Summary

OVA'ya özgü sistemik ve mukozal yanıtları teşvik etmek için bir adjuvan olarak katyonik nanoemülsiyon kapsüllenmiş retinoik asit

Published: February 23, 2024
doi:

Summary

Bu protokolde, antijene özgü sistemik ve mukozal yanıtları desteklemek için adjuvan olarak kullanılmak üzere katyonik nanoemülsiyon kapsüllü retinoik asit (RA) geliştirdik. FDA onaylı RA’yı nanoemülsiyona ekleyerek, nanoemülsiyonun intramüsküler enjeksiyonundan sonra vajina ve ince bağırsakta antijene özgü sIgA teşvik edildi.

Abstract

Katyonik nanoyapılar, dendritik hücre olgunlaşmasını, ROS oluşumunu ve antijen alımını artıran ve daha sonra antijene özgü immün yanıtları destekleyen bir adjuvan ve antijen dağıtım sistemi olarak ortaya çıkmıştır. Son yıllarda, retinoik asit (RA), mukozal immün yanıtı aktive etmedeki etkisi nedeniyle artan bir ilgi görmüştür; bununla birlikte, RA’yı mukozal bir adjuvan olarak kullanmak için, çözünme, yüklenme ve verilme problemini çözmek gerekir. Burada, katyonik lipid 1,2-dioleoil-sn-glisero-3-fosfokolin (DOTAP), retinoik asit, yağ fazı olarak skualen, yüzey aktif madde olarak polisorbat 80 ve yardımcı yüzey aktif madde olarak sorbitan trioleat 85’ten oluşan katyonik nanoemülsiyon kapsüllü retinoik asit (CNE-RA) dağıtım sistemini tarif ediyoruz. Fiziksel ve kimyasal özellikleri, dinamik ışık saçılımı ve bir spektrofotometre kullanılarak karakterize edildi. Farelerin antijen (ovalbümin, OVA) ve CNE-RA karışımı ile aşılanması, vajinal lavaj sıvısında ve farelerin ince bağırsak lavaj sıvısında anti-OVA salgı immünoglobulin A (sIgA) seviyelerini tek başına OVA ile karşılaştırıldığında önemli ölçüde yükseltti. Bu protokol, CNE-RA’nın adjuvan etkisinin hazırlanması, karakterizasyonu ve değerlendirilmesi için ayrıntılı bir yöntemi açıklar.

Introduction

Adjuvanlar genellikle bağışıklık sistemini aşıya daha güçlü yanıt vermesi için uyararak ve böylece belirli bir patojene karşı bağışıklığı artırarak bir aşının etkinliğini arttırmak için kullanılır1. Nanoemülsiyon (NE) adjuvanı, yağda su (W/O) veya suda yağ (O/W)2 şeklinde bir emülsiyon üretmek için belirli bir oranda yağ fazı ve sulu fazı emülsifiye ederek termodinamik stabiliteye sahip bir kolloidal dispersiyon sistemini ifade eder. O / W nanoemülsiyon adjuvanı, enjeksiyon bölgesinde sitokinler ve kemokinler üretebilir, monositler, nötrofiller ve eozinofiller gibi önemli bağışıklık hücrelerinin hızlı agregasyonunu ve proliferasyonunu indükleyebilir ve bağışıklık tepkisini artırabilir ve antijenlerin immünojenisitesini artırabilir3. Şu anda, üç nanoemülsiyon adjuvanı (MF59, AS03 ve AF03) aşılarda kullanım için lisanslanmıştır ve iyi güvenlik ve etkinlik göstermiştir4.

Bununla birlikte, mukozal bağışıklık, konvansiyonel parenteral aşılamada şu anda lisanslı adjuvan formülasyonlar tarafından yetersiz bir şekilde ele alınmıştır5. Retinoik asidin (RA) bağışıklık hücrelerinin bağırsak güdümünü indüklediği bildirilmiştir, ancak düşük polaritesi, suda zayıf çözünürlüğü ve zayıf ışık ve termal stabilitesi, sağlam enterik aşılama için kullanımını sınırlar. Nanoemülsiyonlar, yüksek derecede lipofilik ilaçların biyoyararlanımını arttırma fırsatları sunar ve O / W emülsiyon adjuvanlarının yağ çekirdeği, RA6 gibi polar olmayan maddelerin çözülmesi için uygundur. Bu nedenle, nanoemülsiyonlar, sistemik bağışıklık ve mukozal bağışıklığın ikili yanıt etkisini elde etmek için RA için taşıyıcı olarak kullanılabilir.

