כאן, אנו מדגימים כיצד לשלב טרנספקציה של נוירונים מכרסמים ראשוניים בהיפוקמפוס עם הדמיה קונפוקלית של תאים חיים כדי לנתח השפעות פתולוגיות המושרות על ידי חלבונים על הובלה אקסונלית ולזהות מסלולים מכניסטיים המתווכים השפעות אלה.
הובלה דו-כיוונית של מטענים לאורך האקסון חיונית לשמירה על סינפסות תפקודיות, קישוריות עצבית ותאי עצב בריאים. ההובלה האקסונלית משובשת במחלות נוירודגנרטיביות מרובות, ונוירוני הקרנה פגיעים במיוחד בגלל הצורך להעביר חומרים תאיים למרחקים ארוכים ולשמור על מסה אקסונלית משמעותית. שינויים פתולוגיים של מספר חלבונים הקשורים למחלות משפיעים לרעה על התחבורה, כולל טאו, עמילואיד-β, α-סינוקלאין, סופראוקסיד דיסמוטאז והנטינגטין, ומספקים מנגנון משותף פוטנציאלי שבאמצעותו חלבונים פתולוגיים מפעילים רעילות במחלות. שיטות לחקור מנגנונים רעילים אלה נחוצים כדי להבין הפרעות נוירודגנרטיביות ולזהות התערבויות טיפוליות פוטנציאליות.
כאן, נוירוני היפוקמפוס ראשוניים של מכרסמים בתרבית נגועים יחד עם פלסמידים מרובים כדי לחקור את ההשפעות של חלבונים פתולוגיים על הובלה אקסונלית מהירה באמצעות הדמיה קונפוקלית של תאים חיים של חלבוני מטען מתויגים פלואורסצנטית. אנו מתחילים עם הקציר, הדיסוציאציה והטיפוח של נוירונים ראשוניים בהיפוקמפוס ממכרסמים. לאחר מכן, אנו מבצעים טרנספורמציה משותפת של תאי העצב עם מבני דנ”א פלסמידים כדי לבטא חלבון מטען מתויג פלואורסצנטי וטאו פראי או מוטנטי (המשמש כדוגמה לחלבונים פתולוגיים). אקסונים מזוהים בתאים חיים באמצעות נוגדן הקושר תחום חוץ-תאי של נוירופאשין, חלבון מקטע ראשוני של אקסון, ואזור עניין אקסונלי מדומה למדידת הובלת מטענים פלואורסצנטיים.
באמצעות KymoAnalyzer, מאקרו ImageJ הזמין באופן חופשי, אנו מאפיינים בהרחבה את המהירות, תדירות ההשהיה וצפיפות המטען הכיוונית של הובלה אקסונלית, שכולם עשויים להיות מושפעים מנוכחותם של חלבונים פתולוגיים. באמצעות שיטה זו, אנו מזהים פנוטיפ של תדירות השהיית מטען מוגברת הקשורה לביטוי של חלבון טאו פתולוגי. בנוסף, ניתן להוסיף מבני shRNA להשתקת גנים לתמהיל הטרנספקציה כדי לבחון את תפקידם של חלבונים אחרים בתיווך שיבוש ההובלה. פרוטוקול זה ניתן להתאמה בקלות לשימוש עם חלבונים אחרים הקשורים למחלות נוירודגנרטיביות והוא שיטה ניתנת לשחזור לחקר המנגנונים של האופן שבו חלבונים אלה משבשים את ההובלה האקסונלית.
