Dit protocol is ontwikkeld om de mechanische eigenschappen van neuraal plaatweefsel tijdens de neurulatie van kuikenembryo’s longitudinaal te monitoren. Het is gebaseerd op de integratie van een Brillouin-microscoop en een incubatiesysteem op het podium, waardoor live mechanische beeldvorming van neuraal plaatweefsel in ex ovo gekweekte kuikenembryo’s mogelijk wordt.
Het sluiten van de neurale buis (NTC) is een cruciaal proces tijdens de embryonale ontwikkeling. Falen in dit proces kan leiden tot neurale buisdefecten, wat aangeboren misvormingen of zelfs sterfte veroorzaakt. NTC omvat een reeks mechanismen op genetisch, moleculair en mechanisch niveau. Hoewel mechanische regulering de laatste jaren een steeds aantrekkelijker onderwerp is geworden, blijft het grotendeels onontgonnen vanwege het gebrek aan geschikte technologie voor het uitvoeren van mechanische tests van 3D-embryonaal weefsel in situ. Als reactie hierop hebben we een protocol ontwikkeld om de mechanische eigenschappen van kippenembryonaal weefsel op een contactloze en niet-invasieve manier te kwantificeren. Dit wordt bereikt door een confocale Brillouin-microscoop te integreren met een incubatiesysteem op het podium. Om de weefselmechanica te onderzoeken, wordt een voorgekweekt embryo verzameld en overgebracht naar een incubator op het podium voor ex ovo-cultuur . Tegelijkertijd worden de mechanische beelden van het neurale plaatweefsel op verschillende tijdstippen tijdens de ontwikkeling door de Brillouin-microscoop verkregen. Dit protocol bevat gedetailleerde beschrijvingen van de monstervoorbereiding, de implementatie van Brillouin-microscopie-experimenten en de nabewerking en analyse van gegevens. Door dit protocol te volgen, kunnen onderzoekers de mechanische evolutie van embryonaal weefsel tijdens de ontwikkeling longitudinaal bestuderen.
Neurale buisdefecten (NTD’s) zijn ernstige geboorteafwijkingen van het centrale zenuwstelsel die worden veroorzaakt door storingen in de neurale buissluiting (NTC) tijdens de embryonale ontwikkeling1. De etiologie van NTD’s is complex. Studies hebben aangetoond dat NTC een opeenvolging van morfogenetische processen omvat, waaronder convergente extensie, buiging van de neurale plaat (bijv. apicale vernauwing), het verhogen van de neurale plooi en ten slotte adhesie van de neurale vouw. Deze processen worden gereguleerd door meerdere moleculaire en genetische mechanismen 2,3, en elke storing in deze processen kan leiden tot NTD’s 4,5,6. Aangezien er steeds meer bewijs is dat mechanische signalen ook een cruciale rol spelen tijdens NTC 3,7,8,9,10,11, en er relaties zijn gevonden tussen genen en mechanische signalen 12,13,14, wordt het noodzakelijk om de weefselbiomechanica tijdens neurulatie te onderzoeken.
Er zijn verschillende technieken ontwikkeld voor het meten van de mechanische eigenschappen van embryonale weefsels, waaronder laserablatie (LA)15, weefseldissectie en -ontspanning (TDR)16,17, micropipetaspiratie (MA)18, nanoindentatie op basis van atoomkrachtmicroscopie (AFM)19, microindenters (MI) en microplaten (MP)20, microreologie (MR) met optisch/magnetisch pincet21,22,23, en druppelsensoren24. Bestaande methoden kunnen mechanische eigenschappen meten bij ruimtelijke resoluties, variërend van subcellulaire tot weefselschalen. De meeste van deze methoden zijn echter invasief omdat ze contact met het monster vereisen (bijv. MA, AFM, MI en MP), externe materiaalinjectie (bijv. MR en druppelgebaseerde sensoren) of weefseldissectie (bijv. LA en TDR). Als gevolg hiervan is het voor bestaande methoden een uitdaging om de mechanische evolutie van neuraal plaatweefsel in situte volgen 25. Onlangs is galmende optische coherentie-elastografie veelbelovend gebleken voor contactloze mechanische mapping met een hoge ruimtelijke resolutie26.
