Summary

Induktion eines akuten ischämischen Schlaganfalls bei Mäusen mit der Technik des distalen Mittelarterienverschlusses

Published: December 15, 2023
doi:

Summary

In dieser Arbeit stellen wir ein Protokoll zur Etablierung eines distalen Modells für einen Verschluss der mittleren Hirnarterie (dMCAO) durch transkranielle Elektrokoagulation bei C57BL/6J-Mäusen vor und bewerten das anschließende neurologische Verhalten und die histopathologischen Merkmale.

Abstract

Der ischämische Schlaganfall ist nach wie vor die vorherrschende Ursache für Mortalität und Funktionsbeeinträchtigungen in der erwachsenen Bevölkerung weltweit. Nur eine Minderheit der Patienten mit ischämischem Schlaganfall kommt für eine intravaskuläre Thrombolyse oder eine mechanische Thrombektomietherapie innerhalb des optimalen Zeitfensters in Frage. Von den Schlaganfallüberlebenden leiden rund zwei Drittel über einen längeren Zeitraum an neurologischen Funktionsstörungen. Die Etablierung eines stabilen und wiederholbaren experimentellen ischämischen Schlaganfallmodells ist äußerst wichtig für die weitere Untersuchung der pathophysiologischen Mechanismen und die Entwicklung wirksamer therapeutischer Strategien für den ischämischen Schlaganfall. Die mittlere Hirnarterie (MCA) stellt die vorherrschende Lokalisation des ischämischen Schlaganfalls beim Menschen dar, wobei der MCA-Verschluss als häufig verwendetes Modell der fokalen zerebralen Ischämie dient. In diesem Protokoll beschreiben wir die Methodik zur Etablierung des distalen MCA-Okklusionsmodells (dMCAO) durch transkranielle Elektrokoagulation bei C57BL/6-Mäusen. Da sich die Okklusionsstelle am kortikalen Ast der MCA befindet, erzeugt dieses Modell eine mittelschwere Infarktläsion, die auf den Kortex beschränkt ist. Neurologische Verhaltens- und histopathologische Charakterisierungen haben in diesem Modell eine sichtbare motorische Dysfunktion, Neuronendegeneration und eine ausgeprägte Aktivierung von Mikroglia und Astrozyten gezeigt. Somit bietet dieses dMCAO-Mausmodell ein wertvolles Werkzeug zur Untersuchung des Ischämieschlaganfalls und den Wert der Popularisierung.

Introduction

Der Schlaganfall ist eine häufige akute zerebrovaskuläre Erkrankung, die durch eine hohe Inzidenz von Behinderungen und Todesfällen gekennzeichnetist 1. Von allen Schlaganfallfällen gehören fast 80% zum ischämischen Schlaganfall2. Bisher ist die intravenöse Thrombolyse einer der wenigen produktiven Ansätze zur Behandlung des akuten ischämischen Schlaganfalls. Die Wirksamkeit der thrombolytischen Behandlung wird jedoch durch das enge Wirkzeitfenster und das Auftreten einer hämorrhagischen Transformation eingeschränkt3. In der langfristigen Rehabilitationsphase nach einem ischämischen Schlaganfall ist bei einer beträchtlichen Anzahl von Patienten mit dauerhaften neurologischen Funktionsstörungen zu rechnen4. Weitere Untersuchungen sind dringend erforderlich, um die zugrundeliegenden pathophysiologischen Mechanismen des ischämischen Schlaganfalls zu entschlüsseln und die Entwicklung neuer therapeutischer Strategien für den ischämischen Schlaganfall zu erleichtern. Die Etablierung eines verlässlichen und replizierbaren Modells des ischämischen Schlaganfalls ist sowohl für die Grundlagenforschung als auch für die anschließende translationale Forschung auf dem Gebiet des ischämischen Schlaganfalls von entscheidender Bedeutung.