תאי עצב תלויים בהובלה דו-כיוונית של מטען לאורך האקסון כדי לשמור על סינפסות תפקודיות וקישוריות עצבית. ליקויים בהובלה אקסונלית נחשבים לתורמים קריטיים לפתוגנזה של מספר מחלות נוירודגנרטיביות, כולל מחלת אלצהיימר (AD) וטאואופתים אחרים, מחלת פרקינסון, טרשת אמיוטרופית צידית ומחלת הנטינגטון 1,2,3. ואכן, שינויים פתולוגיים במספר חלבונים הקשורים למחלות משפיעים לרעה על התחבורה (נסקר ב -4). פיתוח שיטות לחקר המנגנונים שבאמצעותם חלבונים פתולוגיים מפעילים רעילות במחלות נחוץ כדי להבין הפרעות נוירודגנרטיביות ולזהות מטרות פוטנציאליות להתערבות טיפולית.
מספר תובנות חשובות על העברת אקסונים, כולל גילוי קינזין קונבנציונלי, מסלולים תלויי קינאז ופוספטאז המווסתים חלבונים מוטוריים, ומנגנונים שבאמצעותם חלבונים פתולוגיים משבשים את ויסות העברת האקסונים, נעשו באמצעות מודל אקסופלזמה של דיונון מבודד 4,5. זילוח של אקסופלסמת דיונון עם צורות פתולוגיות של חלבון טאו מעכב הובלה אקסונלית מהירה אנטרוגרדית (FAT), השפעה התלויה בחשיפה של תחום הפעלת פוספטאז של טאו, אשר מפעיל את חלבון phosphatase 1 (PP1)6,7,8. PP1 מפעיל גליקוגן סינתאז קינאז 3 (GSK3), אשר בתורו פוספורילטים קינזין שרשראות אור גורם לשחרור מטען. חלבון פתולוגי נוסף באלצהיימר הוא עמילואיד-β. צורות אוליגומריות של β עמילואיד מעכבות FAT דו-כיווני באמצעות קזאין קינאז 2, אשר פוספורילטים קינזין שרשראות אור9. יתר על כן, חלבון הנטינגטין פתולוגי בעל הרחבת פוליגלוטמין ומוטציה משפחתית SOD1 הקשורה ל-ALS משבשים כל אחד את ההובלה האקסונלית באקסופלזמה של דיונון דרך פעילות קינאז c-Jun N-terminal וחלבון קינאז p38 המופעל על ידי מיטוגן, בהתאמה10,11.
בעוד מודל אקסופלזמה דיונון ממשיך להיות כלי רב ערך בהבנת ההשפעות של חלבונים פתולוגיים על תחבורה אקסונלית, גישה מוגבלת לציוד ולדגימות מונעת ממנו להיות בשימוש נרחב יותר. פיתחנו בדיקת הובלה באמצעות הדמיה במיקרוסקופ קונפוקלי של תאים חיים של נוירונים ראשוניים של מכרסמים (עכבר וחולדה). מודל זה מייצג גישה מבוססת תאי עצב של יונקים הניתנת להתאמה ולמניפולציה בקלות באמצעות מקורות תאים זמינים באופן נרחב ומערכות מיקרוסקופיה. לדוגמה, מגוון חלבונים פתולוגיים (למשל, בעלי שינויים הקשורים למחלות) באים לידי ביטוי כדי לזהות כיצד שינויים ספציפיים של חלבונים אלה משפיעים על ההובלה באקסונים. באופן דומה, ניתן להשתמש במגוון חלבוני מטען בעלי תיוג פלואורסצנטי כדי לבחון שינויים ספציפיים למטען. יתר על כן, המנגנונים המולקולריים הבסיסיים נחקרים בקלות יחסית על ידי מיקוד ביטוי (כלומר, הפלה או ביטוי יתר) של חלבונים נבחרים שעשויים לתווך השפעות אלה. שיטה זו גם מותאמת בקלות לתאי עצב ראשוניים שמקורם במגוון רחב של מודלים של בעלי חיים.
