אנו מדגימים שיטה המנצלת סריקה מהירה של מיקרוסקופ קונפוקלי כדי לבצע הדמיה חיה של תאי מיקרוגליה בטקטום האופטי המתפתח של דגי זברה, המאפשר ניתוח של הדינמיקה של תאים אלה in vivo.
תאי מיקרוגליה הם תאים דינמיים מאוד ונדידתם והתיישבותם בפרנכימת המוח היא צעד חיוני להתפתחות ותפקוד תקינים של המוח. עוברי דגי זברה המתפתחים חיצונית הם בעלי שקיפות אופטית, אשר יחד עם קווי כתב טרנסגניים מאופיינים היטב המסמנים באופן פלואורסצנטי מיקרוגליה, הופכים את דגי הזברה למודל חולייתי אידיאלי למחקרים כאלה. במאמר זה, אנו מנצלים את התכונות הייחודיות של מודל דג הזברה כדי לדמיין את הדינמיקה של תאי מיקרוגליה in vivo ובתנאים פיזיולוגיים. אנו משתמשים במיקרוסקופ קונפוקלי כדי לתעד חלוף זמן של תאי מיקרוגליה בטקטום האופטי של עובר דג הזברה ולאחר מכן, לחלץ נתוני מעקב באמצעות תוכנת IMARIS 10.0 כדי להשיג את נתיב הנדידה של התאים, מהירות ממוצעת ופיזור בטקטום האופטי בשלבי התפתחות שונים. פרוטוקול זה יכול להיות כלי שימושי להבהרת המשמעות הפיזיולוגית של התנהגות תאי מיקרוגליה בהקשרים שונים, ולתרום לאפיון עמוק יותר של תאים תנועתיים אלה.
כמקרופאגים שוכנים במערכת העצבים המרכזית (CNS), תאי מיקרוגליה מייצגים אוכלוסייה לא-עצבית מובהקת המהווה עד 15% מכלל תאי הגליה במוח הבוגר. חקר הביולוגיה של תאי מיקרוגליה זוכה לתשומת לב הולכת וגוברת בשנים האחרונות בשל חשיבותם המבוססת בהתפתחות, פיזיולוגיה ומחלות1. בתנאים פיזיולוגיים, תאי מיקרוגליאה הם דינמיים מאוד, וסוקרים ללא הרף את פרנכימת המוח 2,3. התנהגות זו מאפשרת למיקרוגליה ליישב את המוח ולמלא תפקידים מרכזיים בהתפתחותו כגון עיצוב מעגלים עצביים4, גיזום סינפטי5 וכלי דם6. יתר על כן, הטבע הדינמי הטבוע הזה מאפשר למיקרוגליה לנטר כל הזמן את מערכת העצבים המרכזית עבור סימנים של זיהום, פציעה, או כל סטייה מהומאוסטזיס7. כדי לנתח את הדינמיקה התאית המורכבת הזו, הדמיה חיה של תאי מיקרוגליה על פני מרחב וזמן היא הכרחית. למרבה המזל, השקיפות האופטית של עוברי דגי זברה המתפתחים חיצונית, יחד עם זמינותם של קווי כתב טרנסגניים מאופיינים היטב המסמנים באופן ניאון מיקרוגליה, מציבים את דגי הזברה כמודל חולייתי אידיאלי לחקירות כאלה. הדמיה חיה בעוברים של דגי זברה מציעה גישה לא פולשנית שאינה דורשת ניתוח או מניפולציה נרחבת ברקמות, וממזערת הפרעות פוטנציאליות למצב מערכת העצבים המרכזית. זהו שיקול קריטי בעת חקר תאי מיקרוגליה, שכן הם רגישים מאוד אפילו לשינויים עדינים בסביבה החוץ תאית8.