Im Jahr 1981 entwickelten Tamura et al. ein fokales zerebrales Ischämiemodell, indem sie transkranielle Elektrokoagulation an der proximalen Stelle der mittleren Hirnarterie (MCA) einsetzten5. Seitdem haben zahlreiche Forscher verschiedene Methoden wie Ligatur, Kompression oder Clipping eingesetzt, um einen distalen MCA-Verschluss (dMCAO) zu induzieren, um transiente oder permanente ischämische Schlaganfallmodelle zu etablieren 6,7,8. Im Vergleich zum Filamentmodell weist das dMCAO-Modell bemerkenswerte Vorteile auf, wie z. B. eine geringere Infarktgröße und eine höhere Überlebensrate, wodurch es sich besser für die Untersuchung der langfristigen funktionellen Wiederherstellung nach einem ischämischen Schlaganfall eignet9. Darüber hinaus zeigt das dMCAO-Modell eine höhere Überlebensrate bei gealterten Nagetieren im Vergleich zum Filamentmodell, was es zu einem vorteilhaften Werkzeug für die Untersuchung des ischämischen Schlaganfalls in älteren und komorbiden Tiermodellen macht10. Es wurde gezeigt, dass das photothrombotische (PT) Schlaganfallmodell die Merkmale einer geringeren chirurgischen Invasivität und einer signifikant niedrigen Mortalitätsrate aufweist. Das PT-Modell weist jedoch im Vergleich zum dMCAO-Modell ein höheres Maß an zellulärer Nekrose und Gewebeödem auf, was zu einem Fehlen einer kollateralen Zirkulation führt11. Darüber hinaus ist bemerkenswert, dass die im PT-Modell beobachteten ischämischen Läsionen überwiegend auf einen mikrovaskulären Verschluss zurückzuführen sind, der sich wesentlich von der zerebralen Ischämie unterscheidet, die durch eine große Gefäßembolie im dMCAO-Modell induziert wird12.

In dieser Arbeit stellen wir die Methodik zur Induktion des murinen dMCAO-Modells durch Koagulation des distalen MCA über eine kleine Knochenfensterkraniotomie vor. Zusätzlich führten wir histologische Untersuchungen und Verhaltensbewertungen durch, um die ischämischen Insulte und Schlaganfallergebnisse in diesem experimentellen Modell umfassend zu charakterisieren. Unser Ziel ist es, die Forscher mit diesem Modell vertraut zu machen und weitere Untersuchungen der pathologischen Mechanismen des ischämischen Schlaganfalls zu ermöglichen.

Protocol

Das Versuchsprotokoll wurde vom Institutional Animal Care and Use Committee der Universität Jianghan genehmigt und in Übereinstimmung mit den ethischen Richtlinien für Versuchstiere durchgeführt, die vom Center for Disease Control of China herausgegeben wurden. In diesem Protokoll wurden adulte männliche C57BL/6J-Mäuse im Alter von 10 Wochen mit einem Gewicht von 24-26 g verwendet. Alle Mäuse wurden in einer 12-stündigen Hell-Dunkel-Zyklus-kontrollierten Umgebung mit Futter und Wasser ad libitum untergeb…

Representative Results

Die wichtigsten Instrumente, die zur Durchführung der dMCAO verwendet werden, sind das mikrochirurgische Instrumentarium, der Isofluran-Vaporizer und der monopolare mikrochirurgische Elektrokoagulationsgenerator, der in Abbildung 1 gezeigt ist. Das experimentelle Vorgehen dieser Studie ist in Abbildung 2 dargestellt. Kurz gesagt, wurde eine kleine Knochenfensterkraniotomie eingesetzt, um die distale MCA freizulegen, die anschließend koaguliert wurde, um bei C…

Discussion

In dem vorliegenden Protokoll des Kraniotomie-Elektrokoagulations-dMCAO-Modells werden die chirurgischen Eingriffe mit minimalinvasiver Häufigkeit durchgeführt, wobei nur ein Teil des Schläfenmuskels abgetrennt wird, um die nachteiligen Auswirkungen auf die Kaufunktion zu mildern. Die Mäuse erholten sich alle gut nach dem Eingriff, ohne dass es zu Fütterungsschwierigkeiten kam. Die MCA ist im Schläfenbein der Maus leicht zu erkennen, was eine genaue Identifizierung geeigneter Kraniotomiestellen ermöglicht. Diese d…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Diese Studie wurde durch die Grants der Nature Science Foundation der Provinz Hubei (2022CFC057) unterstützt.

