Summary

Acido retinoico incapsulato con nanoemulsione cationica come adiuvante per promuovere risposte sistemiche e mucose specifiche per le OVA

Published: February 23, 2024
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Summary

In questo protocollo, abbiamo sviluppato un acido retinoico (RA) incapsulato in nanoemulsione cationica da utilizzare come adiuvante per promuovere risposte sistemiche e mucose antigene-specifiche. Aggiungendo l’artrite reumatoide approvata dalla FDA alla nanoemulsione, le sIgA antigene-specifiche sono state promosse nella vagina e nell’intestino tenue dopo l’iniezione intramuscolare della nanoemulsione.

Abstract

Le nanostrutture cationiche sono emerse come un adiuvante e un sistema di rilascio dell’antigene che migliora la maturazione delle cellule dendritiche, la generazione di ROS e l’assorbimento dell’antigene e quindi promuove risposte immunitarie antigene-specifiche. Negli ultimi anni, l’acido retinoico (RA) ha ricevuto una crescente attenzione per il suo effetto nell’attivare la risposta immunitaria della mucosa; tuttavia, per utilizzare l’artrite reumatoide come adiuvante della mucosa, è necessario risolvere il problema della sua dissoluzione, carico e consegna. Qui, descriviamo un sistema di rilascio di acido retinoico incapsulato in nanoemulsione cationica (CNE-RA) composto dal lipide cationico 1,2-dioleoil-sn-glicero-3-fosfocolina (DOTAP), acido retinoico, squalene come fase oleosa, polisorbato 80 come tensioattivo e trioleato di sorbitano 85 come co-tensioattivo. Le sue proprietà fisiche e chimiche sono state caratterizzate utilizzando la diffusione dinamica della luce e uno spettrofotometro. L’immunizzazione dei topi con la miscela di antigene (ovoalbumina, OVA) e CNE-RA ha aumentato significativamente i livelli di immunoglobulina A secretoria anti-OVA (sIgA) nel liquido di lavaggio vaginale e nel liquido di lavaggio dell’intestino tenue dei topi rispetto al solo OVA. Questo protocollo descrive un metodo dettagliato per la preparazione, la caratterizzazione e la valutazione dell’effetto adiuvante di CNE-RA.

Introduction

Gli adiuvanti sono spesso utilizzati per migliorare l’efficacia di un vaccino stimolando il sistema immunitario a rispondere più fortemente al vaccino, aumentando così l’immunità a un particolare agente patogeno1. L’adiuvante della nanoemulsione (NE) si riferisce a un sistema di dispersione colloidale con stabilità termodinamica emulsionando una certa proporzione di fase oleosa e fase acquosa per produrre un’emulsione sotto forma di acqua-in-olio (W/O) o olio-in-acqua (O/W)2. L’adiuvante di nanoemulsione O/W può produrre citochine e chemochine nel sito di iniezione, indurre la rapida aggregazione e proliferazione di importanti cellule immunitarie come monociti, neutrofili ed eosinofili, migliorare la risposta immunitaria e migliorare l’immunogenicità degli antigeni3. Attualmente, tre adiuvanti di nanoemulsione (MF59, AS03 e AF03) sono stati autorizzati per l’uso nei vaccini e hanno dimostrato una buona sicurezza ed efficacia4.

Tuttavia, l’immunità della mucosa è stata scarsamente affrontata dalle formulazioni adiuvanti attualmente autorizzate nella vaccinazione parenterale convenzionale5. È stato riportato che l’acido retinoico (RA) induce l’homing intestinale delle cellule immunitarie, ma la sua bassa polarità, la scarsa solubilità in acqua e la scarsa stabilità alla luce e termica ne limitano l’uso per una robusta vaccinazione enterica. Le nanoemulsioni offrono l’opportunità di aumentare la biodisponibilità di farmaci altamente lipofili e il nucleo oleoso degli adiuvanti per emulsioni O/W è adatto per sciogliere sostanze non polari come l’artrite reumatoide6. Pertanto, le nanoemulsioni possono essere utilizzate come vettori per l’artrite reumatoide al fine di ottenere il duplice effetto di risposta dell’immunità sistemica e dell’immunità della mucosa.

Rispetto ai sistemi di rilascio neutri o anionici, i sistemi di rilascio cationico hanno capacità di incapsulamento e rilascio dell’antigene relativamente efficienti, che possono migliorare l’immunogenicità degli antigeni 7,8,9. La carica cationica superficiale di una varietà di sistemi adiuvanti è importante per i loro effetti adiuvanti 10,11,12. La carica cationica è un fattore importante nel prolungare la ritenzione del vaccino nel sito di iniezione, aumentando la presentazione dell’antigene e prolungando la stimolazione dell’immunità cellulare nel corpo12.

