Summary

שימוש בדימות תאים חיים כדי למדוד את ההשפעות של חלבונים פתולוגיים על תחבורה אקסונלית בנוירונים ראשוניים בהיפוקמפוס

Published: December 22, 2023
doi:

Summary

כאן, אנו מדגימים כיצד לשלב טרנספקציה של נוירונים מכרסמים ראשוניים בהיפוקמפוס עם הדמיה קונפוקלית של תאים חיים כדי לנתח השפעות פתולוגיות המושרות על ידי חלבונים על הובלה אקסונלית ולזהות מסלולים מכניסטיים המתווכים השפעות אלה.

Abstract

הובלה דו-כיוונית של מטענים לאורך האקסון חיונית לשמירה על סינפסות תפקודיות, קישוריות עצבית ותאי עצב בריאים. ההובלה האקסונלית משובשת במחלות נוירודגנרטיביות מרובות, ונוירוני הקרנה פגיעים במיוחד בגלל הצורך להעביר חומרים תאיים למרחקים ארוכים ולשמור על מסה אקסונלית משמעותית. שינויים פתולוגיים של מספר חלבונים הקשורים למחלות משפיעים לרעה על התחבורה, כולל טאו, עמילואיד-β, α-סינוקלאין, סופראוקסיד דיסמוטאז והנטינגטין, ומספקים מנגנון משותף פוטנציאלי שבאמצעותו חלבונים פתולוגיים מפעילים רעילות במחלות. שיטות לחקור מנגנונים רעילים אלה נחוצים כדי להבין הפרעות נוירודגנרטיביות ולזהות התערבויות טיפוליות פוטנציאליות.

כאן, נוירוני היפוקמפוס ראשוניים של מכרסמים בתרבית נגועים יחד עם פלסמידים מרובים כדי לחקור את ההשפעות של חלבונים פתולוגיים על הובלה אקסונלית מהירה באמצעות הדמיה קונפוקלית של תאים חיים של חלבוני מטען מתויגים פלואורסצנטית. אנו מתחילים עם הקציר, הדיסוציאציה והטיפוח של נוירונים ראשוניים בהיפוקמפוס ממכרסמים. לאחר מכן, אנו מבצעים טרנספורמציה משותפת של תאי העצב עם מבני דנ”א פלסמידים כדי לבטא חלבון מטען מתויג פלואורסצנטי וטאו פראי או מוטנטי (המשמש כדוגמה לחלבונים פתולוגיים). אקסונים מזוהים בתאים חיים באמצעות נוגדן הקושר תחום חוץ-תאי של נוירופאשין, חלבון מקטע ראשוני של אקסון, ואזור עניין אקסונלי מדומה למדידת הובלת מטענים פלואורסצנטיים.

באמצעות KymoAnalyzer, מאקרו ImageJ הזמין באופן חופשי, אנו מאפיינים בהרחבה את המהירות, תדירות ההשהיה וצפיפות המטען הכיוונית של הובלה אקסונלית, שכולם עשויים להיות מושפעים מנוכחותם של חלבונים פתולוגיים. באמצעות שיטה זו, אנו מזהים פנוטיפ של תדירות השהיית מטען מוגברת הקשורה לביטוי של חלבון טאו פתולוגי. בנוסף, ניתן להוסיף מבני shRNA להשתקת גנים לתמהיל הטרנספקציה כדי לבחון את תפקידם של חלבונים אחרים בתיווך שיבוש ההובלה. פרוטוקול זה ניתן להתאמה בקלות לשימוש עם חלבונים אחרים הקשורים למחלות נוירודגנרטיביות והוא שיטה ניתנת לשחזור לחקר המנגנונים של האופן שבו חלבונים אלה משבשים את ההובלה האקסונלית.