Materials

2,3,5-Triphenyltetrazolium
Chloride (TTC)
Sigma-Aldrich 108380 Dye for TTC staining
24-well culture plate Corning (USA) CLS3527 Vessel for TTC staining
4% paraformaldehyde Wuhan Servicebio Technology
Co., Ltd.
G1101 Tissue fixation
5% bovine serum albumin Wuhan BOSTER Bio Co., Ltd. AR004 Non-specific antigen blocking
5-0 Polyglycolic acid suture Jinhuan Medical Co., Ltd KCR531 Material for surgery
Anesthesia machine Midmark Corporation VMR Anesthetized animal
Antifade mounting medium Beyotime Biotech P0131 Seal for IF staining
Automation-tissue-dehydrating 
machine
Leica Biosystems (Germany) TP1020 Dehydrate tissue
Depilatory cream Veet (France) 20220328 Material for surgery
Diclofenac sodium gel Wuhan Ma Yinglong Pharmaceutical
 Co., Ltd.
H10950214 Analgesia for animal
Drill tip (0.8 mm) Rwd Life Science Co., Ltd. Equipment for surgery
Eosin staining solution Wuhan Servicebio Technology
Co., Ltd.
G1001 Dye for H&E staining
Eye ointment Guangzhou Pharmaceutical Co., Ltd H44023098 Material for surgery
Fluorescence microscope Olympus (Japan) BX51 Image acquisition
GFAP Mouse monoclonal antibody Cell Signaling Technology Inc.
(Danvers, MA, USA)
3670 Primary antibody for IF staining
Goat anti-mouse Alexa
488-conjugated IgG
Cell Signaling Technology Inc.
(Danvers, MA, USA)
4408 Second antibody for IF staining
Goat anti-rabbit Alexa
594-conjugated IgG
Cell Signaling Technology Inc.
(Danvers, MA, USA)
8889 Second antibody for IF staining
Grip strength meter Shanghai Xinruan Information Technology Co., Ltd. XR501 Equipment for behavioral test
Hematoxylin staining solution Wuhan Servicebio Technology
Co., Ltd.
G1004 Dye for H&E staining
Iba1 Rabbit monoclonal antibody Abcam ab178846 Primary antibody for IF staining
Isoflurane Rwd Life Science Co., Ltd. R510-22-10 Anesthetized animal
Laser doppler blood flow meter Moor Instruments (UK) moorVMS Blood flow monitoring
Meloxicam Boehringer-Ingelheim J20160020 Analgesia for animal
Microdrill Rwd Life Science Co., Ltd. 78001 Equipment for surgery
Microsurgical instruments set Rwd Life Science Co., Ltd. SP0009-R Equipment for surgery
Microtome Thermo Fisher Scientific (USA) HM325 Tissue section production
Microtome blade Leica Biosystems (Germany) 819 Tissue section production
Monopolar electrocoagulation generator Spring Scenery Medical Instrument
Co., Ltd.
CZ0001 Equipment for surgery
Mupirocin ointment Tianjin Smith Kline & French
Laboratories Ltd.
H10930064 Anti-infection for animal
NeuN Rabbit monoclonal antibody Cell Signaling Technology Inc.
(Danvers, MA, USA)
24307 Primary antibody for IF staining
Neutral balsam Absin Bioscience abs9177 Seal for H&E staining
Paraffin embedding center Thermo Fisher Scientific (USA) EC 350 Produce paraffin blocks
Pentobarbital sodium Sigma-Aldrich P3761 Euthanized animal
Phosphate buffered saline Shanghai Beyotime Biotech Co., Ltd C0221A Rinsing for tissue section
Shaver Shenzhen Codos Electrical Appliances
Co.,Ltd.
CP-9200 Equipment for surgery
Sodium citrate solution Shanghai Beyotime Biotech Co., Ltd. P0083 Antigen retrieval for IF staining