Nötr veya anyonik dağıtım sistemleriyle karşılaştırıldığında, katyonik dağıtım sistemleri, antijenlerin 7,8,9 immünojenisitesini artırabilen nispeten verimli antijen kapsülleme ve verme yeteneklerine sahiptir. Çeşitli adjuvan sistemlerin katyonik yüzey yükü, adjuvan etkileri için önemlidir 10,11,12. Katyonik yük, enjeksiyon bölgesinde aşı tutulma süresinin uzaması, antijen sunumunun arttırılması ve vücuttaki hücresel bağışıklığın uyarılmasının uzamasında önemli bir faktördür12.

Yukarıdaki hususlara dayanarak, RA ve antijenleri etkili bir şekilde birlikte iletmek için katyonik bir nanoemülsiyon geliştirdik. Nanoemülsiyonun partikül boyutu ve zeta potansiyeli, dinamik ışık saçılımı (DLS) kullanılarak belirlendi ve OVA ile kombine edilen nanoemülsiyonun sistemik ve mukozal immün yanıtları intramüsküler enjeksiyon13 ile değerlendirildi.

Protocol

Hayvan deneyleri, Laboratuvar Hayvanlarının Kullanımı ve Bakımı Kılavuzu’na uygun olarak gerçekleştirilmiş ve Üçüncü Askeri Tıp Üniversitesi Laboratuvar Hayvanları Refahı ve Etik Kurulu tarafından onaylanmıştır. 1. Nanoemülsiyonların (NE’ler) hazırlanması Sulu faz hazırlığı için, 40 ° C’de karıştırırken 0.15 g polisorbat 80’i 28.2 mL fosfat tamponlu salin (PBS) içinde çözün. Yağ fazı hazırlığı için, Tab…

Representative Results

Toplamda, dört nanoemülsiyon formülasyonu hazırlanmış ve Tablo 2’de sunulduğu gibi partikül boyutları (Şekil 1), zeta potansiyelleri ve kapsülleme verimlilikleri ile karakterize edilmiştir. Parçacık boyutu 160-190nm civarında konsantre edildi ve DOTAP ilavesi nanoemülsiyonun Zeta potansiyelini tersine çevirdi. OVA’ya özgü serum IgG ve serumdaki alt grup antikor düzeyi üçüncü aşılamadan 2 hafta sonra tespit edildi. Nanoemülsiyon adjuvan aşı, serum…

Discussion

Bu protokolde, antijene özgü sistemik ve mukozal yanıtları teşvik etmek için adjuvan olarak kullanılmak üzere katyonik nanoemülsiyon kapsüllü retinoik asit geliştirdik. Geleneksel NE adjuvanları ile karşılaştırıldığında, aşağıdaki iki avantaja sahiptir. İlk olarak, genel olarak, O/W NE’lerin yüzeyi yüksek bir negatif yüke sahiptir, bu da antijenlerin doğrudan yüklenmesini zorlaştırır. Katyonik NE’ler, peptit veya protein antijenlerini etkili bir şekilde adsorbe edebilir ve spesifik immü…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Bu çalışma, Chongqing Doğa Bilimleri Vakfı Anahtar Programı (No. cstc2020jcyj-zdxmX0027) ve Çin Ulusal Doğa Bilimleri Vakfı Projesi (No. 32270988) tarafından finanse edilmiştir.

Materials

1640 medium GIBCO, USA C11875500BT
450 nm Stop Solution for TMB Substrate Abcam ab171529-1000 mL
Automated Cell Counter Countstar, China IC1000
BSA Sigma-Aldrich, USA B2064-100G
Centrifuge 5810 R Eppendorf, Germany 5811000398
Danamic Light Scattering Malvern Zetasizer Nano S90
DOTAP CordenPharma, Switzerland O02002
ELISpot Plus: Mouse IFN-gamma (ALP) mabtech ab205719
Fetal Bovine Serum GIBCO, USA 10099141C
Full-function Microplate Reader Thermo Fisher Scientific, USA VL0000D2
Goat Anti-Mouse IgG1(HRP) Abcam ab97240-1mg
Goat Anti-Mouse IgA alpha chain (HRP) Abcam ab97235-1mg
Goat Anti-Mouse IgG H&L (HRP) Abcam Ab205720-500ug
Goat Anti-Mouse IgG2a heavy chain (HRP) Abcam ab97245-1mg
High pressure homogenizer ATS
MONTANE 85 PPI SEPPIC, France L12910
MONTANOX 80 PPI SEPPIC, France 36372K
OVA257–264 Shanghai Botai Biotechnology Co., Ltd. NA
OVA323-339 Shanghai Botai Biotechnology Co., Ltd. NA
Phosphate buffer saline ZSGB-bio ZLI-9061
Red Blood Cell Lysis Buffer Solarbio, China R1010
retinoic acid TCI, Japan TCI-R0064-5G
Squalene Sigma, USA S3626
T10 basic Ultra-Turrax IKA, Germany
TMB ELISA Substrate Abcam ab171523-1000ml
trypsin inhibitor Diamond A003570-0100
Tween-20 Macklin, China 9005-64-5
Ultraviolet spectrophotometer Hitachi U-3900

