Summary

القياس الكمي للعمود الفقري التغصني باستخدام برنامج إعادة بناء الخلايا العصبية ثلاثي الأبعاد التلقائي

Published: September 27, 2024
doi:

Summary

العمود الفقري التغصني عبارة عن مقصورات ما بعد المشبكي لمعظم المشابك المثيرة. تحدث تغيرات في مورفولوجيا العمود الفقري التغصني أثناء النمو العصبي والشيخوخة والتعلم والعديد من الاضطرابات العصبية والنفسية ، مما يؤكد أهمية تحليل العمود الفقري التغصني الموثوق. يصف هذا البروتوكول القياس الكمي لمورفولوجيا العمود الفقري التغصني بدقة وقابلية للتكرار باستخدام برنامج إعادة بناء الخلايا العصبية ثلاثي الأبعاد التلقائي.

Abstract

تسمح الاتصالات المتشابكة بتبادل ومعالجة المعلومات بين الخلايا العصبية. غالبا ما يتم تشكيل موقع ما بعد المشبكي للمشابك العصبية المثيرة على العمود الفقري التغصني. العمود الفقري التغصني هي هياكل ذات أهمية كبيرة في الأبحاث التي تتمحور حول اللدونة المشبكية ، والنمو العصبي ، والاضطرابات العصبية والنفسية. تخضع الأشواك المتغصنة لتعديلات هيكلية خلال عمرها ، مع خصائص مثل إجمالي عدد العمود الفقري ، وحجم العمود الفقري التغصني ، وتغيير النوع الفرعي المحدد شكليا استجابة لعمليات مختلفة. يعتمد تحديد الآليات الجزيئية التي تنظم هذه التغيرات الهيكلية للأشواك المتغصنة على القياس المورفولوجي. هذا يفرض تحليلا دقيقا وقابلا للتكرار للعمود الفقري الشجيري لتقديم أدلة تجريبية. تحدد الدراسة الحالية بروتوكولا مفصلا لقياس وتصنيف العمود الفقري التغصني باستخدام Neurolucida 360 (برنامج إعادة بناء الخلايا العصبية ثلاثي الأبعاد التلقائي). يسمح هذا البروتوكول بتحديد خصائص العمود الفقري التغصني الرئيسية مثل الكثافة الكلية للعمود الفقري وحجم رأس العمود الفقري والتصنيف إلى أنواع فرعية للعمود الفقري وبالتالي تمكين التحليل الفعال للأنماط الظاهرية الهيكلية للعمود الفقري التغصني.

Introduction

الأشواك المتغصنة هي نتوءات من التشعبات غالبا ما تتكون من موقع ما بعد المشبكي للمشابك العصبية الجلوتاماتية 1,2. تعتبر الأشواك المتغصنة ذات أهمية خاصة في مجال اللدونة المشبكية. غالبا ما يتم تغيير العمود الفقري عندما تتغير القوة المشبكية ، وتصبح أكبر وأقوى في التقوية المشبكية طويلة المدى أو أصغر وأضعف في الاكتئاب المشبكي طويل المدى3،4،5،6،7. ما وراء اللدونة المشبكية ، يتغير ملف تعريف العمود الفقري التغصني طوال العمر. في التطور المبكر ، هناك فترة من تكوين العمود الفقري الشجيري ونموه ، يليه تقليم العمود الفقري التغصني حتى الوصول إلى حالة مستقرة8،9،10. في شيخوخة الدماغ ، يصاحب فقدان العمود الفقري انكماش الدماغ والتدهور المعرفي11. بالإضافة إلى ذلك ، تتميز العديد من الاضطرابات العصبية والتنكسية العصبية والنفسية بأشواك شجيرية شاذة. تحتوي مناطق الدماغ المتعددة لدى الأفراد المصابين بالفصام على عدد أقل من الأشواك المتغصنة ، ومن المحتمل أن تكون ناتجة عن التقليم المشبكيالمتشابكي المتغير 12. تتميز اضطرابات طيف التوحد أيضا بأمراض العمود الفقري التغصني13. فقدان العمود الفقري التغصني هو السمة المميزة لكل من مرض الزهايمر ومرض باركنسون14,15. بالنظر إلى المجموعة الواسعة من الموضوعات البحثية التي تشمل التحقيقات في خصائص العمود الفقري التغصني ، فإن تقنيات القياس الكمي الدقيق للعمود الفقري لها أهمية قصوى.