Introduction

תאי עצב תלויים בהובלה דו-כיוונית של מטען לאורך האקסון כדי לשמור על סינפסות תפקודיות וקישוריות עצבית. ליקויים בהובלה אקסונלית נחשבים לתורמים קריטיים לפתוגנזה של מספר מחלות נוירודגנרטיביות, כולל מחלת אלצהיימר (AD) וטאואופתים אחרים, מחלת פרקינסון, טרשת אמיוטרופית צידית ומחלת הנטינגטון 1,2,3. ואכן, שינויים פתולוגיים במספר חלבונים הקשורים למחלות משפיעים לרעה על התחבורה (נסקר ב -4). פיתוח שיטות לחקר המנגנונים שבאמצעותם חלבונים פתולוגיים מפעילים רעילות במחלות נחוץ כדי להבין הפרעות נוירודגנרטיביות ולזהות מטרות פוטנציאליות להתערבות טיפולית.

מספר תובנות חשובות על העברת אקסונים, כולל גילוי קינזין קונבנציונלי, מסלולים תלויי קינאז ופוספטאז המווסתים חלבונים מוטוריים, ומנגנונים שבאמצעותם חלבונים פתולוגיים משבשים את ויסות העברת האקסונים, נעשו באמצעות מודל אקסופלזמה של דיונון מבודד 4,5. זילוח של אקסופלסמת דיונון עם צורות פתולוגיות של חלבון טאו מעכב הובלה אקסונלית מהירה אנטרוגרדית (FAT), השפעה התלויה בחשיפה של תחום הפעלת פוספטאז של טאו, אשר מפעיל את חלבון phosphatase 1 (PP1)6,7,8. PP1 מפעיל גליקוגן סינתאז קינאז 3 (GSK3), אשר בתורו פוספורילטים קינזין שרשראות אור גורם לשחרור מטען. חלבון פתולוגי נוסף באלצהיימר הוא עמילואיד-β. צורות אוליגומריות של β עמילואיד מעכבות FAT דו-כיווני באמצעות קזאין קינאז 2, אשר פוספורילטים קינזין שרשראות אור9. יתר על כן, חלבון הנטינגטין פתולוגי בעל הרחבת פוליגלוטמין ומוטציה משפחתית SOD1 הקשורה ל-ALS משבשים כל אחד את ההובלה האקסונלית באקסופלזמה של דיונון דרך פעילות קינאז c-Jun N-terminal וחלבון קינאז p38 המופעל על ידי מיטוגן, בהתאמה10,11.

בעוד מודל אקסופלזמה דיונון ממשיך להיות כלי רב ערך בהבנת ההשפעות של חלבונים פתולוגיים על תחבורה אקסונלית, גישה מוגבלת לציוד ולדגימות מונעת ממנו להיות בשימוש נרחב יותר. פיתחנו בדיקת הובלה באמצעות הדמיה במיקרוסקופ קונפוקלי של תאים חיים של נוירונים ראשוניים של מכרסמים (עכבר וחולדה). מודל זה מייצג גישה מבוססת תאי עצב של יונקים הניתנת להתאמה ולמניפולציה בקלות באמצעות מקורות תאים זמינים באופן נרחב ומערכות מיקרוסקופיה. לדוגמה, מגוון חלבונים פתולוגיים (למשל, בעלי שינויים הקשורים למחלות) באים לידי ביטוי כדי לזהות כיצד שינויים ספציפיים של חלבונים אלה משפיעים על ההובלה באקסונים. באופן דומה, ניתן להשתמש במגוון חלבוני מטען בעלי תיוג פלואורסצנטי כדי לבחון שינויים ספציפיים למטען. יתר על כן, המנגנונים המולקולריים הבסיסיים נחקרים בקלות יחסית על ידי מיקוד ביטוי (כלומר, הפלה או ביטוי יתר) של חלבונים נבחרים שעשויים לתווך השפעות אלה. שיטה זו גם מותאמת בקלות לתאי עצב ראשוניים שמקורם במגוון רחב של מודלים של בעלי חיים.

