يحدد هذا البروتوكول الخطوات التفصيلية للفحص المجهري الإلكتروني المناعي قبل التضمين ، مع التركيز على استكشاف الدوائر المشبكية وتوطين البروتين في شبكية العين.
تتكون شبكية العين من العديد من الخلايا التي تشكل دوائر عصبية متنوعة ، والتي تشكل المرحلة الأولى من المسار البصري. تتميز كل دائرة بميزات فريدة وناقلات عصبية متميزة ، تحدد دورها وأهميتها الوظيفية. بالنظر إلى أنواع الخلايا المعقدة داخل هيكلها ، فإن تعقيد الدوائر العصبية في شبكية العين يشكل تحديات للاستكشاف. للتحقيق بشكل أفضل في دوائر الشبكية والحديث المتبادل ، مثل الرابط بين المسارات المخروطية والقضيب ، والتوطين الجزيئي الدقيق (الناقلات العصبية أو الببتيدات العصبية) ، مثل وجود تفاعل مناعي يشبه المادة P في شبكية العين على الفأر ، استخدمنا طريقة المجهر الإلكتروني المناعي قبل التضمين (immuno-EM) لاستكشاف الروابط المشبكية والتنظيم. يمكننا هذا النهج من تحديد اتصالات متشابكة محددة بين الخلايا وتحديد الموقع الجزيئي الدقيق ويمكن أن يلعب دورا توجيهيا في استكشاف وظيفته. توضح هذه المقالة البروتوكول والكواشف المستخدمة والخطوات التفصيلية ، بما في ذلك (1) إعداد تثبيت شبكية العين ، (2) التضمين المسبق للمناعة ، و (3) التثبيت والتضمين اللاحق.
يمثل تعقيد الدوائر العصبية في شبكية العين تحديات للاستكشاف ، مع الأخذ في الاعتبار أنواع الخلايا المتنوعة داخل هيكلها 1,2. تتضمن الخطوة الأولى تحديد الروابط المشبكية بين الخلايا المختلفة وتحديد التوطين الخلوي لناقلات عصبية معينة أو ببتيدات عصبية. مع تقدم البيولوجيا الجزيئية لإدخال بروتينات جديدة ، يصبح التوطين الدقيق في شبكية العين أمرا بالغ الأهمية لفهم وظائفها وتحليل دوائر الشبكية والوصلات المشبكية3،4،5.
نظرا للدقة المحدودة للفحص المجهري الضوئي ، يستخدم المجهر الإلكتروني (EM) بشكل شائع للكشف عن الهياكل تحت الخلوية للخلايا العصبية. يحتوي EM على تصنيفات مختلفة ، مع استخدام المجهر الإلكتروني التقليدي (TEM) لمراقبة الهياكل الفائقة للخلايا6،7،8،9. المجهر الإلكتروني المناعي (immuno-EM) ، الذي يجمع بين الدقة المكانية ل EM مع القدرة على التعرف الكيميائي للأجسام المضادة المرتبطة على وجه التحديد بالبروتينات10 ، يبرز كطريقة مثالية وحصرية للتحقيق في الاتصالات المشبكية وتوطين البروتين تحت الخلوي في شبكية العين11,12.
يمكن تقسيم تقنيات EM المناعية إلى طرق ما قبل التضمين وما بعد التضمين بناء على ترتيب التضمين وحضانة الأجسام المضادة. بالمقارنة مع طريقة ما بعد التضمين ، فإن نهج ما قبل التضمين قادر على تحديد13،14،15 على نطاق واسع وبعيد المدى ، مما يوفر نهجا مثاليا لدراسة عمليات الخلايا مثل المحاور العصبية والتشعبات. بالإضافة إلى ذلك ، توفر هذه التقنية إشارة قوية ومجال رؤية واسع ، مما يجعلها مفيدة للتحقيقات الشاملة للتعبير البروتيني والتوطين الجزيئي في السيتوبلازم. تثبت هذه الطريقة قيمتها بشكل خاص في ضمان الهياكل المحددة كيميائيا والتي تكون مرئية في جميع أنحاء السيتوبلازم أو الخلايا أو شبكية العين بأكملها.
ومع ذلك ، فإن طريقة ما بعد التضمين ، على الرغم من انخفاض الاختراق أو الانتشار مقارنة بطريقة التضمين المسبق ، ليست حساسة16,17. بعبارات بسيطة ، إذا كان الهدف هو استكشاف توطين ناقلات عصبية معينة في السيتوبلازم أو المحطات المشبكية ، فإن التضمين المسبق المناعي EM هو الطريقة المفضلة. على العكس من ذلك ، لتحديد توطين مستقبلات الغشاء ، يوصى باستخدام EM المناعي بعد التضمين.
بالنظر إلى هذه الاعتبارات ، نختار طريقة التضمين المسبق المناعي الكهرومغناطيسي للتعمق في دوائر الشبكية ، بما في ذلك التفاعل بين المسارات المخروطية والقضيب ، والتوطين الجزيئي ، مثل التوزيع والتنظيم المشبكي للمادة P-LIKE IMMUNOACTIVITY (SP-IR) في شبكية الفأر.
وصفت هذه المقالة ثلاث خطوات حاسمة للمراقبة الناجحة للدوائر المشبكية وتوطين البروتين: (1) التثبيت السريع والضعيف ، (2) التضمين المسبق للمناعة ، و (3) التثبيت والتضمين اللاحق.
نقترح أن التثبيت هو الخطوة الأساسية لنهج EM المناعي المقبول الناجح. وبالتالي ، يتم ال?…
The authors have nothing to disclose.
تم دعم هذا العمل جزئيا من خلال منح من البرنامج الوطني للبحث والتطوير الرئيسي في الصين (2022YFA1105503) ، ومختبر الدولة الرئيسي لعلم الأعصاب (SKLN-202103) ، ومؤسسة تشجيانغ للعلوم الطبيعية في الصين (Y21H120019).
1 mL syringe needle | kangdelai | ||
1% OsO4 | Electron Microscopy Science | 19100 | |
2,2,2-Tribromoethanol | Sigma-Aldrich | T48402 | |
8% Glutaraldehyde | Electron Microscopy Science | 16020 | |
8% Paraformaldehyde | Electron Microscopy Science | 157-8 | |
Acetone | Electron Microscopy Science | 10000 | |
Anti-rabbit PKC | Sigma-Aldrich | P4334 | |
Anti-Rabbit SP | Abcam | ab67006 | |
DAB Substrate kit | MXB Biotechnologies | KIT-9701/9702/9703 | |
Elbow scissors | Suzhou66 vision company | 54010 | |
Electron microscope | Phillips | CM120 | |
Epon resin | Electron Microscopy Science | 14910 | |
forcep | Suzhou66 vision company | S101A | |
Millipore filter paper | Merck Millipore | PR05538 | |
Na2HPO4· 12H2O | Sigma | 71650 | A component of phosphate buffer |
NaH2PO4· H2O | Sigma | 71507 | A component of phosphate buffer |
Picric acid | Electron Microscopy Science | 19550 | |
Sodium borohydride (NaBH4) | Sigma | 215511 | |
Tris | Solarbio | 917R071 | |
Ultramicrotome | Leica | ||
Uranyl acetate | Electron Microscopy Science | 22400 | |
VACTASTAIN ABC kit, Peroxidase (Rabbit IgG) | Vector Laboratories | PK-4001 |