Sulla base delle considerazioni di cui sopra, abbiamo sviluppato una nanoemulsione cationica per co-fornire efficacemente AR e antigeni. La dimensione delle particelle e il potenziale zeta della nanoemulsione sono stati determinati utilizzando la diffusione dinamica della luce (DLS) e le risposte immunitarie sistemiche e mucose della nanoemulsione combinata con OVA sono state valutate mediante iniezione intramuscolare13.

Protocol

Gli esperimenti sugli animali sono stati eseguiti in conformità con la Guida all’uso e alla cura degli animali da laboratorio e approvati dal Comitato per il benessere e l’etica degli animali da laboratorio della Terza Università medica militare. 1. Preparazione di nanoemulsioni (EN) Per la preparazione in fase acquosa, sciogliere 0,15 g di polisorbato 80 in 28,2 mL di soluzione salina tamponata con fosfato (PBS) agitando a 40 °C. Per la preparazione in …

Representative Results

In totale, sono state preparate quattro formulazioni di nanoemulsioni caratterizzate dalla dimensione delle particelle (Figura 1), dal potenziale zeta e dall’efficienza di incapsulamento, come presentato nella Tabella 2. La dimensione delle particelle era concentrata intorno a 160-190 nm e l’aggiunta di DOTAP ha invertito il potenziale Zeta della nanoemulsione. Le IgG sieriche specifiche per gli OVA e il livello di anticorpi del suo sottogruppo nel siero sono stati rilevati …

Discussion

In questo protocollo, abbiamo sviluppato un acido retinoico incapsulato in nanoemulsione cationica da utilizzare come adiuvante per promuovere risposte sistemiche e mucose antigene-specifiche. Rispetto ai tradizionali adiuvanti NE, presenta i seguenti due vantaggi. In primo luogo, in generale, la superficie degli O/W EN ha un’elevata carica negativa, che rende difficile caricare direttamente gli antigeni. Le EN cationiche possono adsorbire efficacemente antigeni peptidici o proteici e migliorare l’immunogenicità specifi…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Questo studio è stato finanziato dal programma chiave della Fondazione per le scienze naturali di Chongqing (n. cstc2020jcyj-zdxmX0027) e dal progetto della Fondazione nazionale cinese per le scienze naturali (n. 32270988).

Materials

1640 medium GIBCO, USA C11875500BT
450 nm Stop Solution for TMB Substrate Abcam ab171529-1000 mL
Automated Cell Counter Countstar, China IC1000
BSA Sigma-Aldrich, USA B2064-100G
Centrifuge 5810 R Eppendorf, Germany 5811000398
Danamic Light Scattering Malvern Zetasizer Nano S90
DOTAP CordenPharma, Switzerland O02002
ELISpot Plus: Mouse IFN-gamma (ALP) mabtech ab205719
Fetal Bovine Serum GIBCO, USA 10099141C
Full-function Microplate Reader Thermo Fisher Scientific, USA VL0000D2
Goat Anti-Mouse IgG1(HRP) Abcam ab97240-1mg
Goat Anti-Mouse IgA alpha chain (HRP) Abcam ab97235-1mg
Goat Anti-Mouse IgG H&L (HRP) Abcam Ab205720-500ug
Goat Anti-Mouse IgG2a heavy chain (HRP) Abcam ab97245-1mg
High pressure homogenizer ATS
MONTANE 85 PPI SEPPIC, France L12910
MONTANOX 80 PPI SEPPIC, France 36372K
OVA257–264 Shanghai Botai Biotechnology Co., Ltd. NA
OVA323-339 Shanghai Botai Biotechnology Co., Ltd. NA
Phosphate buffer saline ZSGB-bio ZLI-9061
Red Blood Cell Lysis Buffer Solarbio, China R1010
retinoic acid TCI, Japan TCI-R0064-5G
Squalene Sigma, USA S3626
T10 basic Ultra-Turrax IKA, Germany
TMB ELISA Substrate Abcam ab171523-1000ml
trypsin inhibitor Diamond A003570-0100
Tween-20 Macklin, China 9005-64-5
Ultraviolet spectrophotometer Hitachi U-3900