אנו מציגים פרוטוקול מפורט המתאר את בדיקת העברת האקסון החי ששימש בעבר בנוירונים ראשוניים בהיפוקמפוס כדי להראות כי חלבוני טאו מוטנטיים הקשורים לדמנציה של האונה הקדמית (FTLD; P301L או R5L tau) מגבירים את תדירות ההשהיה של חלבוני מטען בעלי תווית פלואורסצנטית דו-כיוונית12. יתר על כן, הפלת האיזופורם PP1γ הצילה את השפעות ההשהיה12. זה מספק תמיכה למודל של הפרעה פתולוגית הנגרמת על ידי טאו המתווכת באמצעות הפעלה חריגה של מסלול איתות ביוזמת PP1 כמתואר לעיל 6,7,12. במחקר נפרד, הראינו כי פסאודו-פוספורילציה של טאו ב-S199/S202/T205 (הפוספואפיטופ AT8 הפתוגני הרלוונטי לטאופתיות) הגבירה את תדירות השהיית המטען ואת מהירות המקטע האנטרוגרד. השפעות אלה היו תלויות בתחום הפעלת הפוספטאז N-terminal של טאו13. דוגמאות אלה מדגישות את התועלת של מודל זה לזיהוי המנגנונים של האופן שבו חלבונים פתולוגיים משבשים את העברת האקסון בנוירונים של יונקים.

מאמר זה מספק תיאור מפורט של השיטה המתחילה בקציר, דיסוציאציה וטיפוח של נוירונים ראשוניים בהיפוקמפוס של עכברים, לאחר מכן טרנספקציה של תאי עצב עם חלבוני מטען המאוחים עם חלבון פלואורסצנטי, ולבסוף, גישת הדמיה וניתוח תמונה של תאים חיים. אנו מדגימים כיצד שיטה זו משמשת לחקר ההשפעות של טאו שונה על ההובלה הדו-כיוונית של החלבון הקשור לשלפוחית, סינפטופיזין, כדוגמה. עם זאת, קיימת גמישות בחלבון הפתוגני ובחלבון המטען התובלה, מה שהופך את זה לגישה רב-תכליתית לחקר הובלה אקסונלית.

Protocol

פרוטוקולים אלה אושרו על ידי הוועדה המוסדית לטיפול ושימוש בבעלי חיים באוניברסיטת מישיגן. פרוטוקול זה יושם בהצלחה על עכברי Tau Knockout על רקע C57BL/6J וחולדות Sprague Dawley מסוג Wild. זנים אחרים צריכים להיות מקובלים גם כן. 1. קציר נוירונים ראשוני בהיפוקמפוס צ?…

Representative Results

באמצעות שיטות אלה, אפיינו הובלה אקסונלית בנוכחות צורות פראיות או הקשורות למחלות של חלבון טאו כדי לבחון מנגנונים פוטנציאליים של רעילות עצבית פתולוגית הנגרמת על ידי טאו במחלה12,13. תוכנת KymoAnalyzer מחשבת ואוספת מגוון פרמטרים שונים מכל הקימוגרפי…

Discussion

ישנן ראיות הולכות וגדלות לכך שחלבונים פתולוגיים מרובים הקשורים למגוון הפרעות נוירודגנרטיביות משבשים את התחבורה האקסונלית המהירה בנוירונים. זה מייצג מנגנון משותף פוטנציאלי של רעילות עצבית על פני מחלות אלה. כדי להבין טוב יותר את התהליך שבו החלבונים האלה משבשים את השינו?…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

אנו מודים לצ’לסי טירנן ולקייל כריסטנסן על מאמציהם בפיתוח ואופטימיזציה של היבטים של פרוטוקולים אלה. עבודה זו נתמכה על ידי המכונים הלאומיים לבריאות (NIH) מענקים R01 NS082730 (N.M.K.), R01 AG044372 (N.M.K.), R01 AG067762 (N.M.K.) ו- F31 AG074521 (R.L.M.); NIH/המכון הלאומי להזדקנות, מישיגן מענק 5P30AG053760 (N.M.K. ו- B.C.); משרד עוזר מזכיר ההגנה לענייני בריאות באמצעות פרס תוכנית המחקר לאלצהיימר W81XWH-20-1-0174 (B.C.); מענקי מחקר של האגודה לאלצהיימר 20-682085 (B.C.); וקרן משפחת סקיה (N.M.K).

