MN-degeneratieve ziekten, zoals ALS, is het van cruciaal belang om de MU die betrokken zijn bij ventilatie te beoordelen28. Ondanks het optreden van respiratoire MN-degeneratie bij ALS-patiënten, blijven het specifieke begin en de progressie van MN-dood onvolledig begrepen 29,30,31. Omdat het belang van dit aspect wordt erkend, zijn verschillende modellen, zowel gene…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Dit werk werd gefinancierd door een Spinal Cord Injury/Disease Research Program Grant van het Missouri Spinal Cord Injury/Disease Research Program (NLN en WDA).

Materials

2 mL Glass Syringe Kent Scientific Corporation SOMNO-2ML
50 mL, Model 705 RN syringe Hamilton Company 7637-01 Utilized to conduct intrapleural injection
Autoclavable 26 G needles (26S RN 9.52 mm 40°) Hamilton Company 7804-04 Utilized to conduct intrapleural injection
Cholera toxin B-subunit (CTB) MilliporeSigma C9903 Utilized for intrapleural injection to label surviving motor neurons
Cholera toxin B-subunit conjugated to saporin (CTB-SAP) Advanced Targeting Systems IT-14 Utilized for intrapleural injection to cause motor neuron death
Detachable Cable Technomed 202845-0000 to connect the recorder electrode to the electrodiagnostic machine
Disposable 2" x 2" disc electrode with leads Cadwell 302290-000 ground electrode
disposable monopolar needles 28 G Technomed 202270-000 cathode and anode stimulating electrodes- recording electrodes
EMG needle cable (Amp/stim switch box) Cadwell 190266-200 to connect monopolar electrodes to electrodiagnostic stimulator
Helping Hands alligator clip with iron base Radio Shack 64-079 Maintaining recording electrode placement 
Isoflurane (250 mL bottle) Piramal Healthcare
monoject curved tip irrigating syringe Covidien 81412012 utilized for application of electrode gel
PhysioSuite Physiological Monitoring System with RightTemp Homeothermic Warming Kent Scientific Corporation PS-RT Includes infrared warming pad, rectal probe, and pad temperature probe
Pro trimmer Pet Grooming Kit Oster 078577-010-003 clippers for hair removal
Saporin (SAP) Advanced Targeting Systems PR-01 Utilized for intrapleural injection (control agent when injected by itself)
Sierra Summit EMG system Cadwell Industries, Inc., Kennewick, WA portable electrodiagnostic system
SomnoSuite Low-Flow Digital Anesthesia System Kent Scientific Corporation SOMNO Includes anti-spill, anti-vapor bottle top adapter; Y adapter tubing; charcoal scavenging filter
Sprague-Dawley rat Envigo colony 208a, Indianapolis, IN
Veterinarian petroleum-based ophthalmic ointment  Puralube 26870 applied during anesthesia to avoid corneal injury