אנו מציגים פרוטוקול מפורט המתאר את בדיקת העברת האקסון החי ששימש בעבר בנוירונים ראשוניים בהיפוקמפוס כדי להראות כי חלבוני טאו מוטנטיים הקשורים לדמנציה של האונה הקדמית (FTLD; P301L או R5L tau) מגבירים את תדירות ההשהיה של חלבוני מטען בעלי תווית פלואורסצנטית דו-כיוונית12. יתר על כן, הפלת האיזופורם PP1γ הצילה את השפעות ההשהיה12. זה מספק תמיכה למודל של הפרעה פתולוגית הנגרמת על ידי טאו המתווכת באמצעות הפעלה חריגה של מסלול איתות ביוזמת PP1 כמתואר לעיל 6,7,12. במחקר נפרד, הראינו כי פסאודו-פוספורילציה של טאו ב-S199/S202/T205 (הפוספואפיטופ AT8 הפתוגני הרלוונטי לטאופתיות) הגבירה את תדירות השהיית המטען ואת מהירות המקטע האנטרוגרד. השפעות אלה היו תלויות בתחום הפעלת הפוספטאז N-terminal של טאו13. דוגמאות אלה מדגישות את התועלת של מודל זה לזיהוי המנגנונים של האופן שבו חלבונים פתולוגיים משבשים את העברת האקסון בנוירונים של יונקים.
מאמר זה מספק תיאור מפורט של השיטה המתחילה בקציר, דיסוציאציה וטיפוח של נוירונים ראשוניים בהיפוקמפוס של עכברים, לאחר מכן טרנספקציה של תאי עצב עם חלבוני מטען המאוחים עם חלבון פלואורסצנטי, ולבסוף, גישת הדמיה וניתוח תמונה של תאים חיים. אנו מדגימים כיצד שיטה זו משמשת לחקר ההשפעות של טאו שונה על ההובלה הדו-כיוונית של החלבון הקשור לשלפוחית, סינפטופיזין, כדוגמה. עם זאת, קיימת גמישות בחלבון הפתוגני ובחלבון המטען התובלה, מה שהופך את זה לגישה רב-תכליתית לחקר הובלה אקסונלית.
ישנן ראיות הולכות וגדלות לכך שחלבונים פתולוגיים מרובים הקשורים למגוון הפרעות נוירודגנרטיביות משבשים את התחבורה האקסונלית המהירה בנוירונים. זה מייצג מנגנון משותף פוטנציאלי של רעילות עצבית על פני מחלות אלה. כדי להבין טוב יותר את התהליך שבו החלבונים האלה משבשים את השינו?…
The authors have nothing to disclose.
אנו מודים לצ’לסי טירנן ולקייל כריסטנסן על מאמציהם בפיתוח ואופטימיזציה של היבטים של פרוטוקולים אלה. עבודה זו נתמכה על ידי המכונים הלאומיים לבריאות (NIH) מענקים R01 NS082730 (N.M.K.), R01 AG044372 (N.M.K.), R01 AG067762 (N.M.K.) ו- F31 AG074521 (R.L.M.); NIH/המכון הלאומי להזדקנות, מישיגן מענק 5P30AG053760 (N.M.K. ו- B.C.); משרד עוזר מזכיר ההגנה לענייני בריאות באמצעות פרס תוכנית המחקר לאלצהיימר W81XWH-20-1-0174 (B.C.); מענקי מחקר של האגודה לאלצהיימר 20-682085 (B.C.); וקרן משפחת סקיה (N.M.K).