يعد التلوين ، أي طريقة جولجي ، أو تسمية الخلايا العصبية عن طريق ملء الصبغة أو التعبير عن البروتينات الفلورية طرقا شائعة لتصور العمود الفقري التغصني16،17،18. بمجرد تصورها ، يمكن تحليل العمود الفقري مع مجموعة متنوعة من عملاء البرامج المجانية والمتاحة تجاريا. يعد الناتج المطلوب من التحليل عاملا مهما في تحديد البرنامج الأكثر استخداما. فيجي هي خيار برمجي قابل للتطبيق للأسئلة التي تتمحور حول كثافة العمود الفقري التغصني. ومع ذلك ، تعتمد هذه التقنية إلى حد كبير على العد اليدوي الذي يستغرق وقتا طويلا والذي يمكن أن يؤدي إلى إمكانية التحيز. تسمح المكونات الإضافية الجديدة مثل SpineJ بالقياس الكمي التلقائي ، بالإضافة إلى السماح بتحليل أكثر دقة لرقبةالعمود الفقري 19. عيب هذه الأساليب هو فقدان تحليل ثلاثي الأبعاد لتحديد حجم العمود الفقري ، حيث يقتصر SpineJ على مكدسات الصور ثنائية الأبعاد. بالإضافة إلى ذلك ، يصبح الحصول على معلومات النوع الفرعي للعمود الفقري أمرا صعبا عبر هذه العمليات. الأنواع الفرعية الأربعة السائدة في العمود الفقري ، رقيقة ، فطر ، قصير ، وفيلوبوديا ، كلها تشير إلى وظائف فردية وتصنف إلى حد كبير عبر التشكل20. تتميز الأشواك الرفيعة برقبة ممدودة ورأس محدد21. أشواك الفطر لها رأس عمود فقري أكبر بكثيروواضح 22. العمود الفقري القصير قصير وله تباين ضئيل بين الرأس والرقبة23. Filopodia هي أشواك غير ناضجة ذات رقبة طويلة ورفيعة ولا يمكن ملاحظتها بشكل واضح24. بينما يوفر التصنيف معلومات قيمة ، توجد الأشواك على سلسلة متصلة من الأبعاد. يعتمد التصنيف إلى فئات على نطاقات القياسات المورفولوجية25,26. إن قياس العمود الفقري يدويا للتصنيف يضاعف العبء اللوجستي للباحثين في هذا النهج.

تعد خيارات البرامج الأخرى التي تركز بشكل خاص على تحليل العمود الفقري التغصني ثلاثي الأبعاد أكثر ملاءمة للتحقيقات في حجم العمود الفقري وخصائص النوع الفرعي27،28،29،30،31. على الرغم من الصعوبة التي يمثلها التحليل ثلاثي الأبعاد ، مثل ضعف دقة المستوى z والتشويه ، فإن خيارات البرامج هذه تسمح بإعادة بناء ثلاثية الأبعاد موثوقة للزوائد الشجيرية والعمود الفقري التغصني بطريقة شبه آلية موجهة من المستخدم. يعد التصنيف التلقائي للأشواك المحددة في أنواعها الفرعية أيضا ميزة موجودة في بعض حزم برامج تحليل العمود الفقري هذه. هذا يمكن أن يخفف من المخاوف من عبء العمل المحتمل والتحيز التجريبي. Neurolucida 360 هو أحد البرامج المتاحة تجاريا مما يسمح بتحديد وتصنيف العمود الفقري الشجيري ثلاثي الأبعاد الموثوق به والقابل للتكرار32. هنا ، نقدم بروتوكولا شاملا لإعداد الأنسجة الثابتة بشكل فعال ، والحصول على الصور ، وفي النهاية تحديد وتصنيف العمود الفقري التغصني باستخدام هذا البرنامج.