References

  1. Mantilla, C. B., Zhan, W. -. Z., Sieck, G. C. Retrograde labeling of phrenic motoneurons by intrapleural injection. J Neurosci Methods. 182 (2), 244-249 (2009).
  2. Nichols, N. L., Satriotomo, I., Harrigan, D. J., Mitchell, G. S. Acute intermittent hypoxia induced phrenic long-term facilitation despite increased sod1 expression in a rat model of als. Exp Neurol. 273, 138-150 (2015).
  3. Nichols, N. L., Craig, T. A., Tanner, M. A. Phrenic long-term facilitation following intrapleural ctb-sap-induced respiratory motor neuron death. Respir Physiol Neurobiol. 256, 43-49 (2018).
  4. Kiernan, M. C., et al. Amyotrophic lateral sclerosis. Lancet. 377 (9769), 942-955 (2011).
  5. Boërio, D., Kalmar, B., Greensmith, L., Bostock, H. Excitability properties of mouse motor axons in the mutant sod1g93a model of amyotrophic lateral sclerosis. Muscle Nerve. 41 (6), 774-784 (2010).
  6. Shibuya, K., et al. Motor cortical function determines prognosis in sporadic als. Neurology. 87 (5), 513-520 (2016).
  7. Lewelt, A., et al. Compound muscle action potential and motor function in children with spinal muscular atrophy. Muscle Nerve. 42 (5), 703-708 (2010).
  8. Mcgovern, V. L., et al. Smn expression is required in motor neurons to rescue electrophysiological deficits in the smnδ7 mouse model of sma. Hum Mol Genet. 24 (19), 5524-5541 (2015).
  9. Arnold, W. D., et al. Electrophysiological biomarkers in spinal muscular atrophy: Preclinical proof of concept. Ann Clin Transl Neurol. 1 (1), 34-44 (2014).
  10. Harrigan, M. E., et al. Assessing rat forelimb and hindlimb motor unit connectivity as objective and robust biomarkers of spinal motor neuron function. Sci Rep. 9 (1), 16699 (2019).
  11. Arnold, W. D., et al. Electrophysiological motor unit number estimation (mune) measuring compound muscle action potential (cmap) in mouse hindlimb muscles. J. Vis. Exp: JoVE. (103), e52899 (2015).
  12. Martin, M., Li, K., Wright, M. C., Lepore, A. C. Functional and morphological assessment of diaphragm innervation by phrenic motor neurons. J. Vis. Exp: JoVE. (99), e52605 (2015).
  13. Mccomas, A., Fawcett, P. R. W., Campbell, M., Sica, R. Electrophysiological estimation of the number of motor units within a human muscle. J Neurol Neurosurg Psychiatry. 34 (2), 121-131 (1971).
  14. Felice, K. J. A longitudinal study comparing thenar motor unit number estimates to other quantitative tests in patients with amyotrophic lateral sclerosis. Muscle Nerve. 20 (2), 179-185 (1997).
  15. Vucic, S., Rutkove, S. B. Neurophysiological biomarkers in amyotrophic lateral sclerosis. Curr Opin Neurol. 31 (5), 640-647 (2018).
  16. Carleton, S., Brown, W. Changes in motor unit populations in motor neurone disease. J Neurol Neurosurg Psychiatry. 42 (1), 42-51 (1979).
  17. Yuen, E. C., Olney, R. K. Longitudinal study of fiber density and motor unit number estimate in patients with amyotrophic lateral sclerosis. Neurology. 49 (2), 573-578 (1997).
  18. Gooch, C. L., et al. Motor unit number estimation: A technology and literature review. Muscle Nerve. 50 (6), 884-893 (2014).
  19. Henderson, R. D., Ridall, P. G., Hutchinson, N. M., Pettitt, A. N., Mccombe, P. A. Bayesian statistical mune method. Muscle Nerve. 36 (2), 206-213 (2007).
  20. Shefner, J., et al. Multipoint incremental motor unit number estimation as an outcome measure in als. Neurology. 77 (3), 235-241 (2011).
  21. Stein, R. B., Yang, J. F. Methods for estimating the number of motor units in human muscles. Ann Neurol. 28 (4), 487-495 (1990).
  22. Shefner, J. M. Motor unit number estimation in human neurological diseases and animal models. Clin Neurophysiol. 112 (6), 955-964 (2001).
  23. Ahad, M., Rutkove, S. Correlation between muscle electrical impedance data and standard neurophysiologic parameters after experimental neurogenic injury. Physiol Meas. 31 (11), 1437 (2010).
  24. Kasselman, L. J., Shefner, J. M., Rutkove, S. B. Motor unit number estimation in the rat tail using a modified multipoint stimulation technique. Muscle Nerve. 40 (1), 115-121 (2009).
  25. Ngo, S., et al. The relationship between bayesian motor unit number estimation and histological measurements of motor neurons in wild-type and sod1g93a mice. Clin Neurophysiol. 123 (10), 2080-2091 (2012).
  26. Feasby, T., Brown, W. Variation of motor unit size in the human extensor digitorum brevis and thenar muscles. J Neurol Neurosurg Psychiatry. 37 (8), 916-926 (1974).
  27. Nichols, N. L., Vinit, S., Bauernschmidt, L., Mitchell, G. S. Respiratory function after selective respiratory motor neuron death from intrapleural ctb-saporin injections. Exp Neurol. 267, 18-29 (2015).
  28. Nichols, N. L., et al. Ventilatory control in als. Respir Physiol Neurobiol. 189 (2), 429-437 (2013).
  29. Cifra, A., Nani, F., Nistri, A. Respiratory motoneurons and pathological conditions: Lessons from hypoglossal motoneurons challenged by excitotoxic or oxidative stress. Respir Physiol Neurobiol. 179 (1), 89-96 (2011).
  30. Kobayashi, Z., et al. Fals with gly72ser mutation in sod1 gene: Report of a family including the first autopsy case. J Neurol Sci. 300 (1), 9-13 (2011).
  31. Su, M., Wakabayashi, K., Tanno, Y., Inuzuka, T., Takahashi, H. An autopsy case of amyotrophic lateral sclerosis with concomitant alzheimer’s and incidental lewy body diseases. No to shinkei= Brain and nerve. 48 (10), 931-936 (1996).
  32. Lladó, J., et al. Degeneration of respiratory motor neurons in the sod1 g93a transgenic rat model of als. Neurobiol Dis. 21 (1), 110-118 (2006).
  33. Borkowski, L. F., Smith, C. L., Keilholz, A. N., Nichols, N. L. Divergent receptor utilization is necessary for phrenic long-term facilitation over the course of motor neuron loss following ctb-sap intrapleural injections. J Neurophysiol. 126 (3), 709-722 (2021).
  34. Nicolopoulos-Stournaras, S., Iles, J. F. Motor neuron columns in the lumbar spinal cord of the rat. J Comp Neurol. 217 (1), 75-85 (1983).
  35. Tosolini, A. P., Morris, R. Targeting motor end plates for delivery of adenoviruses: An approach to maximize uptake and transduction of spinal cord motor neurons. Sci Rep. 6 (1), 33058 (2016).
  36. Mchanwell, S., Biscoe, T. The localization of motoneurons supplying the hindlimb muscles of the mouse. Phil. Trans. R. , 477-508 (1981).
  37. Nair, J., et al. Histological identification of phrenic afferent projections to the spinal cord. Respir Physiol Neurobiol. 236, 57-68 (2017).
  38. Courtine, G., et al. Can experiments in nonhuman primates expedite the translation of treatments for spinal cord injury in humans. Nat Med. 13 (5), 561-566 (2007).
  39. Friedli, L., et al. Pronounced species divergence in corticospinal tract reorganization and functional recovery after lateralized spinal cord injury favors primates. Sci Transl Med. 7 (302), 134 (2015).
  40. Arnold, R., et al. Nerve excitability in the rat forelimb: A technique to improve translational utility. J Neurosci Methods. 275, 19-24 (2017).
  41. Boriek, A., Rodarte, J., Reid, M. Shape and tension distribution of the passive rat diaphragm. Am J Physiol Regul Integr Comp Physiol. 280, R33-R41 (2001).
This article has been published
Video Coming Soon
Keep me updated:

.

Cite This Article
Ketabforoush, A., Wang, M., Smith, C. L., Arnold, W. D., Nichols, N. L. Assessing Rat Diaphragm Motor Unit Connectivity Outcome Measures as Quantitative Biomarkers of Phrenic Motor Neuron Degeneration and Compensation. J. Vis. Exp. (206), e66568, doi:10.3791/66568 (2024).

View Video