References

  1. Pulendran, B., Arunachalam, P. S., O’Hagan, D. T. Emerging concepts in the science of vaccine adjuvants. Nat Rev Drug Discov. 20 (6), 454-475 (2021).
  2. Pandey, P., Gulati, N., Makhija, M., Purohit, D., Dureja, H. Nanoemulsion: A novel drug delivery approach for enhancement of bioavailability. Recent Pat Nanotech. 14 (4), 276-293 (2020).
  3. Chen, W. L., et al. Disintegration and cancer immunotherapy efficacy of a squalane-in-water delivery system emulsified by bioresorbable poly(ethylene glycol)-block-polylactide. Biomaterials. 35 (5), 1686-1695 (2014).
  4. Iwasaki, A., Omer, S. B. Why and how vaccines work. Cell. 183 (2), 290-295 (2020).
  5. Spadoni, I., Fornasa, G., Rescigno, M. Organ-specific protection mediated by cooperation between vascular and epithelial barriers. Nat Rev Immunol. 17 (12), 761-773 (2017).
  6. Singh, Y., et al. Nanoemulsion: Concepts, development and applications in drug delivery. J Cont Release. 252, 28-49 (2017).
  7. Yan, W. L., Chen, W. S., Huang, L. Mechanism of adjuvant activity of cationic liposome: Phosphorylation of a MAP kinase, ERK and induction of chemokines. Mol Immunol. 44 (15), 3672-3681 (2007).
  8. Korsholm, K. S., et al. The adjuvant mechanism of cationic dimethyldioctadecylammonium liposomes. Immunology. 121 (2), 216-226 (2007).
  9. Agger, E. M., et al. Cationic liposomes formulated with synthetic mycobacterial cordfactor (CAF01): A versatile ddjuvant for vaccines with different immunological requirements. Plos One. 3 (9), e3116 (2008).
  10. Slutter, B., et al. Nasal vaccination with N-trimethyl chitosan and PLGA based nanoparticles: Nanoparticle characteristics determine quality and strength of the antibody response in mice against the encapsulated antigen. Vaccine. 28 (38), 6282-6291 (2010).
  11. Nochi, T., et al. Nanogel antigenic protein-delivery system for adjuvant-free intranasal vaccines. Nat Mater. 9 (8), 685-685 (2010).
  12. Henriksen-Lacey, M., et al. Liposomal cationic charge and antigen adsorption are important properties for the efficient deposition of antigen at the injection site and ability of the vaccine to induce a CMI response. J Control Release. 145 (2), 102-108 (2010).
  13. Zhong, X. F., et al. Nanovaccines mediated subcutis-to-intestine cascade for improved protection against intestinal infections. Small. 18 (1), e2105530 (2022).
  14. Mora, J. R., et al. Generation of gut-homing IgA-secreting B cells by intestinal dendritic cells. Science. 314 (5802), 1157-1160 (2006).
  15. Iwata, M., et al. Retinoic acid imprints gut-homing specificity on T cells. Immunity. 21 (4), 527-538 (2004).
  16. Hammerschmidt, S. I., et al. Retinoic acid induces homing of protective T and B cells to the gut after subcutaneous immunization in mice. J Clin Invest. 121 (8), 3051-3061 (2011).
  17. Burger, C., Shahzad, Y., Brümmer, A., Gerber, M., du Plessis, J. Traversing the skin barrier with nano-emulsions. Curr Drug Deliv. 14 (4), 458-472 (2017).
  18. Lodaya, R. N., et al. Formulation design, optimization and evaluations of an α-tocopherol-containing self-emulsified adjuvant system using inactivated influenza vaccine. J Cont Release. 316, 12-21 (2019).
  19. Carmona-Ribeiro, A. M., Pérez-Betancourt, Y. Cationic nanostructures for vaccines design. Biomimetics. 5 (3), 32 (2020).
  20. Lam, K., et al. trialkyl ionizable lipids are versatile lipid-nanoparticle components for therapeutic and vaccine applications. Adv Mater. 35 (15), e2209624 (2023).
  21. Nie, T. Q., et al. Surface coating approach to overcome mucosal entrapment of DNA nanoparticles for oral gene delivery of glucagon-like peptide 1. Acs Appl Mater Inter. 11 (33), 29593-29603 (2019).
  22. Lou, G., et al. Delivery of self-amplifying mRNA vaccines by cationic lipid nanoparticles: The impact of cationic lipid selection. J Cont Release. 325, 370-379 (2020).

Play Video

Cite This Article
Li, G., Li, H., Jin, Z., Feng, R., Deng, Y., Cheng, H., Li, H. Cationic Nanoemulsion-Encapsulated Retinoic Acid as an Adjuvant to Promote OVA-Specific Systemic and Mucosal Responses. J. Vis. Exp. (204), e66270, doi:10.3791/66270 (2024).

View Video