Protocol

اتبعت جميع الإجراءات الحيوانية إرشادات المعاهد الوطنية الأمريكية للصحة باستخدام في الأبحاث الداخلية وتمت الموافقة عليها من قبل لجنة رعاية واستخدام التابعة للمعهد الوطني للصحة العقلية. 1. إعداد شرائح الحصين الثابتة تخدير الفئران بحقن الكي…

Representative Results

يبدأ الاستخدام الفعال لطريقة التحليل هذه باختيار الأجزاء المتغصنة للتتبع. كما هو موضح في الشكل 1، لا تقع الزوائد الشجيرية المثالية للتتبع على مقربة من الزوائد الشجيرية الأخرى. يمكن أن تؤدي الزوائد الشجيرية التي تعمل على التوازي إلى تحديد الأشواك بشكل غي…

Discussion

يفصل هذا البروتوكول الخطوات المحددة لإعداد العينات والتصوير وعملية تقدير وتصنيف العمود الفقري التغصني باستخدام برنامج إعادة البناء ثلاثي الأبعاد. هذا البرنامج هو أداة قوية قادرة على إنتاج بيانات هيكلية قوية تساهم في مجموعة متنوعة من التحقيقات. طوال العملية ، هناك بعض …

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

نود أن نعرب عن تقديرنا لكارولين سميث وسارة ويليامز أفرام وتيد أوسدين و NIMH SNIR للمساعدة الفنية. نود أيضا أن نعرب عن تقديرنا لمجموعة دراسة أبحاث الطب الحيوي بجامعة كولجيت. يتم دعم هذا العمل من قبل برنامج NIMH الداخلي (1ZIAMH002881 إلى Z.L.).

Materials

518F Immersion Oil Zeiss 444960-0000-000
Cryostat Leica CM3050S For slice preparation
Fine Forceps FST 11150-10
Hemostat Forceps FST 13020-12
Large Surgical Scissors FST 14002-16
LSM 880 Confocal Microscope Zeiss LSM 880
Microscope Cover Glass Fisherbrand 12-541-035
Mini-Peristaltic Pump II Harvard Apparatus 70-2027 For perfusions
Neurolucida 360 MBF Bioscience v2022.1.1 Spine Analysis Software
Neurolucida Explorer MBF Bioscience v2022.1.1 Spine Analysis Software
OCT Compound Sakura Finetek 4583 For cryostat sectioning
Paraformaldehyde (37%) Fisherbrand F79-1
Plan-Apochromat 63x/1.40 Oil DIC Zeiss 440762-9904-000
Scalpel Blade FST 10022-00
Small Surgical Scissors FST 14060-09
Spatula  FST 10091-12
Sucrose FIsherbrand S5-500
Superfrost Plus Microslides Diagger ES4951+
Vectashield HardSet Mounting Medium Vector Laboratories H-1400-10