כאן, אנו מספקים קו מנחה למעקב מוצלח אחר תנועות תאי מיקרוגליאה תלת-ממדיים בעובר דג הזברה, מה שמאפשר מבט חסר תקדים על התנהגות תאי מיקרוגליה בתוך הארכיטקטורה השלמה של פרנכימת המוח המתפתחת (ראו איור 1 לסקירה גרפית של הפרוטוקול). פרוטוקול שלב אחר שלב זה מפרט כיצד להגדיר ולצלם תאי מיקרוגליה של דגי זברה בשלבי התפתחות שונים וכיצד לחלץ נתונים ברזולוציה גבוהה על תנועתיות תאי מיקרוגליה כדי לספק תובנות חשובות לגבי דפוסי הנדידה שלהם ותגובותיהם לרמזים סביבתיים. אנו גם מראים שניתן להתאים את הפרוטוקול הזה לביצוע הדמיה חיה מרובת צבעים, ובכך להרחיב את היישום שלו לחקר תאי מיקרוגליה בשילוב עם קווים טרנסגניים המסמנים תאים שכנים, כולל תאי עצב3, אוליגודנדרוציטים9 ותאי אנדותל10 (כפי שמוצג באיור 2). על ידי הוספה לארגז הכלים המאפשר להתבונן ולאפיין ישירות את הדינמיקה של התנהגות תאי מיקרוגליה בזמן אמת ובסביבתם הטבעית, פרוטוקול זה יתרום ככל הנראה להבהרה טובה יותר של פונקציונליות תאי מיקרוגליה במהלך ההתפתחות המוקדמת, הן בפיזיולוגיה והן במחלות.
הפרוטוקול הנוכחי מאפשר הדמיה in vivo של דינמיקת מיקרוגליה בעובר חולייתי והדמיה של נתוני התנועתיות הנרכשים. קולוניזציה של תאי מיקרוגליה במוח המתפתח מתרחשת בשלב מוקדם מאוד במהלך האמבריוגנזה וקודמת לאירועים קריטיים כגון שיאים של נוירוגנזה, אסטרוגליוגנזה, אוליגודנדרוגנזה ותהליכים תאיים רבים אחרים17. לכן אין זה מפתיע שתאי מיקרוגליה ממלאים תפקידים חשובים בעיצוב היבטים ספציפיים של התפתחות המוח18, למשל, באמצעות ויסות התמיינות עצבית, נדידה והישרדות 19,20,21, כמו גם גיזום סינפטי5 ומיאלינציה 22,23,24.
התרומה של מיקרוגליה לא מתפקדת לפתוגנזה ו / או התקדמות של הפרעות נוירו-התפתחותיות מוכרת יותר ויותר25. ואכן, נוכחותם המוקדמת של תאי מיקרוגליה במוח המתהווה חושפת תאים אלה למצבים פיזיולוגיים שונים26 ולשינויים סביבתיים. זה יכול להיות בעל השפעה משמעותית בהתחשב בכך מיקרוגליה הם תאים מאריכי חיים הן מכרסמים ובני אדם, נשמרים במהלך תוחלת החיים באמצעות התחדשות עצמית של אבות מקומיים 27,28,29. אנו מאמינים שפרוטוקול זה יכול לשמש ככלי רב עוצמה לאפיון טוב יותר של התנהגות תאי מיקרוגליה במצבים פיזיולוגיים מובחנים אלה, כאשר הם מתפתחים, מתבגרים ומבססים את הרשת שלהם במהלך השלבים הרצופים של מורפוגנזה מוחית.
באמצעות ההתקנה המתוארת כאן, צילמנו ורכשנו בהצלחה נתונים על זחלי דגי זברה בני 6 dpf. הרחבת הניתוח לשלבים התפתחותיים מאוחרים יותר צפויה להצליח, אך תדרוש התאמת מערך ההדמיה כך שיילקח בחשבון גודל הדגימה המוגדל, במיוחד לאורך ציר z. בניסיון זה, אנו מציעים להתמקד בשמירה על יחס אות לרעש נמוך וזמן סריקה מהיר, מכיוון שהם פרמטרים מרכזיים לניתוח מוצלח.
אנו מציעים זמן הדמיה מינימלי של שעה אחת כדי לאפשר מעקב אחר מיקרוגליה; חלון ההדמיה הארוך ביותר שנבדק עם פרוטוקול זה הוא 8 שעות. יתר על כן, חשוב לניתוח המעקב לשמור על מרווח הזמן בין מסגרות קצר ככל האפשר, באופן אידיאלי בין 30 שניות ל -60 שניות. זה יאפשר נתוני מעקב מדויקים ומפורטים יותר בניתוחים במורד הזרם. לכן, במיוחד אם מזהים יותר מפלואואורופור אחד, חיוני להימנע מחפיפה ספקטרלית ולהבטיח הפרדה מספקת בין שני ספקטרום הפליטה הפלואורופורים כדי לאפשר רכישה בו זמנית, ללא דימום אות.