References

  1. Patel, P., Yavagal, D., Khandelwal, P. Hyperacute management of ischemic strokes: JACC Focus Seminar. J Am Coll Cardiol. 75 (15), 1844-1856 (2020).
  2. GBD 2016 Stroke Collaborators. Global, regional, and national burden of stroke, 1990-2016: a systematic analysis for the Global Burden of Disease study 2016. Lancet Neurol. 18 (5), 439-458 (2019).
  3. Joo, H., Wang, G., George, M. G. A literature review of cost-effectiveness of intravenous recombinant tissue plasminogen activator for treating acute ischemic stroke. Stroke Vasc Neurol. 2 (2), 73-83 (2017).
  4. Jones, A. T., O’Connell, N. K., David, A. S. Epidemiology of functional stroke mimic patients: a systematic review and meta-analysis. Eur J Neurol. 27 (1), 18-26 (2020).
  5. Tamura, A., et al. Focal cerebral ischaemia in the rat: Description of technique and early neuropathological consequences following middle cerebral artery occlusion. J Cereb Blood Flow Metab. 1 (1), 53-60 (1981).
  6. Kuraoka, M., et al. Direct experimental occlusion of the distal middle cerebral artery induces high reproducibility of brain ischemia in mice. Exp Anim. 58 (1), 19-29 (2009).
  7. Orset, C., et al. Mouse model of in situ thromboembolic stroke and reperfusion. Stroke. 38 (10), 2771-2778 (2007).
  8. Fluri, F., Schuhmann, M. K., Kleinschnitz, C. Animal models of ischemic stroke and their application in clinical research. Drug Des Devel Ther. 9, 3445-3454 (2015).
  9. Candelario-Jalil, E., Paul, S. Impact of aging and comorbidities on ischemic stroke outcomes in preclinical animal models: A translational perspective. J Exp Neurol. 335, 113494 (2021).
  10. Zuo, X., et al. Attenuation of secondary damage and Aβ deposits in the ipsilateral thalamus of dMCAO rats through reduction of cathepsin B by bis(propyl)-cognitin, a multifunctional dimer. Neuropharmacology. 162, 107786 (2020).
  11. Shabani, Z., Farhoudi, M., Rahbarghazi, R., Karimipour, M., Mehrad, H. Cellular, histological, and behavioral pathological alterations associated with the mouse model of photothrombotic ischemic stroke. J Chem Neuroanat. 130, 102261 (2023).
  12. Caleo, M. Rehabilitation and plasticity following stroke: Insights from rodent models. Neuroscience. 311, 180-194 (2015).
  13. Llovera, G., Roth, S., Plesnila, N., Veltkamp, R., Liesz, A. Modeling stroke in mice: permanent coagulation of the distal middle cerebral artery. J Vis Exp. (89), e51729 (2014).
  14. Lavayen, B. P., et al. Neuroprotection by the cannabidiol aminoquinone VCE-004.8 in experimental ischemic stroke in mice. Neurochem Int. 165, 105508 (2023).
  15. Hu, K., et al. Cathepsin B knockout confers significant brain protection in the mouse model of stroke. J Exp Neurol. 368, 114499 (2023).
  16. Yu, S. P., et al. Optochemogenetic stimulation of transplanted iPS-NPCs enhances neuronal repair and functional recovery after ischemic stroke. J Neurosci. 39 (33), 6571-6594 (2019).
  17. Lin, Y. H., et al. Opening a new time window for treatment of stroke by targeting HDAC2. J Neurosci. 37 (28), 6712-6728 (2017).
  18. Shi, X. F., Ai, H., Lu, W., Cai, F. SAT: Free software for the semi-automated analysis of rodent brain sections with 2,3,5-triphenyltetrazolium chloride staining. Front Neurosci. 13, 102 (2019).
  19. Jensen, E. C., et al. Quantitative analysis of histological staining and fluorescence using ImageJ. Anat Rec. 296 (3), 378-381 (2013).
  20. Donahue, J., Wintermark, M. Perfusion CT and acute stroke imaging: foundations, applications, and literature review. J Neuroradiol. 42 (1), 21-29 (2015).
  21. Sun, M., et al. Long-term L-3-n-butylphthalide pretreatment attenuates ischemic brain injury in mice with permanent distal middle cerebral artery occlusion through the Nrf2 pathway. Heliyon. 8 (7), e09909 (2022).
  22. Balkaya, M. G., Trueman, R. C., Boltze, J., Corbett, D., Jolkkonen, J. Behavioral outcome measures to improve experimental stroke research. Behav Brain Res. 352, 161-171 (2018).
  23. Hao, T., et al. Inflammatory mechanism of cerebral ischemia-reperfusion injury with treatment of stepharine in rats. Phytomedicine. 79, 153353 (2020).
  24. Pietrogrande, G., et al. Low oxygen post conditioning prevents thalamic secondary neuronal loss caused by excitotoxicity after cortical stroke. Sci Rep. 9 (1), 4841 (2019).
  25. Shi, X., et al. Stroke subtype-dependent synapse elimination by reactive gliosis in mice. Nat Commun. 12 (1), 6943 (2021).
  26. Chen, W. C., et al. Aryl hydrocarbon receptor modulates stroke-induced astrogliosis and neurogenesis in the adult mouse brain. JNeuroinflammation. 16 (1), 187 (2019).

Play Video

Cite This Article
Leng, C., Li, Y., Sun, Y., Liu, W. Induction of Acute Ischemic Stroke in Mice Using the Distal Middle Artery Occlusion Technique. J. Vis. Exp. (202), e66134, doi:10.3791/66134 (2023).

View Video