References

  1. Gray, E. G. Electron microscopy of synaptic contacts on dendrite spines of the cerebral cortex. Nature. 183, 1592-1593 (1959).
  2. Ramón Y Cajal, S. Sobre la fibras nerviosas de la capa molecular del cerebelo. Rev Trim Histol Norm. 1, 33-49 (1888).
  3. Desmond, N. L., Levy, W. Changes in the numerical density of synaptic contacts with long-term potentiation in the hippocampal dendate gyrus. J Comp Neurol. 253, 466-475 (1986).
  4. Engert, F., Bonhoeffer, T. Dendritic spine chances associated with hippocampal long-term synaptic plasticity. Nature. 399, 66-70 (1999).
  5. Yang, Y., Wang, X. B., Frerking, M., Zhou, Q. Spine expansion and stabilization associated with long-term potentiation. J Neurosci. 28 (22), 5740-5751 (2008).
  6. Oh, W. C., Parajuli, L. K., Zito, K. Heterosynaptic structural plasticity on local dendritic segments of hippocampal ca1 neurons. Cell Rep. 10 (2), 162-169 (2015).
  7. Shinoda, Y., Tanaka, T., Tominaga-Yoshino, K., Ogura, A. Persistent synapse loss induced by repetitive ltd in developing rat hippocampal neurons. PLoS One. 5 (4), e10390 (2010).
  8. Markus, E. J., Petit, T. L. Neocortical synaptogenesis, aging, and behavior lifespan development in the motor-sensory system of the rat. Exp Neurol. 96 (2), 262-278 (1987).
  9. Duan, H., Wearne, S. L., Rocher, A. B., Macedo, A., Morrison, J. H., Hof, P. R. Age-related dendritic and spine changes in corticocortically projecting neurons in macaque monkeys. Cereb Cortex. 13 (9), 950-961 (2003).
  10. Chen, C. C., Lu, J., Zuo, Y. Spatiotemporal dynamics of dendritic spines in the living brain. Front Neuroanat. 8, 28 (2014).
  11. Dickstein, D. L., Weaver, C. M., Luebke, J. I., Hof, P. R. Dendritic spine changes associated with normal aging. Neuroscience. 251, 21-32 (2013).
  12. Glausier, J. R., Lewis, D. A. Dendritic spine pathology in schizophrenia. Neuroscience. 251, 90-107 (2013).
  13. Phillips, M., Pozzo-Miller, L. Dendritic spine dysgenesis in autism related disorders. Neurosci Lett. 601, 30-40 (2015).
  14. Dorostkar, M. M., Zou, C., Blazquez-Llorca, L., Herms, J. Analyzing dendritic spine pathology in alzheimer’s disease: Problems and opportunities. Acta Neuropathol. 130 (1), 1-19 (2015).
  15. Villalba, R. M., Smith, Y. Loss and remodeling of striatal dendritic spines in parkinson’s disease: From homeostasis to maladaptive plasticity. J Neural Transm (Vienna). 125 (3), 431-447 (2018).
  16. Cheng, C., Trzcinski, O., Doering, L. C. Fluorescent labeling of dendritic spines in cell cultures with the carbocyanine dye "dii&#34. Front Neuroanat. 8, 30 (2014).
  17. Feng, G., et al. Imaging neuronal subsets in transgenic mice expressing multiple spectral variants of gfp. Neuron. 28 (1), 41-51 (2000).
  18. Baloyannis, S. J. Staining neurons with golgi techniques in degenerative diseases of the brain. Neural Regen Res. 10 (5), 693-695 (2015).
  19. Levet, F., Tonnesen, J., Nagerl, U. V., Sibarita, J. B. SpineJ: A software tool for quantitative analysis of nanoscale spine morphology. Methods. 174, 49-55 (2020).
  20. Peters, A., Kaiserman-Abramof, I. R. The small pyramidal neuron of the rat cerebral cortex. The perikaryon, dendrites and spines. Am J Anat. 127 (4), 321-356 (1970).
  21. Pfeiffer, T., et al. Chronic 2p-sted imaging reveals high turnover of dendritic spines in the hippocampus in vivo. Elife. 7, e34700 (2018).
  22. Harris, K. M. Structure, development, and plasticity of dendritic spines. Curr Opin Neurobiol. 9 (3), 343-348 (1999).