0.4% Trypan blue | Gibco | 15250-061 | |
1.7 mL microcentrifuge tubes | DOT | RN1700-GMT | |
2.5% trypsin | Gibco | 15090-046 | |
3 mL syringe with 21 G needle | Fisher | 14-826-84 | |
10 mL plastic syringe | Fisher | 14-823-2A | |
14 G needle | Fisher | 14-817-203 | |
15 G needle | Medline | SWD200029Z | |
16 G needle | Fisher | 14-817-104 | |
18 G needle | Fisher | 14-840-97 | |
22 G needle | Fisher | 14-840-90 | |
32% paraformaldehyde | Fisher | 50-980-495 | |
AlexaFluor 647 goat anti-rabbit IgG (H+L) | Invitrogen | A21244 | RRID:AB_2535813 |
Amphotericin B | Gibco | 15290-026 | |
Arruga Micro Embryonic Capsule Forceps, Curved; 4" | Roboz | RS-5163 | autoclave |
B-27 Supplement (50x), serum free | Gibco | A3582801 | |
BioCoat 24-well Poly D lysine plates | Fisher | 08-774-124 | |
boric acid | Sigma | B6768-1KG | |
Calcium chloride | Sigma | C7902 | |
Castroviejo 3 1/2" Long 8 x 0.15 mm Angle Sharp Scissors | Roboz | RS-5658 | autoclave |
Cell counting device | automatic or manual | ||
Confocal microscope with live cell chamber attachment | |||
Confocal imaging software | |||
D-(+)-glucose | Sigma | G7528 | |
DNase I (Worthington) | Fisher | NC9185812 | |
Dulbecco's Phosphate Buffered Saline | Gibco | 14200-075 | |
EGTA | Fisher | O2783-100 | |
Fatal-Plus Solution | Vortech Pharmaceuticals, LTD | NDC 0298-9373-68 | sodium pentobarbital; other approved methods of euthanasia may be used |
Fetal bovine serum | Invitrogen | 16000044 | |
Gentamicin Reagent Solution | Gibco | 15710-072 | |
GlutaMAX | Gibco | 35050-061 | glutamine substitute |
Hanks' Balanced Salt Solution | Gibco | 24020-117 | |
ImageJ version 1.51n | ImageJ | Life-Line version 2017 May 30: https://imagej.net/software/fiji/downloads | |
KymoAnalyzer (version 1.01) | Encalada Lab | Package includes all 6 macros: https://www.encalada.scripps.edu/kymoanalyzer | |
Lipofectamine 3000 | Invitrogen | 100022050 | Use with P3000 transfection enhancer reagent |
Magnesium chloride | Fisher | AC223211000 | |
MES hydrate | Sigma | M8250 | |
Micro Dissecting Scissors 3.5" Straight Sharp/Sharp | Roboz | RS-5910 | autoclave |
Neurobasal Plus medium | Gibco | A3582901 | |
Neurofascin (A12/18) Mouse IgG2a | UC Davis/NIH NeuroMab | 75-172 | RRID:AB_2282826; 250 ng/mL; Works in rat neurons, NOT in mouse neurons |
Neurofascin 186 (D6G60) Rabbit IgG | Cell Signaling | 15034 | RRID:AB_2773024; 500 ng/mL; Works in mouse neurons, we have not tested in rat neurons |
newborn calf serum | Gibco | 16010-167 | |
Opti-MEM | Gibco | 31985-062 | |
P3000 | Invitrogen | 100022057 | |
Petri dish, 100 x 10 mm glass | Fisher | 08-748B | For dissection; autoclave |
Petri dish, 100 x 20 mm glass | Fisher | 08-748D | To place uterine horns in; autoclave |
Poly-D-lysine | Sigma | P7886-100MG | |
Polypropylene conical centrifuge tubes (15 mL) | Fisher | 14-955-238 | |
Polypropylene conical centrifuge tubes (50 mL) | Fisher | 14-955-238 | |
Potassium chloride | Fisher | P217-500 | |
Sodium acetate | Sigma | S5636 | |
sodium borate decahydrate | VWR | MK745706 | |
Straight-Blade Operating Scissors Blunt/Sharp | Fisher | 13-810-2 | autoclave |
Syringe Filters, 0.22 µm | VWR | 514-1263 | |
Thumb dressing forceps, serrated, 4.5" | Roboz | RS-8100 | autoclave |
µ-Slide 4 Well Glass Bottom | Ibidi | 80427 |
.