Mutlak miktar tayini RNA dizilimi (AQRNA-seq), biyolojik karışımlardaki tüm küçük RNA’ların manzarasını ölçmek için geliştirilmiş bir teknolojidir. Burada, açlığın neden olduğu uyku hali sırasında Mycobacterium bovis BCG’deki transfer RNA (tRNA) havuzundaki değişiklikleri ölçen AQRNA-seq’nin hem kütüphane hazırlama hem de veri işleme adımları gösterilmektedir.
AQRNA-seq, biyolojik bir numunedeki sıralama okuma sayıları ile küçük RNA kopya sayıları arasında doğrudan doğrusal bir ilişki sağlar, böylece küçük RNA havuzunun doğru bir şekilde nicelleştirilmesini sağlar. Burada açıklanan AQRNA-seq kütüphanesi hazırlama prosedürü, özel olarak tasarlanmış dizileme bağlayıcılarının kullanımını ve ters transkripsiyon sürecini bloke eden metilasyon RNA modifikasyonlarını azaltmak için bir adımı içerir, bu da tam uzunlukta cDNA veriminin artmasıyla sonuçlanır. Ek olarak, eşlik eden biyoinformatik boru hattının ayrıntılı bir uygulaması sunulmaktadır. AQRNA-seq’in bu gösterimi, 20 günlük bir besin yoksunluğu ve 6 günlük resüsitasyon süreci boyunca seçilen 5 günde hasat edilen Mycobacterium bovis BCG’deki 45 tRNA’nın kantitatif bir analizi yoluyla gerçekleştirildi. AQRNA-seq’in verimliliğini ve titizliğini artırmaya yönelik devam eden çabalar da burada tartışılacaktır. Bu, PCR amplifikasyonundan sonra primer dimer sorunlarını azaltmak için jel saflaştırmasını ortadan kaldırmaya ve daha doğru okuma eşlemesi sağlamak için tam uzunlukta okumaların oranını artırmaya yönelik yöntemlerin araştırılmasını içerir. AQRNA-seq’te gelecekteki iyileştirmeler, çeşitli organizmalardan alınan hücre ve doku örneklerindeki tüm küçük RNA türlerinin miktarını belirlemek için bu teknolojinin otomasyonunu ve yüksek verimli uygulamasını kolaylaştırmaya odaklanacaktır.
Büyük paralel dizileme olarak da bilinen yeni nesil dizileme (NGS), DNA parçalanmasını, adaptör oligonükleotidlerin bağlanmasını, polimeraz zincir reaksiyonu (PCR) tabanlı amplifikasyonu, DNA’nın dizilenmesini ve parça dizilerinin bir genomda yeniden birleştirilmesini içeren bir DNA dizileme teknolojisidir. NGS’nin RNA dizisine (RNA-dizilimi) adaptasyonu, RNA transkriptlerini ve varyantlarını tanımlamak ve ölçmek için güçlü bir yaklaşımdır1. RNA kütüphanesi hazırlama iş akışlarındaki ve biyoinformatik analiz boru hatlarındaki yenilikçi gelişmeler, laboratuvar cihazlarındaki ilerlemelerle birleştiğinde, RNA-seq uygulamalarının repertuarını genişletti ve ekzom dizilemenin ötesine geçerek, kodlamayan RNA profillemesi2, tek hücre analizi3, uzamsal transkriptomik 4,5, alternatif birleştirme analizi6 gibi gelişmiş fonksiyonel omiklere ilerledi, diğerleri arasında. Bu gelişmiş RNA-seq yöntemleri, normal ve hastalıklı hücre ve dokudaki transkriptomun kantitatif analizi yoluyla karmaşık RNA fonksiyonlarını ortaya çıkarır.