Materials

0.4% Trypan blue Gibco 15250-061
1.7 mL microcentrifuge tubes DOT RN1700-GMT
2.5% trypsin Gibco 15090-046
3 mL syringe with 21 G needle Fisher 14-826-84
10 mL plastic syringe Fisher 14-823-2A
14 G needle Fisher 14-817-203
15 G needle Medline SWD200029Z
16 G needle Fisher 14-817-104
18 G needle Fisher 14-840-97
22 G needle Fisher 14-840-90
32% paraformaldehyde Fisher 50-980-495
AlexaFluor 647 goat anti-rabbit IgG (H+L) Invitrogen A21244 RRID:AB_2535813
Amphotericin B Gibco 15290-026
Arruga Micro Embryonic Capsule Forceps, Curved; 4"  Roboz RS-5163 autoclave
B-27 Supplement (50x), serum free Gibco A3582801
BioCoat 24-well Poly D lysine plates  Fisher 08-774-124
boric acid Sigma B6768-1KG
Calcium chloride Sigma C7902
Castroviejo 3 1/2" Long 8 x 0.15 mm Angle Sharp Scissors Roboz RS-5658 autoclave
Cell counting device automatic or manual
Confocal microscope with live cell chamber attachment
Confocal imaging software
D-(+)-glucose Sigma G7528
DNase I (Worthington) Fisher NC9185812
Dulbecco's Phosphate Buffered Saline Gibco 14200-075
EGTA Fisher O2783-100
Fatal-Plus Solution Vortech Pharmaceuticals, LTD NDC 0298-9373-68 sodium pentobarbital; other approved methods of euthanasia may be used 
Fetal bovine serum Invitrogen 16000044
Gentamicin Reagent Solution Gibco 15710-072
GlutaMAX Gibco 35050-061 glutamine substitute
Hanks' Balanced Salt Solution Gibco 24020-117
ImageJ version 1.51n ImageJ Life-Line version 2017 May 30: https://imagej.net/software/fiji/downloads
KymoAnalyzer (version 1.01) Encalada Lab Package includes all 6 macros: https://www.encalada.scripps.edu/kymoanalyzer
Lipofectamine 3000 Invitrogen 100022050 Use with P3000 transfection enhancer reagent
Magnesium chloride Fisher AC223211000
MES hydrate Sigma M8250
Micro Dissecting Scissors 3.5" Straight Sharp/Sharp Roboz RS-5910 autoclave
Neurobasal Plus medium Gibco A3582901
Neurofascin (A12/18) Mouse IgG2a UC Davis/NIH NeuroMab 75-172 RRID:AB_2282826; 250 ng/mL; Works in rat neurons, NOT in mouse neurons
Neurofascin 186 (D6G60) Rabbit IgG Cell Signaling 15034 RRID:AB_2773024; 500 ng/mL; Works in mouse neurons, we have not tested in rat neurons
newborn calf serum Gibco 16010-167
Opti-MEM Gibco 31985-062
P3000 Invitrogen 100022057
Petri dish, 100 x 10 mm glass Fisher 08-748B For dissection; autoclave
Petri dish, 100 x 20 mm glass Fisher 08-748D To place uterine horns in; autoclave
Poly-D-lysine Sigma P7886-100MG
Polypropylene conical centrifuge tubes (15 mL) Fisher 14-955-238
Polypropylene conical centrifuge tubes (50 mL) Fisher 14-955-238
Potassium chloride Fisher P217-500
Sodium acetate Sigma S5636
sodium borate decahydrate VWR MK745706
Straight-Blade Operating Scissors Blunt/Sharp Fisher 13-810-2 autoclave
Syringe Filters, 0.22 µm VWR 514-1263
Thumb dressing forceps, serrated, 4.5" Roboz RS-8100 autoclave
µ-Slide 4 Well Glass Bottom Ibidi 80427