פרוטוקולים אחרים לרישום באיכות גבוהה של מוח דג הזברה זמינים30, אך זהו הראשון המראה כיצד לעקוב בהצלחה אחר כל תנועת תאי המיקרוגליה במהלך ההתפתחות העוברית לאורך תקופה ממושכת. למרות שזרימת העבודה המוצגת כאן התמקדה במעקב אחר מיקרוגליה בהקשר פיזיולוגי, ניתן ליישם אותה בקלות על ניתוח מיקרוגליה בפתולוגיה. ואכן, מספר מודלים של הפרעות נוירו-התפתחותיות, כגון אוטיזם31, אפילפסיה32 וסכיזופרניה33, אך גם ניוון עצבי34 וסרטן35, נקבעו בדגי זברה המספקים הזדמנויות ייחודיות לקביעת תגובת מיקרוגליה והתנהגות במצבי מחלה.
יש לציין כי פרוטוקול מעקב זה הוא רב-תכליתי ביותר ויכול גם להיות חיוני לשפוך אור על דפוסי הנדידה של סוגי תאים שונים באזורים אנטומיים מגוונים של עובר דג הזברה, ובכך לפתוח אפיקים ליישומים נוספים, מעבר להיקף חקירת המיקרוגליה המתואר במאמר זה. יתר על כן, על ידי רתימת היכולת לשלב קווים טרנסגניים פלואורסצנטיים מרובים, אנו מקבלים את היכולת להבחין בקשר המרחבי בין מיקרוגליה לבין סוגי תאים אחרים של מיקרו-סביבה במוח, עם פוטנציאל לדמיין אינטראקציות תאיות ושיחות צולבות לאורך הקלטות בהילוך מהיר, בדרך לא פולשנית. זה יכול להיות חיוני בחשיפת המשמעות הפיזיולוגית של התנהגות מיקרוגליה ולתרום לאפיון עמוק יותר של תאים תנועתיים מאוד אלה.
The authors have nothing to disclose.
המחברים רוצים להביע את תודתם הכנה לפרופסור ניקולס ביינס על מתן גישה נדיבה למיקרוסקופ הקונפוקלי החיוני למחקר זה. עבודה זו מומנה בחלקה על ידי הקרנות למחקר מדעי (FNRS) תחת מספרי מענקים F451218F ו- UG03019F, הקרן לחקר האלצהיימר (SAO-FRA) (ל- V.W.), A.M. נתמכת על ידי מלגת מחקר מה- FNRS. איור 1 נוצר ב-biorender.com.
1 L Breeding tanks | Tecniplast | ZB10BTE | |
1-phenyl-2-thiourea (PTU) | Sigma-Aldrich | P7629 | Diluted to 0.2 mM in E3 to prevent embryo pigmentation |
Bottom glass imaging dish | FluoroDish | FD3510-100 | |
Disposable Graduated transfer pipette | avantor | 16001-188 | |
Dry block heater | Novolab | Grant QBD4 | To keep low melting agarose at 37 °C |
Ethyl 3-aminobenzoate methanesulfonate (Tricaine) | Sigma-Aldrich | E10521-50G | |
Imaris 10.0 | Oxford Instruments | analysis software | |
Imaris File Converter | Oxford Instruments | https://imaris.oxinst.com/big-data | |
Laser-scanning confocal microscope | Nikon | Eclipse Ti2-E | |
Methylene blue | Sigma-Aldrich | M9140-25G | |
microloader tips | Eppendorf | 5242956003 | |
NuSieve GTG Agarose | Lonza | 50081 | |
Petri dishes (90 mm) | avantor | 391-0559 | |
Pronase | Sigma-Aldrich | 11459643001 | |
Stainless Steel Forceps Dumont No. 5 | FineScienceTools | 11254-20 | |
Stereo microscope | Leica | Leica M80 | To mount the embryos |
teasing needle | avantor | 76549-024 |