RNA dizilimindeki bu ilerlemelere rağmen, birkaç temel teknik özellik yöntemin nicel gücünü sınırlamaktadır. Çoğu RNA-seq yöntemi, deneysel değişkenler (yani biyolojik numuneler ve/veya fizyolojik durumlar) arasındaki RNA seviyelerindeki değişikliklerin kesin ve doğru bir şekilde ölçülmesine izin verirken, bir numune içindeki RNA moleküllerinin seviyelerinin nicel karşılaştırmalarını sağlayamazlar. Örneğin, çoğu RNA-seq yöntemi, eksprese edilen tRNA’ların hücresel bir havuzundaki tek tek tRNA izoseptör moleküllerinin nispi kopya sayısını doğru bir şekilde ölçemez. Eşlik eden yayın7’de vurgulandığı gibi, RNA-seq ile ilgili bu sınırlama, RNA yapısının çeşitli özelliklerinden ve kütüphane hazırlığının biyokimyasından kaynaklanmaktadır. Örneğin, 3′ ve 5′ uçlu dizileme bağlayıcılarını RNA moleküllerine bağlamak için kullanılan ligasyon enzimlerinin aktivitesi, RNA’nın terminal nükleotidlerinin ve dizileme bağlayıcılarının kimliğinden güçlü bir şekilde etkilenir. Bu, bağlayıcı ligasyonlarının verimliliğinde büyük farklılıklara ve sıralama okumalarında derin artefaktal artışlara yol açar 8,9,10.
İkinci bir sınırlama seti, RNA moleküllerinin doğal yapısal özelliklerinden kaynaklanmaktadır. Spesifik olarak, RNA ikincil yapı oluşumu ve epitranskriptomun düzinelerce transkripsiyon sonrası RNA modifikasyonundaki dinamik değişiklikler, ters transkripsiyon sırasında polimeraz düşmesine veya mutasyonuna neden olabilir. Bu hatalar, eksik veya kesilmiş cDNA sentezi veya değişmiş RNA dizisi ile sonuçlanır. Bu fenomenlerin her ikisi de ikincil yapıları veya bazı modifikasyonları haritalamak için kullanılabilse de, sonraki kütüphane hazırlama adımları kesilmiş cDNA’ları yakalayamazsa veya veri işleme, bir referans veri kümesiyle eşleşmeyen mutasyona uğramış dizileri atarsa, RNA-seq’in nicel doğruluğunu düşürür11,12. Ayrıca, RNA transkriptlerinin muazzam kimyasal, uzunluk ve yapısal çeşitliliğinin yanı sıra uzun RNA’ları düzgün bir şekilde parçalamak için araçların olmaması, çoğu RNA-seq yönteminin tüm RNA türlerineuygulanabilirliğini azaltır 13.
AQRNA-seq (mutlak miktar tayini RNA dizileme) yöntemi, kantitatif doğruluğu sınırlayan bu teknik ve biyolojik kısıtlamaların birçoğunu ortadan kaldırmak için geliştirilmiştir7. RNA dizileme kütüphanesi hazırlığı sırasında yakalama, ligasyon ve amplifikasyonda diziye bağlı önyargıları en aza indiren AQRNA-seq, diğer yöntemlere kıyasla üstün doğrusallık elde eder ve 963 miRNA’dan oluşan bir referans kütüphanesinin %75’ini 2 kat doğrulukla doğru bir şekilde ölçer. Dizileme okuma sayısı ve RNA bolluğunun bu doğrusal korelasyonu, RNA oligonükleotid standartlarının değişken uzunluklu bir havuzunun analizinde ve kuzey blotlama gibi ortogonal yöntemlere atıfta bulunulduğunda da gözlenir. Dizileme okuma sayısı ve RNA bolluğu arasında doğrusallık oluşturmak, AQRNA-seq’in bir numune içindeki tüm RNA türlerinin doğru ve mutlak miktar tayinini elde etmesini sağlar.
Burada, AQRNA-seq kitaplığı hazırlama iş akışı ve beraberindeki aşağı akış veri analizi işlem hattı için protokolün bir açıklaması yer almaktadır. Yöntem, Mycobacterium bovis bacilli de Calmette et Guérin (BCG) tüberküloz modelinde açlığa bağlı uyku hali ve ardından resüsitasyon sırasında tRNA bolluğunun dinamiklerini aydınlatmak için uygulandı. Dizileme verilerinin keşifsel görselleştirilmesi için sonuçlar, çeşitli fenotiplerle ilişkili tRNA bolluğundaki fark edilebilir kalıpları ortaya çıkaran müteakip kümeleme ve diferansiyel ifade analizleriyle birlikte sunuldu.