References

  1. Kneynsberg, A., Combs, B., Christensen, K., Morfini, G., Kanaan, N. M. Axonal degeneration in tauopathies: disease relevance and underlying mechanisms. Front Neurosci. 11, 572 (2017).
  2. Combs, B., Mueller, R. L., Morfini, G., Brady, S. T., Kanaan, N. M. Tau and axonal transport misregulation in tauopathies. Adv Exp Med Biol. 1184, 81-95 (2019).
  3. Brady, S. T., Morfini, G. A. Regulation of motor proteins, axonal transport deficits and adult-onset neurodegenerative diseases. Neurobiol Dis. 105, 273-282 (2017).
  4. Morfini, G. A., et al. Axonal transport defects in neurodegenerative diseases. J Neurosci. 29 (41), 12776-12786 (2009).
  5. Brady, S. T., Lasek, R. J., Allen, R. D. Fast axonal transport in extruded axoplasm from squid giant axon. Science. 218 (4577), 1129-1131 (1982).
  6. LaPointe, N. E., et al. The amino terminus of tau inhibits kinesin-dependent axonal transport: implications for filament toxicity. J Neurosci Res. 87 (2), 440-451 (2009).
  7. Kanaan, N. M., et al. Pathogenic forms of tau inhibit kinesin-dependent axonal transport through a mechanism involving activation of axonal phosphotransferases. J Neurosci. 31 (27), 9858-9868 (2011).
  8. Kanaan, N. M., et al. Phosphorylation in the amino terminus of tau prevents inhibition of anterograde axonal transport. Neurobiol Aging. 33 (4), 826.e15-826.e30 (2012).
  9. Pigino, G., et al. Disruption of fast axonal transport is a pathogenic mechanism for intraneuronal amyloid beta. Proc Natl Acad Sci U S A. 106 (14), 5907-5912 (2009).
  10. Morfini, G. A., et al. Pathogenic huntingtin inhibits fast axonal transport by activating JNK3 and phosphorylating kinesin. Nat Neurosci. 12 (7), 864-871 (2009).
  11. Morfini, G. A., et al. Inhibition of fast axonal transport by pathogenic SOD1 involves activation of p38 MAP kinase. PLoS One. 8 (6), e65235 (2013).
  12. Combs, B., et al. Frontotemporal lobar dementia mutant tau impairs axonal transport through a protein phosphatase 1gamma-dependent mechanism. J Neurosci. 41 (45), 9431-9451 (2021).
  13. Christensen, K. R., et al. Phosphomimetics at Ser199/Ser202/Thr205 in tau impairs axonal transport in rat hippocampal neurons. Mol Neurobiol. 60 (6), 3423-3438 (2023).
  14. Kaech, S., Banker, G. Culturing hippocampal neurons. Nat Protoc. 1 (5), 2406-2415 (2006).
  15. Seibenhener, M. L., Wooten, M. W. Isolation and culture of hippocampal neurons from prenatal mice. J Vis Exp. (65), 3634 (2012).
  16. Neumann, S., Chassefeyre, R., Campbell, G. E., Encalada, S. E. KymoAnalyzer: a software tool for the quantitative analysis of intracellular transport in neurons. Traffic. 18 (1), 71-88 (2017).
  17. Cox, K., et al. Analysis of isoform-specific tau aggregates suggests a common toxic mechanism involving similar pathological conformations and axonal transport inhibition. Neurobiol Aging. 47, 113-126 (2016).
  18. Tiernan, C. T., et al. Pseudophosphorylation of tau at S422 enhances SDS-stable dimer formation and impairs both anterograde and retrograde fast axonal transport. Exp Neurol. 283 (Pt A), 318-329 (2016).
  19. Mueller, R. L., et al. Tau: a signaling hub protein. Front Mol Neurosci. 14, 647054 (2021).
  20. Hedstrom, K. L., Ogawa, Y., Rasband, M. N. AnkyrinG is required for maintenance of the axon initial segment and neuronal polarity. J Cell Biol. 183 (4), 635-640 (2008).
  21. Basu, H., Schwarz, T. L. QuoVadoPro, an autonomous tool for measuring intracellular dynamics using temporal variance. Curr Protoc Cell Biol. 87 (1), e108 (2020).
This article has been published
Video Coming Soon
Keep me updated:

.

Cite This Article
Mueller, R. L., Kanaan, N. M., Combs, B. Using Live-Cell Imaging to Measure the Effects of Pathological Proteins on Axonal Transport in Primary Hippocampal Neurons. J. Vis. Exp. (202), e66156, doi:10.3791/66156 (2023).

View Video