  23. Hering, H., Sheng, M. Dendritic spines: Structure, dynamics, and regulation. Nat Rev Neurosci. 2 (12), 880-888 (2001).
  24. Jontes, J. D., Smith, S. J. Filopodia, spines, and the generation of synaptic diversity. Neuron. 27 (1), 11-14 (2000).
  25. Pchitskaya, E., Bezprozvanny, I. Dendritic spines shape analysis-classification or clusterization? Perspective. Front Synaptic Neurosci. 12, 31 (2020).
  26. Berry, K. P., Nedivi, E. Spine dynamics: Are they all the same. Neuron. 96 (1), 43-55 (2017).
  27. Rodriguez, A., Ehlenberger, D. B., Dickstein, D. L., Hof, P. R., Wearne, S. L. Automated three-dimensional detection and shape classification of dendritic spines from fluorescence microscopy images. PLoS One. 3 (4), e1997 (2008).
  28. Swanger, S. A., Yao, X., Gross, C., Bassell, G. J. Automated 4D analysis of dendritic spine morphology: Applications to stimulus-induced spine remodeling and pharmacological rescue in disease model. Mol Brain. 4, 38 (2011).
  29. Basu, S., et al. Quantitative 3-D morphometric analysis of individual dendritic spines. Sci Rep. 8 (1), 3545 (2018).
  30. Ekaterina, P., Peter, V., Smirnova, D., Vyacheslav, C., Ilya, B. Spinetool is an open-source software for analysis of morphology of dendritic spines. Sci Rep. 13 (1), 10561 (2023).
  31. Li, B. Z., Sumera, A., Booker, S. A., Mccullagh, E. A. Current best practices for analysis of dendritic spine morphology and number in neurodevelopmental disorder research. ACS Chem Neurosci. 14 (9), 1561-1572 (2023).
  32. Dickstein, D. L., et al. Automatic dendritic spine quantification from confocal data with Neurolucida 360. Curr Protoc Neurosci. 77, 1-21 (2016).
  33. Gage, G. J., Kipke, D. R., Shain, W. Whole animal perfusion fixation for rodents. J Vis Exp. (65), e3564 (2012).
  34. Parajuli, L. K., Koike, M. Three-dimensional structure of dendritic spines revealed by volume electron microscopy techniques. Front Neuroanat. 15, 627368 (2021).
  35. Ferreira, J. S., et al. Distance-dependent regulation of NMDAR nanoscale organization along hippocampal neuron dendrites. Proc Natl Acad Sci U S A. 117 (39), 24526-24533 (2020).
  36. Megias, M., Emri, Z. s., Freund, T. F., Gulyas, A. I. Total number and distribution of inhibitory and excitatory synapses on hippocampal ca1 pyramidal cells. Neuroscience. 102 (3), 527-540 (2001).
  37. Katz, Y., et al. Synapse distribution suggests a two-stage model of dendritic integration in ca1 pyramidal neurons. Neuron. 63 (2), 171-177 (2009).
  38. Bourne, J., Harris, K. M. Do thin spines learn to be mushroom spines that remember. Curr Opin Neurobiol. 17 (3), 381-386 (2007).
  39. Runge, K., Cardoso, C., De Chevigny, A. Dendritic spine plasticity: Function and mechanisms. Front Synaptic Neurosci. 12, 36 (2020).
  40. Tonnesen, J., Katona, G., Rozsa, B., Nagerl, U. V. Spine neck plasticity regulates compartmentalization of synapses. Nat Neurosci. 17 (5), 678-685 (2014).
  41. Mattila, P. K., Lappalainen, P. Filopodia: Molecular architecture and cellular functions. Nat Rev Mol Cell Biol. 9 (6), 446-454 (2008).
  42. Grutzendler, J., Kasthuri, N., Gan, W. Long-term dendritic spine stability in the adult cortex. Nature. 420 (6917), 812-816 (2002).

Play Video

Cite This Article
Keary III, K. M., Sojka, E., Gonzalez, M., Li, Z. Dendritic Spine Quantification Using an Automatic Three-Dimensional Neuron Reconstruction Software. J. Vis. Exp. (211), e66493, doi:10.3791/66493 (2024).

View Video