AQRNA-seq kütüphanesi hazırlama iş akışı, bir numune içindeki RNA’ların yakalanmasını en üst düzeye çıkarmak ve ters transkripsiyon 7 sırasında polimeraz düşüşünü en aza indirmek içintasarlanmıştır. İki aşamalı bir bağlayıcı ligasyonu yoluyla, yeni DNA oligoları (Bağlayıcı 1 ve Bağlayıcı 2), numune içindeki RNA’yı tam olarak tamamlamak için fazla miktarda bağlanır. Fazla bağlayıcılar, tek sarmallı DNA’lara özgü 5′ ila 3′ eksonükleaz olan RecJf il…
The authors have nothing to disclose.
Bu çalışmanın yazarları, AQRNA-seq teknolojisinianlatan orijinal makalenin yazarlarına minnettardır 7. Bu çalışma, Ulusal Sağlık Enstitüleri (ES002109, AG063341, ES031576, ES031529, ES026856) ve Singapur-MIT Araştırma ve Teknoloji Antimikrobiyal Direnç IRG İttifakı aracılığıyla Singapur Ulusal Araştırma Vakfı’ndan alınan hibelerle desteklenmiştir.
2-ketoglutarate | Sigma-Aldrich | 75890 | Prepare a working solution (1 M) and store it at -20ºC |
2100 Bioanalyzer Instrument | Agilent | G2938C | |
5'-deadenylase (50 U/μL) | New England Biolabs | M0331S (component #: M0331SVIAL) | Store at -20 °C |
Adenosine 5'-Triphosphate (ATP) | New England Biolabs | M0437M (component #: N0437AVIAL) | NEB M0437M contains T4 RNA Ligase 1 (30 U/μL), T4 RNA Ligase Reaction Buffer (10X), PEG 8000 (1X), and ATP (100 mM); prepare a working solution (10 mM) and store it at -20ºC |
AGAROSE GPG/LE | AmericanBio | AB00972-00500 | Store at ambient temperature |
Ammonium iron(II) sulfate hexahydrate | Sigma-Aldrich | F2262 | Prepare a working solution (0.25 M) and store it at -20 °C |
Bioanalyzer Small RNA Analysis | Agilent | 5067-1548 | The Small RNA Analysis is used for checking the quality of input RNAs and the efficiency of enzymatic reactions (e.g., Linker 1 ligation) |
Bovine Serum Albumin (BSA; 10 mg/mL) | New England Biolabs | B9000 | This product was discontinued on 12/15/2022 and is replaced with Recombinant Albumin, Molecular Biology Grade (NEB B9200). |
Chloroform | Macron Fine Chemicals | 4441-10 | |
Demethylase | ArrayStar | AS-FS-004 | Demethylase comes with the rtStar tRNA Pretreatment & First-Strand cDNA Synthesis Kit (AS-FS-004) |
Deoxynucleotide (dNTP) Solution Mix | New England Biolabs | N0447L (component #: N0447LVIAL) | This dNTP Solution Mix contains equimolar concentrations of dATP, dCTP, dGTP and dTTP (10 mM each) |
Digital Dual Heat Block | VWR Scientific Products | 13259-052 | Heating block is used with the QIAquick Gel Extraction Kit |
DyeEx 2.0 Spin Kit | Qiagen | 63204 | Effective at removing short remnants (e.g., oligos less than 10 bp in length) |
Electrophoresis Power Supply | Bio-Rad Labrotories | PowerPac 300 | |
Eppendorf PCR Tubes (0.5 mL) | Eppendorf | 0030124537 | |
Eppendorf Safe-Lock Tubes (0.5 mL) | Eppendorf | 022363611 | |
Eppendorf Safe-Lock Tubes (1.5 mL) | Eppendorf | 022363204 | |
Eppendorf Safe-Lock Tubes (2 mL) | Eppendorf | 022363352 | |
Ethyl alcohol (Ethanol), Pure | Sigma-Aldrich | E7023 | The pure ethanol is used with the Oligo Clean and Concentrator Kit from Zymo Research |
Gel Imaging System | Alpha Innotech | FluorChem 8900 | |
Gel Loading Dye, Purple (6X), no SDS | New England Biolabs | N0556S (component #: B7025SVIAL) | NEB N0556S contains Quick-Load Purple 50 bp DNA Ladder and Gel Loading Dye, Purple (6X), no SDS |
GENESYS 180 UV-Vis Spectrophotometer | Thermo Fisher Scientific | 840-309000 | The spectrophotometer is used for measuring the oligo concentrations using the Beer's law |