Confocale Brillouin-microscopie is een opkomende optische modaliteit die contactloze kwantificering van weefselbiomechanica mogelijk maakt met een subcellulaire resolutievan 27,28,29,30. Brillouin-microscopie is gebaseerd op het principe van spontane Brillouin-lichtverstrooiing, de interactie tussen het invallende laserlicht en de akoestische golf die wordt veroorzaakt door thermische fluctuaties in het materiaal. Bijgevolg ondergaat het verstrooide licht een frequentieverschuiving, bekend als de Brillouin-verschuiving ωR, volgens de vergelijking31:
(1)
Hier is de brekingsindex van het materiaal, λ is de golflengte van het invallende licht, M’ is de longitudinale modulus, ρ is de massadichtheid en θ is de hoek tussen het invallende licht en het verstrooide licht. Voor hetzelfde type biologische materialen is de verhouding tussen brekingsindex en dichtheid ongeveer constant 28,32,33,34,35,36. De Brillouin-verschuiving kan dus direct worden gebruikt om relatieve mechanische veranderingen in fysiologische processen te schatten. De haalbaarheid van Brillouin-microscopie is gevalideerd in verschillende biologische monsters 29,37,38. Onlangs werd time-lapse mechanische beeldvorming van een levend kuikenembryo gedemonstreerd door een Brillouin-microscoop te combineren met een incubatiesysteem op het podium39. Dit protocol bevat gedetailleerde beschrijvingen van de voorbereiding van het monster, de uitvoering van het experiment en de nabewerking en analyse van gegevens. We hopen dat deze inspanning de wijdverbreide acceptatie van contactloze Brillouin-technologie zal vergemakkelijken voor het bestuderen van biomechanische regulatie in de ontwikkeling van embryo’s en geboorteafwijkingen.
De vroege ontwikkeling van het embryo kan gemakkelijk worden beïnvloed door externe verstoringen. Daarom is uiterste voorzichtigheid geboden tijdens de monsterextractie en -overdracht. Een mogelijk probleem is het loskomen van het embryo van het filterpapier, wat kan leiden tot het krimpen van het vitelline-membraan en kan resulteren in een gekanteld artefact van de neurale plaat in Brillouin-beeldvorming. Bovendien kan dit krimpen de ontwikkeling van het embryo stoppen. Er moet aandacht worden besteed aan verschillende…
The authors have nothing to disclose.
Dit werk wordt ondersteund door het Eunice Kennedy Shriver National Institute of Child Health and Human Development, National Institutes of Health (K25HD097288, R21HD112663).
100 mm Petri dish | Fisherbrand | FB0875713 | |
2D motorized stage | Prior Scientific | H117E2 | |
35 mm Petri dish | World Precision Instruments | FD35-100 | |
Brillouin Microscope with on-stage incubator | N/A | N/A | This is a custom-built Brillouin Microscope system based on Ref. 30 |
Chicken eggs | University of Connecticut | N/A | |
CMOS camera | Thorlabs | CS2100M-USB | |
EMCCD camera | Andor | iXon | |
Ethanol | Decon Laboratories, Inc. | #2701 | |
Filter paper | Whatman | 1004-070 | |
Incubator for in ovo culture | GQF Manufacturing Company Inc. | GQF 1502 | |
Ring | Thorlabs | SM1RR | |
Microscope body | Olympus | IX73 | |
NaCl | Sigma-Aldrich | S9888 | |
On-stage incubator | Oko labs | OKO-H301-PRIOR-H117 | |
Parafilm | Bemis | PM-996 | |
Penicillin-Streptomycin | Gibco | 15070-063 | |
Pipettes | Fisherbrand | 13-711-6M | |
Scissors | Artman instruments | N/A | 3pc Micro Scissors 5 |
Syringe | BD | 305482 | |
Tissue paper | Kimwipes | N/A | |
Tube | Corning | 430052 | |
Tweezers | DR Instruments | N/A | Microdissection Forceps Set |