References

  1. Pulendran, B., Arunachalam, P. S., O’Hagan, D. T. Emerging concepts in the science of vaccine adjuvants. Nat Rev Drug Discov. 20 (6), 454-475 (2021).
  2. Pandey, P., Gulati, N., Makhija, M., Purohit, D., Dureja, H. Nanoemulsion: A novel drug delivery approach for enhancement of bioavailability. Recent Pat Nanotech. 14 (4), 276-293 (2020).
  3. Chen, W. L., et al. Disintegration and cancer immunotherapy efficacy of a squalane-in-water delivery system emulsified by bioresorbable poly(ethylene glycol)-block-polylactide. Biomaterials. 35 (5), 1686-1695 (2014).
  4. Iwasaki, A., Omer, S. B. Why and how vaccines work. Cell. 183 (2), 290-295 (2020).
  5. Spadoni, I., Fornasa, G., Rescigno, M. Organ-specific protection mediated by cooperation between vascular and epithelial barriers. Nat Rev Immunol. 17 (12), 761-773 (2017).
  6. Singh, Y., et al. Nanoemulsion: Concepts, development and applications in drug delivery. J Cont Release. 252, 28-49 (2017).
  7. Yan, W. L., Chen, W. S., Huang, L. Mechanism of adjuvant activity of cationic liposome: Phosphorylation of a MAP kinase, ERK and induction of chemokines. Mol Immunol. 44 (15), 3672-3681 (2007).
  8. Korsholm, K. S., et al. The adjuvant mechanism of cationic dimethyldioctadecylammonium liposomes. Immunology. 121 (2), 216-226 (2007).
  9. Agger, E. M., et al. Cationic liposomes formulated with synthetic mycobacterial cordfactor (CAF01): A versatile ddjuvant for vaccines with different immunological requirements. Plos One. 3 (9), e3116 (2008).
  10. Slutter, B., et al. Nasal vaccination with N-trimethyl chitosan and PLGA based nanoparticles: Nanoparticle characteristics determine quality and strength of the antibody response in mice against the encapsulated antigen. Vaccine. 28 (38), 6282-6291 (2010).
  11. Nochi, T., et al. Nanogel antigenic protein-delivery system for adjuvant-free intranasal vaccines. Nat Mater. 9 (8), 685-685 (2010).
  12. Henriksen-Lacey, M., et al. Liposomal cationic charge and antigen adsorption are important properties for the efficient deposition of antigen at the injection site and ability of the vaccine to induce a CMI response. J Control Release. 145 (2), 102-108 (2010).
  13. Zhong, X. F., et al. Nanovaccines mediated subcutis-to-intestine cascade for improved protection against intestinal infections. Small. 18 (1), e2105530 (2022).
  14. Mora, J. R., et al. Generation of gut-homing IgA-secreting B cells by intestinal dendritic cells. Science. 314 (5802), 1157-1160 (2006).
  15. Iwata, M., et al. Retinoic acid imprints gut-homing specificity on T cells. Immunity. 21 (4), 527-538 (2004).
  16. Hammerschmidt, S. I., et al. Retinoic acid induces homing of protective T and B cells to the gut after subcutaneous immunization in mice. J Clin Invest. 121 (8), 3051-3061 (2011).
  17. Burger, C., Shahzad, Y., Brümmer, A., Gerber, M., du Plessis, J. Traversing the skin barrier with nano-emulsions. Curr Drug Deliv. 14 (4), 458-472 (2017).
  18. Lodaya, R. N., et al. Formulation design, optimization and evaluations of an α-tocopherol-containing self-emulsified adjuvant system using inactivated influenza vaccine. J Cont Release. 316, 12-21 (2019).
  19. Carmona-Ribeiro, A. M., Pérez-Betancourt, Y. Cationic nanostructures for vaccines design. Biomimetics. 5 (3), 32 (2020).
  20. Lam, K., et al. trialkyl ionizable lipids are versatile lipid-nanoparticle components for therapeutic and vaccine applications. Adv Mater. 35 (15), e2209624 (2023).
  21. Nie, T. Q., et al. Surface coating approach to overcome mucosal entrapment of DNA nanoparticles for oral gene delivery of glucagon-like peptide 1. Acs Appl Mater Inter. 11 (33), 29593-29603 (2019).
  22. Lou, G., et al. Delivery of self-amplifying mRNA vaccines by cationic lipid nanoparticles: The impact of cationic lipid selection. J Cont Release. 325, 370-379 (2020).

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Cite This Article
Li, G., Li, H., Jin, Z., Feng, R., Deng, Y., Cheng, H., Li, H. Cationic Nanoemulsion-Encapsulated Retinoic Acid as an Adjuvant to Promote OVA-Specific Systemic and Mucosal Responses. J. Vis. Exp. (204), e66270, doi:10.3791/66270 (2024).

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