HEPES | Sigma-Aldrich | H4034 | Prepare a working solution (1 M; pH = 8 with NaOH) and store it at -20 °C |
Hydrochloric acid (HCl) | VWR Scientific Products | BDH3028 | Prepare a working solution (5 M) and store it at ambient temperature |
Isopropyl Alcohol (Isopropanol), Pure | Macron Fine Chemicals | 3032-16 | Isopropanol is used with the QIAquick Gel Extraction Kit |
L-Ascorbic acid | Sigma-Aldrich | A5960 | Prepare a working solution (0.5 M) and store it at -20ºC |
Microcentrifuge | Eppendorf | 5415D | |
NanoDrop 2000 Spectrophotometer | Thermo Fisher Scientific | ND-2000 | |
NEBuffer 2 (10X) | New England Biolabs | M0264L (component #: B7002SVIAL) | NEB M0264L contains RecJf (30 U/μL) and NEBuffer 2 (10X); store at -20 °C |
Nuclease-Free Water (not DEPC-Treated) | Thermo Fisher Scientific | AM9938 | |
Oligo Clean & Concentrator Kit | Zymo Research | D4061 | Store at ambient temperature |
PEG 8000 (50% solution) | New England Biolabs | M0437M (component #: B1004SVIAL) | NEB M0437M contains T4 RNA Ligase 1 (30 U/μL), T4 RNA Ligase Reaction Buffer (10X), PEG 8000 (1X), and ATP (100 mM); prepare a working solution (10 mM) and store it at -20ºC |
Peltier Thermal Cycler | MJ Research | PTC-200 | |
Phenol:choloroform:isoamyl alcohol 25:24:1 pH = 5.2 | Thermo Fisher Scientific | J62336 | |
PrimeScript Buffer (5X) | TaKaRa | 2680A | |
PrimeScript Reverse Transcriptase | TaKaRa | 2680A | |
QIAquick Gel Extraction Kit | Qiagen | 28704 | This kit requires a heating block and isopropanol to work with |
Quick-Load Purple 100 bp DNA Ladder | New England Biolabs | N0551S (component #: N0551SVIAL) | |
Quick-Load Purple 50 bp DNA Ladder | New England Biolabs | N0556S (component #: N0556SVIAL) | NEB N0556S contains Quick-Load Purple 50 bp DNA Ladder and Gel Loading Dye, Purple (6X), no SDS |
RecJf (30 U/μL) | New England Biolabs | M0264L (component #: M0264LVIAL) | NEB M0264L contains RecJf (30 U/μL) and NEBuffer 2 (10X); store at -20 °C |
RNase Inhibitor (murine; 40 U/μL) | New England Biolabs | M0314L (component #: M0314LVIAL) | Store at -20 °C |
SeqAMP DNA Polymerase | TaKaRa | 638509 | TaKaRa 638509 contains SeqAMP DNA Polymerase and SeqAMP PCR Buffer (2X) |
SeqAMP PCR Buffer (2X) | TaKaRa | 638509 | TaKaRa 638509 contains SeqAMP DNA Polymerase and SeqAMP PCR Buffer (2X) |
Shrimp Alkaline Phosphatase (1 U/μL) | New England Biolabs | M0371L (component #: M0371LVIAL) | |
Sodium hydroxide (NaOH) | Sigma-Aldrich | S5881 | Prepare a working solution (5 M) and store it at ambient temperature |
T4 DNA Ligase (400 U/μL) | New England Biolabs | M0202L (component #: M0202LVIAL) | NEB M0202L contains T4 DNA Ligase (400 U/μL) and T4 DNA Ligase Reaction Buffer (10X) |
T4 DNA Ligase Reaction Buffer (10X) | New England Biolabs | M0202L (component #: B0202SVIAL) | NEB M0202L contains T4 DNA Ligase (400 U/μL) and T4 DNA Ligase Reaction Buffer (10X) |
T4 RNA Ligase 1 (30 U/μL) | New England Biolabs | M0437M (component #: M0437MVIAL) | NEB M0437M contains T4 RNA Ligase 1 (30 U/μL), T4 RNA Ligase Reaction Buffer (10X), PEG 8000 (1X), and ATP (100 mM) |
T4 RNA Ligase Reaction Buffer (10X) | New England Biolabs | M0437M (component #: B0216SVIAL) | NEB M0437M contains T4 RNA Ligase 1 (30 U/μL), T4 RNA Ligase Reaction Buffer (10X), PEG 8000 (1X), and ATP (100 mM) |